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Stoffwechselsignale im Muskel- und Fettgewebe nach Insulinentzug und Wachstumshormoninjektion.

23. Februar 2016 aktualisiert von: Thomas Schmidt Voss, University of Aarhus

Stoffwechselsignale im Muskel- und Fettgewebe nach Insulinentzug und Wachstumshormoninjektion bei Diabetes mellitus Typ I, eine klinisch-experimentelle Studie.

Diabetes mellitus Typ I (DM I) ist durch einen Mangel an körpereigenem Insulin gekennzeichnet, und diese Patienten sind zu 100 % auf eine Insulinsubstitution angewiesen, um zu überleben.

Insulin ist ein starkes anaboles Hormon mit seinen primären Zielen in der Leber, dem Skelettmuskelgewebe und -fettgewebe.

Ein schwerer Insulinmangel führt zu erhöhten Blutzuckerspiegeln, Dehydrierung, Elektrolytstörungen, Ketose und damit schließlich zu Ketoazidose.

Insulin-Signalwege sind bekannt.

Wachstumshormon (GH) ist auch ein starkes anaboles Hormon, das für das menschliche Wachstum und die Erhaltung von Proteinen während des Fastens verantwortlich ist. GH (zusammen mit Insulinmangel) induziert die Lipolyse während des Fastens. Es ist nicht bekannt, wie GH seine lipolytischen Wirkungen ausübt.

Ziel ist es, Insulin- und Wachstumshormon (GH)-Signalwege in 3 verschiedenen Zuständen bei Patienten mit DM I zu definieren.

Und um zu testen, ob die ATGL-bedingte Lipolyse im Fettgewebe zur Entstehung von Ketose beiträgt.

  1. Gute glykämische Kontrolle
  2. Insulinmangel (Ketose/Ketoazidose)
  3. Gute glykämische Kontrolle und GH-Injektion

Studienübersicht

Status

Abgeschlossen

Detaillierte Beschreibung

Diabetes mellitus Typ I (DMI) ist durch einen Mangel an körpereigenem Insulin gekennzeichnet, und diese Patienten sind zu 100 % auf eine Insulinsubstitution angewiesen, um zu überleben.

Insulin ist ein starkes anaboles Hormon mit seinen primären Zielen in der Leber, im Skelettmuskelgewebe und im Fettgewebe.

In der Leber verstärkt es die Glykogenese und hemmt die Glykogenolyse und Gluconeogenese.

Im Skelettmuskelgewebe verbessert es den Glukosetransport in die Zelle, Glykogenese, Glykolyse, Glukoseoxidation und Proteinsynthese.

Im Fettgewebe hemmt es die Lipolyse und fördert die Lipogenese.

Dies weist darauf hin, dass ein Abfall des Insulinspiegels im Serum zu einem erhöhten Blutzuckerspiegel und erhöhten FFA-Spiegeln (freien Fettsäuren) im Blut führt, was schließlich zur Ketonproduktion führt.

Wenn dieser Zustand nicht behoben wird, führt dies zu einer potenziell lebensbedrohlichen Ketoazidose, die bei Krankenhauseinweisung mit Flüssigkeitstherapie, Elektrolyt- und Insulinsubstitution behoben werden muss.

Insulin wurde gründlich untersucht und die Signalwege sind gut bekannt.

Ein interessanter Weg ist die Unterdrückung der Lipolyse. Die wichtigste und geschwindigkeitsbegrenzende Lipase bei der Triglyceridhydrolyse ist die Fetttriglyceridlipase (ATGL)(1-5). Eine Verbindung zwischen ATGL und dem G0/G1-Switch-Gen (G0S2) wurde gezeigt (6,7). Während der Lipolyse wird ATGL hochreguliert und G0S2 herunterreguliert und die Promotorregion für G0S2 hat Bindungsstellen für Glucose, Insulin-abhängige Transkriptionsfaktoren und Peroxisom-Proliferator-aktivierte Rezeptoren y (PPAR-y)(8).

Eine frühere Studie hat gezeigt, dass Fasten G0S2 reduziert und ATGL im menschlichen Fettgewebe erhöht(7).

Es könnte angenommen werden, dass die anti-lipolytischen Wirkungen von Insulin durch eine erhöhte Transkription von G0S2 vermittelt werden, die dann wiederum ATGL hemmt. Umgekehrt erhöhte Lipolyse bei Insulinmangel.

Wachstumshormon und wachstumshormonabhängige Synthese von IGF-1 (Insulinähnlicher Wachstumsfaktor - 1) ist entscheidend für das menschliche Wachstum vor und während der Adoleszenz. Als Erwachsener sind GH und IGF-1 immer noch potente Wachstumsfaktoren und üben auch wesentliche regulatorische Eigenschaften auf den menschlichen Stoffwechsel aus (9,10).

GH-Signalwege verlaufen über den GH-Rezeptor, der die Rezeptor-assoziierte Janus-Kinase 2 (JAK2) phosphoryliert und somit aktiviert. Die Signale von diesem Punkt wurden in zahlreichen Studien untersucht.

Bei Nagetieren hat sich gezeigt, dass das Signal auf drei Wegen verläuft (9,10). Studien an menschlichen Fibroblastenzellen konnten zwei dieser Wege unterstützen (MAPK – Mitogen-aktivierte Proteinkinase und STAT – Signalwandler und Aktivator der Transkription). aber nicht über das Insulinrezeptorsubstrat (IRS) und den Phosphatidylinositol-3-kinase (PI3-K)-Weg.

In Studien am Menschen (in vivo) war eine GH-Stimulation und Phosphorylierung von STAT5 offensichtlich, jedoch wurde ein Zusammenhang zwischen GH-Stimulation und Aktivierung von MAPK und PI3-K nicht gezeigt (11).

Letzteres ist interessant und bemerkenswert angesichts der insulinagonistischen und antagonistischen Wirkungen von GH.

GH stimuliert die Lipolyse, aber wie genau die lipolytischen Eigenschaften von GH vermittelt werden, ist nicht vollständig geklärt. Es wird jedoch gezeigt, dass GH eine Wirkung auf die hormonsensitive Lipase (12) (HSL) hat.

Andere Optionen könnten, wie bei Nagetieren gefunden, eine Interaktion über den PI3-K-Signalweg oder über eine G0S2/ATGL-Interaktion sein, entweder direkt oder möglicherweise vermittelt durch IGF-1.

Menschliche intrazelluläre Signalwege während der Entwicklung von Ketose/Ketoazidose sind nicht bekannt. Die Forscher glauben, dass das Verständnis dieser Signalwege und der genauen Mechanismen hinter der Entwicklung der Ketoazidose von großer Bedeutung ist.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

9

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

    • Aarhus C
      • Aarhus, Aarhus C, Dänemark, 8000
        • Institute of clinical medicine

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

18 Jahre bis 65 Jahre (Erwachsene, Älterer Erwachsener)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Männlich

Beschreibung

Einschlusskriterien:

Diagnose Diabetes mellitus Typ I, C-Peptid-negativ, 19 < BMI < 26, Einverständniserklärung -

Ausschlusskriterien:

Ischämische Herzkrankheit, Herzrhythmusstörungen, Epilepsie, andere medizinische Erkrankungen

-

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Fakultätszuweisung
  • Maskierung: Single

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Kein Eingriff: Insulin

gute glykämische Kontrolle: 50 % der Basalinsulindosis des Probanden werden als kontinuierliche IV-Verabreichung von Insuman Rapid über Nacht (Krankenhausaufenthalt und Fasten ab 22:00 Uhr) und am Studientag verabreicht. Basalzeit von 7.00 bis 12.00 Uhr. Das Subjekt wird von 12.00 Uhr bis 14.30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen.

Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben.

Experimental: Insulinentzug

10 % der regulären Insulindosis des einzelnen Probanden werden als kontinuierliche i.v.-Gabe von Insuman rapid über Nacht (Krankenhaus und nüchtern ab 22.00 Uhr) Basalzeit von 7.00 bis 12.00 Uhr (ohne Insulin) verabreicht. Das Subjekt wird von 12.00 Uhr bis 14.30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen.

Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben.

Absetzen des üblichen (Abend-)Insulins, ersetzt durch Insuman Rapid (10 % der Menge des üblichen Abendinsulins) als kontinuierliche i.v.-Verabreichung über Nacht bis 8 Uhr am Studientag.
Andere Namen:
  • Insuman Rapid
Experimental: Norditropin (Wachstumshormon)

Gleiche Insulinmenge am Kontrolltag (gute glykämische Kontrolle) über Nacht und am Studientag (Krankenhaus und nüchtern ab 22 Uhr). Am Studientag wird um 7.05 Uhr eine Bolusinjektion von 0,4 mg Wachstumshormon (Norditropin) verabreicht. Basalperiode von 7:00 bis 12:00 Uhr (gute glykämische Kontrolle). Der Proband wird von 12:00 bis 14:30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen.

Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben.

0,4 mg GH verabreicht um 7.05 Uhr am Studientag.
Andere Namen:
  • Wachstumshormon

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Insulin- und Wachstumshormonsignalisierung, ausgedrückt als ÄNDERUNG der Phosphorylierung von intrazellulären Zielproteinen und ÄNDERUNG der mRNA-Expression von Zielgenen in Muskel- und Fettgewebe.
Zeitfenster: An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
Veränderung der Phosphorylierung von Zielproteinen und mRNA (Messenger-RNA)-Expression von Zielgenen, bewertet mit Western-Blotting-Technik.
An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Veränderung intrazellulärer Marker des Lipidstoffwechsels in Muskel- und Fettgewebsbiopsien.
Zeitfenster: An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
Bewertet durch Western Blotting.
An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
Stoffwechsel
Zeitfenster: Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels zwischen den Studientagen.

Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels, bestimmt durch Tracer-Kinetik an jedem Studientag (spezifische Zeiten unten) und durch indirekte Kalorimetrie.

[3H 3]Glucose-Tracer von t=80min - 260min. [9,10-3H]Palmitinsäure-Tracer von t = 200 min - 260 min. [13C] Harnstoff-Tracer von 20min - 260min.

15N-Phenylalanin-Tracer und 2H4-Tyrosin-Tracer von 80 min - 260 min.

Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels zwischen den Studientagen.
Ghrelin
Zeitfenster: Plasmaproben erhalten bei t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300
Veränderung der Acyl- und Desacyl-Ghrelin-Spiegel im zirkulierenden Plasma zwischen den Studientagen.
Plasmaproben erhalten bei t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Studienstuhl: Niels Møller, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital
  • Hauptermittler: Thomas Voss, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Allgemeine Veröffentlichungen

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn

1. Mai 2014

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

1. September 2015

Studienabschluss (Tatsächlich)

1. September 2015

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

20. Februar 2014

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

28. Februar 2014

Zuerst gepostet (Schätzen)

4. März 2014

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Schätzen)

24. Februar 2016

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

23. Februar 2016

Zuletzt verifiziert

1. Februar 2016

Mehr Informationen

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur Diabetes mellitus Typ I

Klinische Studien zur Insulinentzug

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