インスリン離脱および成長ホルモン注射後の筋肉組織および脂肪組織における代謝シグナル伝達。
I型糖尿病におけるインスリン離脱および成長ホルモン注射後の筋肉組織および脂肪組織における代謝シグナル伝達、臨床実験研究。
I 型真性糖尿病 (D I) は、内因性インスリンの欠乏を特徴とし、これらの患者は生存するためにインスリン補充に 100% 依存しています。
インスリンは、肝臓、骨格筋組織、脂肪組織を主要な標的とする強力なアナボリック ホルモンです。
インスリンの深刻な欠乏は、血糖値の上昇、脱水、電解質異常、ケトーシス、そして最終的にはケトアシドーシスにつながります.
インスリンシグナル伝達経路はよく知られています。
成長ホルモン (GH) は強力なアナボリック ホルモンでもあり、断食中の人間の成長とタンパク質の保存に関与します。 GH は (インスリンの欠乏と協調して) 空腹時に脂肪分解を誘発します。 GH がどのように脂肪分解作用を発揮するかはわかっていません。
目的は、DMI 患者の 3 つの異なる状態におけるインスリンおよび成長ホルモン (GH) シグナル伝達経路を定義することです。
そして、脂肪組織におけるATGL関連の脂肪分解がケトーシスの発症に寄与するかどうかをテストする.
- 良好な血糖コントロール
- インスリンの欠乏 (ケトーシス/ケトアシドーシス)
- 良好な血糖コントロールとGH注射
調査の概要
詳細な説明
I 型真性糖尿病 (DMI) は、内因性インスリンの欠乏を特徴とし、これらの患者は生存するためにインスリン補充に 100% 依存しています。
インスリンは強力なアナボリック ホルモンであり、主な標的は肝臓、骨格筋組織、および脂肪組織です。
肝臓では、糖新生を促進し、グリコーゲン分解と糖新生を阻害します。
骨格筋組織では、細胞へのグルコース輸送、糖新生、解糖、グルコース酸化、タンパク質合成を促進します。
脂肪組織では、脂肪分解を阻害し、脂質生成を促進します。
これは、血清インスリンレベルの低下が血糖値の上昇と血中のFFA(遊離脂肪酸)レベルの上昇につながり、最終的にケトン産生につながることを示しています.
この状態が是正されない場合、生命を脅かす可能性のある状態であるケトアシドーシスにつながり、輸液療法、電解質およびインスリンの代用により入院中に是正される.
インスリンは徹底的に研究されており、シグナル伝達経路はよく知られています。
興味深い経路は、脂肪分解の抑制です。 トリグリセリドの加水分解において最も重要で律速のリパーゼは、脂肪トリグリセリドリパーゼ (ATGL) です (1-5)。 ATGL と G0/G1 スイッチ遺伝子 (G0S2) の間の接続が示されています (6,7)。 脂肪分解中、ATGL は上方制御され、G0S2 は下方制御され、G0S2 のプロモーター領域には、グルコース、インスリン依存性転写因子、およびペルオキシソーム増殖因子活性化受容体 y (PPAR-y) の結合部位があります(8)。
ある以前の研究では、絶食によって人道的な脂肪組織の G0S2 が減少し、ATGL が増加することが示されています (7)。
インスリンの抗脂肪分解効果は、次に ATGL を阻害する GOS2 の転写の増加によって媒介されると考えられます。 逆に、インスリンが不足している間は脂肪分解が増加します。
成長ホルモンおよび成長ホルモンに依存する IGF-1 (インスリン様成長因子 - 1) の合成は、青年期の前および青年期におけるヒトの成長にとって重要です。 成人の GH と IGF-1 は依然として強力な成長因子であり、人間の代謝に不可欠な調節特性を発揮します (9,10)。
GHシグナル伝達経路はGH受容体を通過し、GH受容体はリン酸化し、それによりヤヌスキナーゼ2(JAK2)に関連する受容体を活性化する。 この時点からの信号は、数多くの研究で調べられています。
げっ歯類では、シグナルは 3 つの経路で流れることが示されています (9,10)。ヒト線維芽細胞に関する研究では、これらの経路のうち 2 つをサポートすることができました (MAPK - マイトジェン活性化プロテインキナーゼおよび STAT - シグナルトランスデューサーおよび転写の活性化因子)。ただし、インスリン受容体基質 (IRS) およびホスファチジルイノシトール 3-キナーゼ (PI3-K) 経路を介したものではありません。
ヒト (in vivo) 研究では、GH 刺激と STAT5 のリン酸化が明らかになっていますが、GH 刺激と MAPK および PI3-K の活性化との関連は示されていません (11)。
後者は、GH のインスリン作用および拮抗作用を考慮すると、興味深く注目すべきものです。
GH は脂肪分解を刺激しますが、GH の脂肪分解特性がどのように媒介されるかは完全には理解されていません。 しかし、GH はホルモン感受性リパーゼに影響を与えることが示されています (12) (HSL)。
他のオプションは、げっ歯類に見られるように、PI3-K シグナル伝達経路または G0S2/ATGL 相互作用を介した相互作用であり、直接またはおそらく IGF-1 を介して媒介されます。
ケトーシス/ケトアシドーシスの発生中の人道的な細胞内シグナル伝達経路はよく知られていません。 研究者は、これらの経路とケトアシドーシスの発生の背後にある正確なメカニズムを理解することが非常に重要であると考えています.
研究の種類
入学 (実際)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究場所
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Aarhus C
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Aarhus、Aarhus C、デンマーク、8000
- Institute of Clinical Medicine
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
受講資格のある性別
説明
包含基準:
I型糖尿病の診断, C-ペプチド陰性, 19 < BMI < 26, 書面による同意 -
除外基準:
虚血性心疾患、不整脈、てんかん、その他の内科疾患
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研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:基礎科学
- 割り当て:ランダム化
- 介入モデル:階乗代入
- マスキング:独身
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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介入なし:インスリン
良好な血糖コントロール:被験者の基礎インスリン投与量の50%が、一晩(入院し、午後10時から絶食)および研究日に、インスリンラピッドの連続IV投与として投与されます。 基礎期間は午前7時から午後12時まで。 被験者は、午後12時から午後2時30分まで高インスリン正常血糖クランプを受けます。 3 つの筋肉生検と 3 つの脂肪生検が得られます。 パルミチン酸トレーサー、グルコーストレーサー、尿素トレーサー、チロシンおよびフェニルアラニントレーサーが与えられます。 |
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実験的:インスリン離脱
個々の被験者の通常のインスリン投与量の 10% は、インスリンの連続 IV 投与として、一晩 (入院し、午後 10 時から絶食) 午前 7 時から午後 12 時まで (インスリンなし) の基礎期間に与えられます。 被験者は、午後12時から午後2時30分まで高インスリン正常血糖クランプを受けます。 3 つの筋肉生検と 3 つの脂肪生検が得られます。 パルミチン酸トレーサー、グルコーストレーサー、尿素トレーサー、チロシンおよびフェニルアラニントレーサーが与えられます。 |
研究日の8時まで一晩連続IV投与として、Insuman Rapid(通常の夕方のインスリン量の10%)に置き換えられた通常の(夕方の)インスリンの中止。
他の名前:
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実験的:ノルディトロピン(成長ホルモン)
対照日(良好な血糖コントロール)に一晩、研究日(入院し、午後10時から絶食)に同量のインスリンを投与。 試験当日、0.4 mg の成長ホルモン (ノルディトロピン) のボーラス注射を午前 7 時 5 分に投与します。 -午前7時から午後12時までの基礎期間(良好な血糖コントロール)。被験者は、午後12時から午後2時30分まで高インスリン正常血糖クランプを受けます。 3 つの筋肉生検と 3 つの脂肪生検が得られます。 パルミチン酸トレーサー、グルコーストレーサー、尿素トレーサー、チロシンおよびフェニルアラニントレーサーが与えられます。 |
午前7時5分に0.4mgのGHを投与。勉強の日。
他の名前:
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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細胞内標的タンパク質のリン酸化における変化、および筋肉および脂肪組織における標的遺伝子のmRNA発現における変化として表される、インスリンおよび成長ホルモンのシグナル伝達。
時間枠:各試験日 (腕) に得られた筋肉および脂肪生検: t1= 7.00 (0 分) 午前 t2=11.30 (270 分) 午前 t3= 13.00 午後 (360 分)
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標的タンパク質のリン酸化および標的遺伝子のmRNA(メッセンジャーRNA)発現の変化をウエスタンブロット法で評価。
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各試験日 (腕) に得られた筋肉および脂肪生検: t1= 7.00 (0 分) 午前 t2=11.30 (270 分) 午前 t3= 13.00 午後 (360 分)
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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筋肉および脂肪組織生検における脂質代謝の細胞内マーカーの変化。
時間枠:各試験日 (腕) に得られた筋肉および脂肪生検: t1= 7.00 (0 分) 午前 t2=11.30 (270 分) 午前 t3= 13.00 午後 (360 分)
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ウエスタンブロッティングで評価。
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各試験日 (腕) に得られた筋肉および脂肪生検: t1= 7.00 (0 分) 午前 t2=11.30 (270 分) 午前 t3= 13.00 午後 (360 分)
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代謝
時間枠:試験日間のグルコース、脂肪およびタンパク質代謝の変化。
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グルコース、脂肪、およびタンパク質代謝の変化は、各試験日 (以下の特定の時間) のトレーサー動態および間接熱量測定によって評価されます。 [3H 3]t=80分から260分までのグルコーストレーサー。 [9,10-3H]t=200分から260分のパルミチン酸トレーサー。 [13C] 20分から260分までの尿素トレーサー。 15N-フェニルアラニン トレーサーと 2H4-チロシン トレーサーは 80 分~260 分。 |
試験日間のグルコース、脂肪およびタンパク質代謝の変化。
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グレリン
時間枠:T=0、t=15、t=30、t=45、t=60、t=75、t=90、t=105、t=120、t=150、t=180、t=で得られた血漿サンプル210、t=240、t=270、t=300
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研究日間の循環血漿アシルおよび脱アシルグレリンレベルの変化。
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T=0、t=15、t=30、t=45、t=60、t=75、t=90、t=105、t=120、t=150、t=180、t=で得られた血漿サンプル210、t=240、t=270、t=300
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協力者と研究者
スポンサー
捜査官
- スタディチェア:Niels Møller, MD、Aarhus University / Aarhus University Hospital
- 主任研究者:Thomas Voss, MD、Aarhus University / Aarhus University Hospital
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Moller N, Jorgensen JO. Effects of growth hormone on glucose, lipid, and protein metabolism in human subjects. Endocr Rev. 2009 Apr;30(2):152-77. doi: 10.1210/er.2008-0027. Epub 2009 Feb 24.
- Bezaire V, Mairal A, Ribet C, Lefort C, Girousse A, Jocken J, Laurencikiene J, Anesia R, Rodriguez AM, Ryden M, Stenson BM, Dani C, Ailhaud G, Arner P, Langin D. Contribution of adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase to lipolysis in hMADS adipocytes. J Biol Chem. 2009 Jul 3;284(27):18282-91. doi: 10.1074/jbc.M109.008631. Epub 2009 May 11.
- Haemmerle G, Lass A, Zimmermann R, Gorkiewicz G, Meyer C, Rozman J, Heldmaier G, Maier R, Theussl C, Eder S, Kratky D, Wagner EF, Klingenspor M, Hoefler G, Zechner R. Defective lipolysis and altered energy metabolism in mice lacking adipose triglyceride lipase. Science. 2006 May 5;312(5774):734-7. doi: 10.1126/science.1123965.
- Langin D, Dicker A, Tavernier G, Hoffstedt J, Mairal A, Ryden M, Arner E, Sicard A, Jenkins CM, Viguerie N, van Harmelen V, Gross RW, Holm C, Arner P. Adipocyte lipases and defect of lipolysis in human obesity. Diabetes. 2005 Nov;54(11):3190-7. doi: 10.2337/diabetes.54.11.3190.
- Schweiger M, Schreiber R, Haemmerle G, Lass A, Fledelius C, Jacobsen P, Tornqvist H, Zechner R, Zimmermann R. Adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase are the major enzymes in adipose tissue triacylglycerol catabolism. J Biol Chem. 2006 Dec 29;281(52):40236-41. doi: 10.1074/jbc.M608048200. Epub 2006 Oct 30.
- Zimmermann R, Strauss JG, Haemmerle G, Schoiswohl G, Birner-Gruenberger R, Riederer M, Lass A, Neuberger G, Eisenhaber F, Hermetter A, Zechner R. Fat mobilization in adipose tissue is promoted by adipose triglyceride lipase. Science. 2004 Nov 19;306(5700):1383-6. doi: 10.1126/science.1100747.
- Yang X, Lu X, Lombes M, Rha GB, Chi YI, Guerin TM, Smart EJ, Liu J. The G(0)/G(1) switch gene 2 regulates adipose lipolysis through association with adipose triglyceride lipase. Cell Metab. 2010 Mar 3;11(3):194-205. doi: 10.1016/j.cmet.2010.02.003.
- Nielsen TS, Vendelbo MH, Jessen N, Pedersen SB, Jorgensen JO, Lund S, Moller N. Fasting, but not exercise, increases adipose triglyceride lipase (ATGL) protein and reduces G(0)/G(1) switch gene 2 (G0S2) protein and mRNA content in human adipose tissue. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Aug;96(8):E1293-7. doi: 10.1210/jc.2011-0149. Epub 2011 May 25.
- Teunissen BE, Smeets PJ, Willemsen PH, De Windt LJ, Van der Vusse GJ, Van Bilsen M. Activation of PPARdelta inhibits cardiac fibroblast proliferation and the transdifferentiation into myofibroblasts. Cardiovasc Res. 2007 Aug 1;75(3):519-29. doi: 10.1016/j.cardiores.2007.04.026. Epub 2007 May 3.
- Birzniece V, Sata A, Ho KK. Growth hormone receptor modulators. Rev Endocr Metab Disord. 2009 Jun;10(2):145-56. doi: 10.1007/s11154-008-9089-x.
- Silva CM, Kloth MT, Whatmore AJ, Freeth JS, Anderson N, Laughlin KK, Huynh T, Woodall AJ, Clayton PE. GH and epidermal growth factor signaling in normal and Laron syndrome fibroblasts. Endocrinology. 2002 Jul;143(7):2610-7. doi: 10.1210/endo.143.7.8909.
- Beauville M, Harant I, Crampes F, Riviere D, Tauber MT, Tauber JP, Garrigues M. Effect of long-term rhGH administration in GH-deficient adults on fat cell epinephrine response. Am J Physiol. 1992 Sep;263(3 Pt 1):E467-72. doi: 10.1152/ajpendo.1992.263.3.E467.
- Lauritzen ES, Svart MV, Voss T, Moller N, Bjerre M. Impact of Acutely Increased Endogenous- and Exogenous Ketone Bodies on FGF21 Levels in Humans. Endocr Res. 2021 Feb;46(1):20-27. doi: 10.1080/07435800.2020.1831015. Epub 2020 Oct 19.
- Voss TS, Vendelbo MH, Kampmann U, Pedersen SB, Nielsen TS, Johannsen M, Svart MV, Jessen N, Moller N. Substrate metabolism, hormone and cytokine levels and adipose tissue signalling in individuals with type 1 diabetes after insulin withdrawal and subsequent insulin therapy to model the initiating steps of ketoacidosis. Diabetologia. 2019 Mar;62(3):494-503. doi: 10.1007/s00125-018-4785-x. Epub 2018 Dec 1.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始
一次修了 (実際)
研究の完了 (実際)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (見積もり)
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詳しくは
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I型糖尿病の臨床試験
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Centre Hospitalier Universitaire, Amiens募集
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Yale UniversityNational Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI)積極的、募集していない大動脈弁疾患 | マルファン症候群 | 二尖大動脈弁 | 胸部大動脈瘤 | 胸部大動脈解離 | ターナー症候群 | 血管エーラス・ダンロス症候群 | 家族性胸部大動脈瘤と大動脈解離 | PHACE症候群 | 大動脈症 | 胸部大動脈疾患 | 胸部大動脈破裂 | 上行大動脈疾患 | 下行大動脈疾患 | 上行大動脈瘤 | 下行大動脈瘤 | ロイズ・ディーツ症候群 | シュプリントゼン・ゴールドバーグ症候群 | 常染色体劣性皮膚弛緩症 | 先天性契約性くも指症 | 動脈蛇行症候群 | 二尖大動脈弁関連大動脈疾患アメリカ
インスリン離脱の臨床試験
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Stefan LakämperUniversity Hospital, Zürich募集閉塞性睡眠時無呼吸(OSA) | 運転障害 | CPAP | 日中の過度の眠気 | ドライビングシミュレーターのパフォーマンス | CPAP治療スイス
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Julphar Gulf Pharmaceutical IndustriesParexel; Profil Institut für Stoffwechselforschung GmbH完了
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Julphar Gulf Pharmaceutical IndustriesProfil Institut für Stoffwechselforschung GmbH完了
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Mark D. DeBoer, MD, MSc., MCRUniversity of Virginia完了
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Sanofi終了しました