- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT02077348
Stoffwechselsignale im Muskel- und Fettgewebe nach Insulinentzug und Wachstumshormoninjektion.
Stoffwechselsignale im Muskel- und Fettgewebe nach Insulinentzug und Wachstumshormoninjektion bei Diabetes mellitus Typ I, eine klinisch-experimentelle Studie.
Diabetes mellitus Typ I (DM I) ist durch einen Mangel an körpereigenem Insulin gekennzeichnet, und diese Patienten sind zu 100 % auf eine Insulinsubstitution angewiesen, um zu überleben.
Insulin ist ein starkes anaboles Hormon mit seinen primären Zielen in der Leber, dem Skelettmuskelgewebe und -fettgewebe.
Ein schwerer Insulinmangel führt zu erhöhten Blutzuckerspiegeln, Dehydrierung, Elektrolytstörungen, Ketose und damit schließlich zu Ketoazidose.
Insulin-Signalwege sind bekannt.
Wachstumshormon (GH) ist auch ein starkes anaboles Hormon, das für das menschliche Wachstum und die Erhaltung von Proteinen während des Fastens verantwortlich ist. GH (zusammen mit Insulinmangel) induziert die Lipolyse während des Fastens. Es ist nicht bekannt, wie GH seine lipolytischen Wirkungen ausübt.
Ziel ist es, Insulin- und Wachstumshormon (GH)-Signalwege in 3 verschiedenen Zuständen bei Patienten mit DM I zu definieren.
Und um zu testen, ob die ATGL-bedingte Lipolyse im Fettgewebe zur Entstehung von Ketose beiträgt.
- Gute glykämische Kontrolle
- Insulinmangel (Ketose/Ketoazidose)
- Gute glykämische Kontrolle und GH-Injektion
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Diabetes mellitus Typ I (DMI) ist durch einen Mangel an körpereigenem Insulin gekennzeichnet, und diese Patienten sind zu 100 % auf eine Insulinsubstitution angewiesen, um zu überleben.
Insulin ist ein starkes anaboles Hormon mit seinen primären Zielen in der Leber, im Skelettmuskelgewebe und im Fettgewebe.
In der Leber verstärkt es die Glykogenese und hemmt die Glykogenolyse und Gluconeogenese.
Im Skelettmuskelgewebe verbessert es den Glukosetransport in die Zelle, Glykogenese, Glykolyse, Glukoseoxidation und Proteinsynthese.
Im Fettgewebe hemmt es die Lipolyse und fördert die Lipogenese.
Dies weist darauf hin, dass ein Abfall des Insulinspiegels im Serum zu einem erhöhten Blutzuckerspiegel und erhöhten FFA-Spiegeln (freien Fettsäuren) im Blut führt, was schließlich zur Ketonproduktion führt.
Wenn dieser Zustand nicht behoben wird, führt dies zu einer potenziell lebensbedrohlichen Ketoazidose, die bei Krankenhauseinweisung mit Flüssigkeitstherapie, Elektrolyt- und Insulinsubstitution behoben werden muss.
Insulin wurde gründlich untersucht und die Signalwege sind gut bekannt.
Ein interessanter Weg ist die Unterdrückung der Lipolyse. Die wichtigste und geschwindigkeitsbegrenzende Lipase bei der Triglyceridhydrolyse ist die Fetttriglyceridlipase (ATGL)(1-5). Eine Verbindung zwischen ATGL und dem G0/G1-Switch-Gen (G0S2) wurde gezeigt (6,7). Während der Lipolyse wird ATGL hochreguliert und G0S2 herunterreguliert und die Promotorregion für G0S2 hat Bindungsstellen für Glucose, Insulin-abhängige Transkriptionsfaktoren und Peroxisom-Proliferator-aktivierte Rezeptoren y (PPAR-y)(8).
Eine frühere Studie hat gezeigt, dass Fasten G0S2 reduziert und ATGL im menschlichen Fettgewebe erhöht(7).
Es könnte angenommen werden, dass die anti-lipolytischen Wirkungen von Insulin durch eine erhöhte Transkription von G0S2 vermittelt werden, die dann wiederum ATGL hemmt. Umgekehrt erhöhte Lipolyse bei Insulinmangel.
Wachstumshormon und wachstumshormonabhängige Synthese von IGF-1 (Insulinähnlicher Wachstumsfaktor - 1) ist entscheidend für das menschliche Wachstum vor und während der Adoleszenz. Als Erwachsener sind GH und IGF-1 immer noch potente Wachstumsfaktoren und üben auch wesentliche regulatorische Eigenschaften auf den menschlichen Stoffwechsel aus (9,10).
GH-Signalwege verlaufen über den GH-Rezeptor, der die Rezeptor-assoziierte Janus-Kinase 2 (JAK2) phosphoryliert und somit aktiviert. Die Signale von diesem Punkt wurden in zahlreichen Studien untersucht.
Bei Nagetieren hat sich gezeigt, dass das Signal auf drei Wegen verläuft (9,10). Studien an menschlichen Fibroblastenzellen konnten zwei dieser Wege unterstützen (MAPK – Mitogen-aktivierte Proteinkinase und STAT – Signalwandler und Aktivator der Transkription). aber nicht über das Insulinrezeptorsubstrat (IRS) und den Phosphatidylinositol-3-kinase (PI3-K)-Weg.
In Studien am Menschen (in vivo) war eine GH-Stimulation und Phosphorylierung von STAT5 offensichtlich, jedoch wurde ein Zusammenhang zwischen GH-Stimulation und Aktivierung von MAPK und PI3-K nicht gezeigt (11).
Letzteres ist interessant und bemerkenswert angesichts der insulinagonistischen und antagonistischen Wirkungen von GH.
GH stimuliert die Lipolyse, aber wie genau die lipolytischen Eigenschaften von GH vermittelt werden, ist nicht vollständig geklärt. Es wird jedoch gezeigt, dass GH eine Wirkung auf die hormonsensitive Lipase (12) (HSL) hat.
Andere Optionen könnten, wie bei Nagetieren gefunden, eine Interaktion über den PI3-K-Signalweg oder über eine G0S2/ATGL-Interaktion sein, entweder direkt oder möglicherweise vermittelt durch IGF-1.
Menschliche intrazelluläre Signalwege während der Entwicklung von Ketose/Ketoazidose sind nicht bekannt. Die Forscher glauben, dass das Verständnis dieser Signalwege und der genauen Mechanismen hinter der Entwicklung der Ketoazidose von großer Bedeutung ist.
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
Aarhus C
-
Aarhus, Aarhus C, Dänemark, 8000
- Institute of clinical medicine
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
Diagnose Diabetes mellitus Typ I, C-Peptid-negativ, 19 < BMI < 26, Einverständniserklärung -
Ausschlusskriterien:
Ischämische Herzkrankheit, Herzrhythmusstörungen, Epilepsie, andere medizinische Erkrankungen
-
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Fakultätszuweisung
- Maskierung: Single
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Kein Eingriff: Insulin
gute glykämische Kontrolle: 50 % der Basalinsulindosis des Probanden werden als kontinuierliche IV-Verabreichung von Insuman Rapid über Nacht (Krankenhausaufenthalt und Fasten ab 22:00 Uhr) und am Studientag verabreicht. Basalzeit von 7.00 bis 12.00 Uhr. Das Subjekt wird von 12.00 Uhr bis 14.30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen. Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben. |
|
Experimental: Insulinentzug
10 % der regulären Insulindosis des einzelnen Probanden werden als kontinuierliche i.v.-Gabe von Insuman rapid über Nacht (Krankenhaus und nüchtern ab 22.00 Uhr) Basalzeit von 7.00 bis 12.00 Uhr (ohne Insulin) verabreicht. Das Subjekt wird von 12.00 Uhr bis 14.30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen. Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben. |
Absetzen des üblichen (Abend-)Insulins, ersetzt durch Insuman Rapid (10 % der Menge des üblichen Abendinsulins) als kontinuierliche i.v.-Verabreichung über Nacht bis 8 Uhr am Studientag.
Andere Namen:
|
Experimental: Norditropin (Wachstumshormon)
Gleiche Insulinmenge am Kontrolltag (gute glykämische Kontrolle) über Nacht und am Studientag (Krankenhaus und nüchtern ab 22 Uhr). Am Studientag wird um 7.05 Uhr eine Bolusinjektion von 0,4 mg Wachstumshormon (Norditropin) verabreicht. Basalperiode von 7:00 bis 12:00 Uhr (gute glykämische Kontrolle). Der Proband wird von 12:00 bis 14:30 Uhr einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme unterzogen. Es werden drei Muskel- und drei Fettbiopsien entnommen. Es werden ein Palmitinsäure-Tracer, ein Glukose-Tracer, ein Harnstoff-Tracer, ein Tyrosin- und ein Phenylalanin-Tracer gegeben. |
0,4 mg GH verabreicht um 7.05 Uhr am Studientag.
Andere Namen:
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Insulin- und Wachstumshormonsignalisierung, ausgedrückt als ÄNDERUNG der Phosphorylierung von intrazellulären Zielproteinen und ÄNDERUNG der mRNA-Expression von Zielgenen in Muskel- und Fettgewebe.
Zeitfenster: An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
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Veränderung der Phosphorylierung von Zielproteinen und mRNA (Messenger-RNA)-Expression von Zielgenen, bewertet mit Western-Blotting-Technik.
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An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Veränderung intrazellulärer Marker des Lipidstoffwechsels in Muskel- und Fettgewebsbiopsien.
Zeitfenster: An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
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Bewertet durch Western Blotting.
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An jedem Studientag (Arm) gewonnene Muskel- und Fettbiopsien: t1= 7.00 (0 min) morgens t2= 11.30 (270 min) morgens t3= 13.00 Uhr (360 min)
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Stoffwechsel
Zeitfenster: Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels zwischen den Studientagen.
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Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels, bestimmt durch Tracer-Kinetik an jedem Studientag (spezifische Zeiten unten) und durch indirekte Kalorimetrie. [3H 3]Glucose-Tracer von t=80min - 260min. [9,10-3H]Palmitinsäure-Tracer von t = 200 min - 260 min. [13C] Harnstoff-Tracer von 20min - 260min. 15N-Phenylalanin-Tracer und 2H4-Tyrosin-Tracer von 80 min - 260 min. |
Veränderung des Glukose-, Fett- und Proteinstoffwechsels zwischen den Studientagen.
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Ghrelin
Zeitfenster: Plasmaproben erhalten bei t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300
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Veränderung der Acyl- und Desacyl-Ghrelin-Spiegel im zirkulierenden Plasma zwischen den Studientagen.
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Plasmaproben erhalten bei t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Studienstuhl: Niels Møller, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital
- Hauptermittler: Thomas Voss, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Moller N, Jorgensen JO. Effects of growth hormone on glucose, lipid, and protein metabolism in human subjects. Endocr Rev. 2009 Apr;30(2):152-77. doi: 10.1210/er.2008-0027. Epub 2009 Feb 24.
- Bezaire V, Mairal A, Ribet C, Lefort C, Girousse A, Jocken J, Laurencikiene J, Anesia R, Rodriguez AM, Ryden M, Stenson BM, Dani C, Ailhaud G, Arner P, Langin D. Contribution of adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase to lipolysis in hMADS adipocytes. J Biol Chem. 2009 Jul 3;284(27):18282-91. doi: 10.1074/jbc.M109.008631. Epub 2009 May 11.
- Haemmerle G, Lass A, Zimmermann R, Gorkiewicz G, Meyer C, Rozman J, Heldmaier G, Maier R, Theussl C, Eder S, Kratky D, Wagner EF, Klingenspor M, Hoefler G, Zechner R. Defective lipolysis and altered energy metabolism in mice lacking adipose triglyceride lipase. Science. 2006 May 5;312(5774):734-7. doi: 10.1126/science.1123965.
- Langin D, Dicker A, Tavernier G, Hoffstedt J, Mairal A, Ryden M, Arner E, Sicard A, Jenkins CM, Viguerie N, van Harmelen V, Gross RW, Holm C, Arner P. Adipocyte lipases and defect of lipolysis in human obesity. Diabetes. 2005 Nov;54(11):3190-7. doi: 10.2337/diabetes.54.11.3190.
- Schweiger M, Schreiber R, Haemmerle G, Lass A, Fledelius C, Jacobsen P, Tornqvist H, Zechner R, Zimmermann R. Adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase are the major enzymes in adipose tissue triacylglycerol catabolism. J Biol Chem. 2006 Dec 29;281(52):40236-41. doi: 10.1074/jbc.M608048200. Epub 2006 Oct 30.
- Zimmermann R, Strauss JG, Haemmerle G, Schoiswohl G, Birner-Gruenberger R, Riederer M, Lass A, Neuberger G, Eisenhaber F, Hermetter A, Zechner R. Fat mobilization in adipose tissue is promoted by adipose triglyceride lipase. Science. 2004 Nov 19;306(5700):1383-6. doi: 10.1126/science.1100747.
- Yang X, Lu X, Lombes M, Rha GB, Chi YI, Guerin TM, Smart EJ, Liu J. The G(0)/G(1) switch gene 2 regulates adipose lipolysis through association with adipose triglyceride lipase. Cell Metab. 2010 Mar 3;11(3):194-205. doi: 10.1016/j.cmet.2010.02.003.
- Nielsen TS, Vendelbo MH, Jessen N, Pedersen SB, Jorgensen JO, Lund S, Moller N. Fasting, but not exercise, increases adipose triglyceride lipase (ATGL) protein and reduces G(0)/G(1) switch gene 2 (G0S2) protein and mRNA content in human adipose tissue. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Aug;96(8):E1293-7. doi: 10.1210/jc.2011-0149. Epub 2011 May 25.
- Teunissen BE, Smeets PJ, Willemsen PH, De Windt LJ, Van der Vusse GJ, Van Bilsen M. Activation of PPARdelta inhibits cardiac fibroblast proliferation and the transdifferentiation into myofibroblasts. Cardiovasc Res. 2007 Aug 1;75(3):519-29. doi: 10.1016/j.cardiores.2007.04.026. Epub 2007 May 3.
- Birzniece V, Sata A, Ho KK. Growth hormone receptor modulators. Rev Endocr Metab Disord. 2009 Jun;10(2):145-56. doi: 10.1007/s11154-008-9089-x.
- Silva CM, Kloth MT, Whatmore AJ, Freeth JS, Anderson N, Laughlin KK, Huynh T, Woodall AJ, Clayton PE. GH and epidermal growth factor signaling in normal and Laron syndrome fibroblasts. Endocrinology. 2002 Jul;143(7):2610-7. doi: 10.1210/endo.143.7.8909.
- Beauville M, Harant I, Crampes F, Riviere D, Tauber MT, Tauber JP, Garrigues M. Effect of long-term rhGH administration in GH-deficient adults on fat cell epinephrine response. Am J Physiol. 1992 Sep;263(3 Pt 1):E467-72. doi: 10.1152/ajpendo.1992.263.3.E467.
- Lauritzen ES, Svart MV, Voss T, Moller N, Bjerre M. Impact of Acutely Increased Endogenous- and Exogenous Ketone Bodies on FGF21 Levels in Humans. Endocr Res. 2021 Feb;46(1):20-27. doi: 10.1080/07435800.2020.1831015. Epub 2020 Oct 19.
- Voss TS, Vendelbo MH, Kampmann U, Pedersen SB, Nielsen TS, Johannsen M, Svart MV, Jessen N, Moller N. Substrate metabolism, hormone and cytokine levels and adipose tissue signalling in individuals with type 1 diabetes after insulin withdrawal and subsequent insulin therapy to model the initiating steps of ketoacidosis. Diabetologia. 2019 Mar;62(3):494-503. doi: 10.1007/s00125-018-4785-x. Epub 2018 Dec 1.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Schätzen)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Schätzen)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
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Schlüsselwörter
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Andere Studien-ID-Nummern
- 1-10-72-247-13 (Andere Kennung: Danish Ethics Committee)
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