- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT02077348
Sinalização metabólica no tecido muscular e adiposo após retirada de insulina e injeção de hormônio do crescimento.
Sinalização metabólica no tecido muscular e adiposo após retirada de insulina e injeção de hormônio do crescimento em diabetes mellitus tipo I, um estudo clínico experimental.
O diabetes mellitus tipo I (DM I) é caracterizado pela falta de insulina endógena e esses pacientes são 100% dependentes da reposição de insulina para sobreviver.
A insulina é um potente hormônio anabólico com alvos primários no fígado, no tecido muscular esquelético e no tecido adiposo.
A falta grave de insulina leva a níveis elevados de glicose no sangue, desidratação, distúrbios eletrolíticos, cetose e, portanto, eventualmente cetoacidose.
As vias de sinalização da insulina são bem conhecidas.
O hormônio do crescimento (GH) também é um potente hormônio anabólico, responsável pelo crescimento humano e preservação de proteínas durante o jejum. O GH (juntamente com a falta de insulina) induz a lipólise durante o jejum. Não se sabe como o GH exerce suas ações lipolíticas.
O objetivo é definir as vias de sinalização da insulina e do hormônio do crescimento (GH) em 3 estados diferentes em pacientes com DM I.
E testar se a lipólise relacionada ao ATGL no tecido adiposo contribui para o desenvolvimento de cetose.
- Bom controle glicêmico
- Falta de insulina (cetose/cetoacidose)
- Bom controle glicêmico e injeção de GH
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
O diabetes mellitus tipo I (DMI ) é caracterizado pela falta de insulina endógena e esses pacientes são 100% dependentes da reposição de insulina para sobreviver.
A insulina é um potente hormônio anabólico com seus principais alvos no fígado, no tecido muscular esquelético e no tecido adiposo.
No fígado, aumenta a glicogênese e inibe a glicogenólise e a gliconeogênese.
No tecido muscular esquelético, aumenta o transporte de glicose para dentro da célula, a glicogênese, a glicólise, a oxidação da glicose e a síntese de proteínas.
No tecido adiposo, inibe a lipólise e aumenta a lipogênese.
Isso indica que uma queda nos níveis séricos de insulina leva ao aumento da glicose no sangue e ao aumento dos níveis de FFA (ácidos graxos livres) no sangue - eventualmente levando à produção de cetona.
Se esta condição não for corrigida, levará à cetoacidose, que é uma condição potencialmente fatal, que deve ser corrigida na admissão hospitalar com fluidoterapia, substituição de eletrólitos e insulina.
A insulina foi estudada minuciosamente e as vias de sinalização são bem conhecidas.
Uma via interessante é a supressão da lipólise. A lipase mais importante e limitante da taxa na hidrólise de triglicerídeos é a lipase de triglicerídeos adiposos (ATGL)(1-5). Uma conexão entre o ATGL e o gene switch G0/G1 (G0S2) foi mostrada (6,7). Durante a lipólise, ATGL é regulado positivamente e G0S2 é regulado negativamente e a região promotora de G0S2 possui sítios de ligação para glicose, fatores de transcrição dependentes de insulina e receptores ativados por proliferadores de peroxissoma (PPAR-y)(8).
Um estudo anterior mostrou que o jejum reduz o G0S2 e aumenta o ATGL no tecido adiposo humano(7).
Pode-se pensar que os efeitos antilipolíticos da insulina são mediados pelo aumento da transcrição de G0S2 que, por sua vez, inibe o ATGL. Por outro lado, aumento da lipólise durante a falta de insulina.
O hormônio do crescimento e a síntese dependente do hormônio do crescimento de IGF-1 (fator de crescimento semelhante à insulina - 1) são cruciais para o crescimento humano antes e durante a adolescência. Como um adulto, o GH e o IGF-1 ainda são potentes fatores de crescimento e também exercem propriedades regulatórias essenciais no metabolismo humano (9,10)
As vias de sinalização de GH passam pelo receptor de GH, que fosforila e, assim, ativa o receptor associado Janus Kinase 2 (JAK2). Os sinais deste ponto foram examinados em numerosos estudos.
Em roedores, foi demonstrado que o sinal funciona de três maneiras (9,10) Estudos em células de fibroblastos humanos foram capazes de apoiar duas dessas vias (MAPK - proteína quinase ativada por mitógeno e STAT - transdutor de sinal e ativador da transcrição), mas não pela via do substrato do receptor de insulina (IRS) e da fosfatidilinositol 3-quinase (PI3-K).
Em estudos humanos (in vivo), a estimulação de GH e a fosforilação de STAT5 foram evidentes, no entanto, uma associação entre a estimulação de GH e a ativação de MAPK e PI3-K não foi demonstrada (11).
Este último é interessante e notável, considerando os efeitos insulino-agonistas e antagonistas do GH.
O GH estimula a lipólise, mas exatamente como as propriedades lipolíticas do GH são mediadas não é totalmente compreendido. No entanto, foi demonstrado que o GH tem efeito sobre a lipase sensível a hormônio (12) (HSL).
Outras opções poderiam ser, como encontradas em roedores, interação via via de sinalização PI3-K ou via interação G0S2/ATGL, diretamente ou talvez mediada por IGF-1.
As vias de sinalização intracelular humana durante o desenvolvimento de cetose/cetoacidose não são bem conhecidas. Os pesquisadores acreditam que entender essas vias e os mecanismos exatos por trás do desenvolvimento da cetoacidose é de grande importância.
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Locais de estudo
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Aarhus C
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Aarhus, Aarhus C, Dinamarca, 8000
- Institute of Clinical Medicine
-
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
Diagnóstico de Diabetes Mellitus Tipo I, peptídeo C negativo, 19 < IMC < 26, Consentimento por escrito -
Critério de exclusão:
Doença isquêmica do coração, Arritmia cardíaca, Epilepsia, Outras doenças médicas
-
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Ciência básica
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição fatorial
- Mascaramento: Solteiro
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Sem intervenção: Insulina
bom controle glicêmico: 50% da dosagem basal de insulina do indivíduo será administrado como uma administração IV contínua de insulina rápida durante a noite (hospitalizado e em jejum a partir das 22h) e no dia do estudo. Período basal das 7h00 às 12h00. O sujeito será submetido a clamp euglicêmico hiperinsulinêmico das 12h00 às 14h30. Serão obtidas três biópsias musculares e três de gordura. Um marcador de ácido palmítico, um marcador de glicose, um marcador de uréia, marcadores de tirosina e fenilalanina serão fornecidos. |
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Experimental: Retirada de insulina
10% da dosagem regular de insulina do sujeito individual será administrada como uma administração IV contínua de insulina rápida durante a noite (hospitalizado e em jejum a partir das 22h) Período basal das 7h00 às 12h00 (sem insulina). O sujeito será submetido a clamp euglicêmico hiperinsulinêmico das 12h00 às 14h30. Serão obtidas três biópsias musculares e três de gordura. Um marcador de ácido palmítico, um marcador de glicose, um marcador de uréia, marcadores de tirosina e fenilalanina serão fornecidos. |
Suspensão da insulina habitual (à noite), substituída por Insuman Rapid (10% da quantidade de insulina habitual à noite) como uma administração IV contínua durante a noite até às 8 horas do dia do estudo.
Outros nomes:
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Experimental: Norditropina (hormônio do crescimento)
Mesma quantidade de insulina administrada no dia controle (bom controle glicêmico) durante a noite e no dia do estudo (hospitalização e jejum a partir das 22h). No dia do estudo, uma injeção em bolus de 0,4 mg de hormônio de crescimento (Norditropin) será administrada às 7h05. Período basal das 7h00 às 12h00 (bom controle glicêmico). O sujeito será submetido a clamp euglicêmico hiperinsulinêmico das 12h00 às 14h30. Serão obtidas três biópsias musculares e três de gordura. Um marcador de ácido palmítico, um marcador de glicose, um marcador de uréia, marcadores de tirosina e fenilalanina serão fornecidos. |
0,4 mg de GH administrado às 7h05. no dia de estudo.
Outros nomes:
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Sinalização de insulina e hormônio do crescimento, expressa como MUDANÇA na fosforilação de proteínas-alvo intracelulares e MUDANÇA na expressão de mRNA de genes-alvo em tecido muscular e adiposo.
Prazo: Biópsias de músculo e gordura obtidas em cada dia de estudo (braço): t1= 7,00 (0 min) am t2=11,30 (270min) am t3= 13h00 (360min)
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Alteração na fosforilação de proteínas-alvo e expressão de mRNA (RNA mensageiro) de genes-alvo avaliada pela técnica de western blotting.
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Biópsias de músculo e gordura obtidas em cada dia de estudo (braço): t1= 7,00 (0 min) am t2=11,30 (270min) am t3= 13h00 (360min)
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Alteração nos marcadores intracelulares do metabolismo lipídico em biópsias de tecido muscular e adiposo.
Prazo: Biópsias de músculo e gordura obtidas em cada dia de estudo (braço): t1= 7,00 (0 min) am t2=11,30 (270min) am t3= 13h00 (360min)
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Avaliado por Western Blotting.
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Biópsias de músculo e gordura obtidas em cada dia de estudo (braço): t1= 7,00 (0 min) am t2=11,30 (270min) am t3= 13h00 (360min)
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Metabolismo
Prazo: Mudança no metabolismo de glicose, gordura e proteína entre os dias de estudo.
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Mudança no metabolismo de glicose, gordura e proteína avaliada pela cinética do marcador em cada dia de estudo (horários específicos abaixo) e por calorimetria indireta. [3H 3] Traçador de glicose de t=80min - 260min. [9,10-3H]Traçador de ácido palmítico de t=200min - 260min. [13C] Marcador de ureia de 20min - 260min. Marcador 15N-fenilalanina e marcador 2H4-tirosina de 80 min - 260 min. |
Mudança no metabolismo de glicose, gordura e proteína entre os dias de estudo.
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Grelina
Prazo: Amostras de plasma obtidas em t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300
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Alteração nos níveis plasmáticos circulantes de acil- e desacil-grelina entre os dias do estudo.
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Amostras de plasma obtidas em t=0, t=15, t=30, t=45, t=60, t=75, t=90, t=105, t=120, t=150, t=180, t= 210, t=240, t=270, t=300
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Cadeira de estudo: Niels Møller, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital
- Investigador principal: Thomas Voss, MD, Aarhus University / Aarhus University Hospital
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Moller N, Jorgensen JO. Effects of growth hormone on glucose, lipid, and protein metabolism in human subjects. Endocr Rev. 2009 Apr;30(2):152-77. doi: 10.1210/er.2008-0027. Epub 2009 Feb 24.
- Bezaire V, Mairal A, Ribet C, Lefort C, Girousse A, Jocken J, Laurencikiene J, Anesia R, Rodriguez AM, Ryden M, Stenson BM, Dani C, Ailhaud G, Arner P, Langin D. Contribution of adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase to lipolysis in hMADS adipocytes. J Biol Chem. 2009 Jul 3;284(27):18282-91. doi: 10.1074/jbc.M109.008631. Epub 2009 May 11.
- Haemmerle G, Lass A, Zimmermann R, Gorkiewicz G, Meyer C, Rozman J, Heldmaier G, Maier R, Theussl C, Eder S, Kratky D, Wagner EF, Klingenspor M, Hoefler G, Zechner R. Defective lipolysis and altered energy metabolism in mice lacking adipose triglyceride lipase. Science. 2006 May 5;312(5774):734-7. doi: 10.1126/science.1123965.
- Langin D, Dicker A, Tavernier G, Hoffstedt J, Mairal A, Ryden M, Arner E, Sicard A, Jenkins CM, Viguerie N, van Harmelen V, Gross RW, Holm C, Arner P. Adipocyte lipases and defect of lipolysis in human obesity. Diabetes. 2005 Nov;54(11):3190-7. doi: 10.2337/diabetes.54.11.3190.
- Schweiger M, Schreiber R, Haemmerle G, Lass A, Fledelius C, Jacobsen P, Tornqvist H, Zechner R, Zimmermann R. Adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase are the major enzymes in adipose tissue triacylglycerol catabolism. J Biol Chem. 2006 Dec 29;281(52):40236-41. doi: 10.1074/jbc.M608048200. Epub 2006 Oct 30.
- Zimmermann R, Strauss JG, Haemmerle G, Schoiswohl G, Birner-Gruenberger R, Riederer M, Lass A, Neuberger G, Eisenhaber F, Hermetter A, Zechner R. Fat mobilization in adipose tissue is promoted by adipose triglyceride lipase. Science. 2004 Nov 19;306(5700):1383-6. doi: 10.1126/science.1100747.
- Yang X, Lu X, Lombes M, Rha GB, Chi YI, Guerin TM, Smart EJ, Liu J. The G(0)/G(1) switch gene 2 regulates adipose lipolysis through association with adipose triglyceride lipase. Cell Metab. 2010 Mar 3;11(3):194-205. doi: 10.1016/j.cmet.2010.02.003.
- Nielsen TS, Vendelbo MH, Jessen N, Pedersen SB, Jorgensen JO, Lund S, Moller N. Fasting, but not exercise, increases adipose triglyceride lipase (ATGL) protein and reduces G(0)/G(1) switch gene 2 (G0S2) protein and mRNA content in human adipose tissue. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Aug;96(8):E1293-7. doi: 10.1210/jc.2011-0149. Epub 2011 May 25.
- Teunissen BE, Smeets PJ, Willemsen PH, De Windt LJ, Van der Vusse GJ, Van Bilsen M. Activation of PPARdelta inhibits cardiac fibroblast proliferation and the transdifferentiation into myofibroblasts. Cardiovasc Res. 2007 Aug 1;75(3):519-29. doi: 10.1016/j.cardiores.2007.04.026. Epub 2007 May 3.
- Birzniece V, Sata A, Ho KK. Growth hormone receptor modulators. Rev Endocr Metab Disord. 2009 Jun;10(2):145-56. doi: 10.1007/s11154-008-9089-x.
- Silva CM, Kloth MT, Whatmore AJ, Freeth JS, Anderson N, Laughlin KK, Huynh T, Woodall AJ, Clayton PE. GH and epidermal growth factor signaling in normal and Laron syndrome fibroblasts. Endocrinology. 2002 Jul;143(7):2610-7. doi: 10.1210/endo.143.7.8909.
- Beauville M, Harant I, Crampes F, Riviere D, Tauber MT, Tauber JP, Garrigues M. Effect of long-term rhGH administration in GH-deficient adults on fat cell epinephrine response. Am J Physiol. 1992 Sep;263(3 Pt 1):E467-72. doi: 10.1152/ajpendo.1992.263.3.E467.
- Lauritzen ES, Svart MV, Voss T, Moller N, Bjerre M. Impact of Acutely Increased Endogenous- and Exogenous Ketone Bodies on FGF21 Levels in Humans. Endocr Res. 2021 Feb;46(1):20-27. doi: 10.1080/07435800.2020.1831015. Epub 2020 Oct 19.
- Voss TS, Vendelbo MH, Kampmann U, Pedersen SB, Nielsen TS, Johannsen M, Svart MV, Jessen N, Moller N. Substrate metabolism, hormone and cytokine levels and adipose tissue signalling in individuals with type 1 diabetes after insulin withdrawal and subsequent insulin therapy to model the initiating steps of ketoacidosis. Diabetologia. 2019 Mar;62(3):494-503. doi: 10.1007/s00125-018-4785-x. Epub 2018 Dec 1.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo
Conclusão Primária (Real)
Conclusão do estudo (Real)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
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Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Termos MeSH relevantes adicionais
- Distúrbios do Metabolismo da Glicose
- Doenças Metabólicas
- Doenças do sistema imunológico
- Doenças autoimunes
- Doenças do Sistema Endócrino
- Desequilíbrio ácido-base
- Acidose
- Diabetes Mellitus
- Diabetes Mellitus, Tipo 1
- Cetose
- Efeitos Fisiológicos das Drogas
- Hormônios, Substitutos Hormonais e Antagonistas Hormonais
- Hormônios
Outros números de identificação do estudo
- 1-10-72-247-13 (Outro identificador: Danish Ethics Committee)
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