- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT03321903
Oksymetria guza EPR z tuszem CE India
Oksymetria guza przy użyciu elektronowego rezonansu paramagnetycznego (EPR) z atramentem indyjskim (przy użyciu cząstek węgla od Carlo Erba [CE])
Dobrze wiadomo, że nowotwory złośliwe mają zwykle niski poziom tlenu, a guzy o bardzo niskim poziomie tlenu są bardziej odporne na radioterapię i inne metody leczenia, takie jak chemioterapia i immunoterapia. Poprzednie próby poprawy odpowiedzi na terapię poprzez zwiększenie poziomu tlenu w tkankach przyniosły rozczarowujące wyniki i łącznie nie doprowadziły do zmiany praktyki klinicznej. Bez metody pomiaru poziomu tlenu w guzach lub możliwości monitorowania w czasie, czy guzy reagują na metody zwiększania tlenu podczas terapii, niechęć klinicystów do stosowania tlenoterapii w zwykłej praktyce nie jest zaskakująca.
Hipoteza leżąca u podstaw tych badań jest taka, że powtarzane pomiary poziomu tlenu w tkankach można wykorzystać do optymalizacji terapii przeciwnowotworowej, w tym terapii skojarzonej, oraz do zminimalizowania skutków ubocznych lub powikłań związanych z prawidłową tkanką. Ponieważ badania wykazały, że guzy różnią się zarówno początkowym poziomem tlenu, jak i wykazują zmieniające się wzorce podczas wzrostu i leczenia, proponujemy monitorowanie poziomu tlenu w guzach i ich reakcji na procedury hiperoksygenacji. Taka wiedza na temat poziomów tlenu w tkankach nowotworowych i ich reakcji na hiperoksygenację mogłaby potencjalnie zostać wykorzystana do wyboru pacjentów do określonych rodzajów leczenia lub w inny sposób do dostosowania rutynowej opieki nad pacjentami, o których wiadomo, że mają niedotlenione, ale niereagujące guzy, w celu poprawy ich wyników.
Ogólnymi celami tego badania jest ustalenie klinicznej wykonalności i skuteczności zastosowania oksymetrii elektronowego rezonansu paramagnetycznego (EPR) in vivo - techniki związanej z obrazowaniem metodą rezonansu magnetycznego (MRI) - w celu uzyskania bezpośrednich i powtarzanych pomiarów przydatnych klinicznie informacji o tkance nowotworowej utlenowania w określonych grupach pacjentów z tymi samymi typami nowotworów oraz ustalenie klinicznej wykonalności i skuteczności stosowania wdychania wzbogaconego tlenu w celu uzyskania dodatkowych klinicznie użytecznych informacji na temat reakcji guzów na hiperoksygenację. Stosowane są dwa urządzenia: zawiesina paramagnetycznego węgla drzewnego (atrament Carlo Erba India) oraz oksymetria EPR in vivo do oceny poziomu tlenu. Atrament jest wstrzykiwany i pozostaje trwały w tkance w miejscu wstrzyknięcia, chyba że zostanie usunięty; następnie pomiary pulsoksymetryczne in vivo są nieinwazyjne i można je powtarzać w nieskończoność.
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
W projekcie badania wykorzystuje się kolejno włączonych pacjentów. Pacjenci mogą uczestniczyć tak długo, jak chcą, spełniają kryteria przypisania do kohorty, a indyjska plama atramentu pozostaje mierzalna za pomocą EPR. Pacjenci, u których usunięto plamę atramentu podczas zwykłej opieki i którzy nie mają lub nie chcą otrzymać dodatkowych zastrzyków, zostaną wycofani. W przeciwnym razie pacjenci mogą zostać ponownie zmierzeni przy użyciu wcześniej wstrzykniętego tuszu w dowolnym momencie w trakcie badania.
Badanie podzielono na cztery kohorty, z co najmniej 1-5 pacjentami, które będą włączane rocznie do każdej kohorty, i łącznie około 10 pacjentów spodziewanych w każdej kohorcie. Kohorty są definiowane na podstawie rodzaju guza i scenariuszy, w których będziemy dokonywać pomiarów w odniesieniu do standardowych terapii pacjenta: 1) guzy wewnątrzustne z planowaną resekcją i uzupełniającą radioterapią; 2) nowotwory złośliwe skóry poddawane wyłącznie resekcji chirurgicznej, poddawane radioterapii tylko lub otrzymujących zarówno resekcję chirurgiczną, jak i uzupełniającą radioterapię; 3) guz piersi otrzymujący radioterapię po operacji; oraz 4) inne nowotwory otrzymujące radioterapię. Diagnoza dla pacjentów we wszystkich przypadkach zakłada, że kwalifikujący się guz (lub obszar pooperacyjny otrzymujący promieniowanie) występuje w odległości około pół centymetra od powierzchni, co określono na podstawie badania fizykalnego lub obrazowania, jeśli są dostępne. Do wszystkich potencjalnie kwalifikujących się pacjentów zwraca się ich lekarz prowadzący; osoby, które wyrażą zgodę na kontakt, a następnie uzyskają zgodę, są przydzielane do kohorty, do której się kwalifikują. Nie ma randomizacji ani stratyfikacji w kohortach.
Nasze zainteresowanie natlenowaniem guza in situ wiąże się z kliniczną potrzebą pomiaru tlenu w guzach przed terapią, zrozumienia dynamiki tlenu w guzie w trakcie terapii oraz oceny skuteczności terapii modulacji tlenu w trakcie leczenia. Nasze zainteresowanie polem promieniowania pooperacyjnego wiąże się z kliniczną potrzebą zrozumienia, czy czasowa dynamika tlenu w polu promieniowania pooperacyjnego może potencjalnie zwiększyć skuteczność terapii uzupełniających oraz zrozumienia, w jaki sposób zmiany krótko- i długoterminowego utlenowania w obszarze pooperacyjnym pole promieniowania może ułatwić zmniejszenie późnych skutków ubocznych operacji i/lub radioterapii.
Po włączeniu do badania każdy uczestnik otrzyma wstępne umieszczenie jednego lub więcej geograficznie oddzielnych wstrzyknięć atramentu indyjskiego do tkanki będącej przedmiotem zainteresowania (tj. tuszu. Oczekuje się, że pacjent zgodzi się na okresowe pomiary wszystkich miejsc wstrzyknięć (chyba że wstrzyknięcie atramentu zostało usunięte chirurgicznie); pacjent zostanie poinformowany, że spodziewa się sześciu lub więcej wizyt w celu dokonania pomiarów w trakcie leczenia, ale musi wyrazić zgodę na co najmniej jeden pomiar na miejsce wstrzyknięcia. Każdy pomiar będzie zazwyczaj składał się z 3 kolejnych dziesięciominutowych okresów, podczas których osoba badana najpierw oddycha powietrzem pokojowym, następnie 100% tlenem dostarczanym przez maskę na twarz bez rebreathera, po czym następuje okres oddychania powietrzem pokojowym.
Pacjenci będą oceniani podczas wizyt klinicznych i oksymetrycznych pod kątem obecności jakichkolwiek zdarzeń niepożądanych.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
New Hampshire
-
Lebanon, New Hampshire, Stany Zjednoczone, 03766
- Dartmouth-Hitchcock Medical Center
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Osoba musi być zdolna do wyrażenia świadomej zgody lub mieć akceptowalnego zastępcę zdolnego do wyrażenia zgody w imieniu osoby.
Pacjent ma kwalifikujący się guz, który znajduje się w odległości do 5 mm od powierzchni (skóry lub błony śluzowej) lub został usunięty guz z łożyskiem po guzie, które znajduje się w odległości do 5 mm od powierzchni.
Kwalifikujące się typy nowotworów:
- Guzy wewnątrzustne: rak płaskonabłonkowy (SCC), czerniak;
- Pierwotne nowotwory skóry (w tym między innymi): SCC, rak podstawnokomórkowy (BCC) czerniak;
- Nowotwory piersi po operacjach;
- Inne nowotwory: każdy guz znajdujący się w odległości do 5 mm od powierzchni i z planowaną radioterapią.
Kryteria wyłączenia:
- Wcześniejsza reakcja niepożądana na produkt z węglem, np. miejscowa reakcja nadwrażliwości na czarny tatuaż lub po spożyciu węgla aktywowanego
- Wcześniejsza reakcja niepożądana na środek zawieszający
- Tester ma rozrusznik serca, który nie jest kompatybilny z MRI
- Podmiot ma nieusuwalny implant lub urządzenie z metalem, o którym nie wiadomo, czy jest kompatybilny z MRI
- Uczestnik jest w ciąży lub istnieje prawdopodobieństwo zajścia w ciążę podczas podstawowego okresu badania.
Uwaga: Nie ma znanych szkód dla kobiety lub jej płodu wynikających z uczestnictwa; to tylko zapobiegawczo.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Modele obserwacyjne: Kohorta
- Perspektywy czasowe: Spodziewany
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
1: Wewnątrzustny rak płaskonabłonkowy
Wewnątrzustne raki płaskonabłonkowe, które są wycinane i otrzymują uzupełniającą radioterapię.
Tacy pacjenci mogą otrzymać zastrzyk Carlo Erba Ink przed chirurgiczną resekcją guza, po resekcji guza (w polu promieniowania pooperacyjnego) lub w obu przypadkach.
Pacjenci, u których guz znajduje się w odległości do 5 mm od powierzchni, otrzymają zastrzyki tuszu indyjskiego do samego guza i dokonają pomiarów w guzie przed operacją.
Chorzy, u których guz jest głębszy niż 5 mm powierzchni, mogli uczestniczyć jedynie w pomiarach pola promieniowania pooperacyjnego.
Pomiary oksymetryczne EPR zostaną wykonane w guzie i/lub, jeśli ma to zastosowanie, w trakcie napromieniania w pooperacyjnym polu napromieniowania, odpowiednio.
|
Atrament Carlo Erba India jest używany w tym badaniu jako paramagnetyczny czujnik tlenu, który jest wstrzykiwany do tkanki i który, mierzony za pomocą oksymetrii EPR, może zapewnić czułe, powtarzalne i bezpośrednie pomiary tlenu w tkankach.
Każdy uczestnik badania otrzyma co najmniej jeden zastrzyk z atramentem 20-50 µl Carlo Erba India Ink.
Wstrzyknięcie tuszu nastąpi w odległości 5 mm od powierzchni ciała (tj. skóry lub błony śluzowej) i może zostać wstrzyknięte do guza, pooperacyjnego pola promieniowania i/lub sąsiadującej zdrowej tkanki.
Atrament Carlo Erba to wodna zawiesina składająca się z proszku węglowego, wody do wstrzykiwań i środka zawieszającego.
Carlo Erba to nazwa producenta dostarczającego węgiel drzewny.
Inne nazwy:
Wizyta z pomiarem pulsoksymetrycznym składa się z około 30 minut ciągłego skanowania tlenu w tkankach in vivo przy użyciu czujnika tlenu (tj.
Skany, przeliczone na pomiary pO2, charakteryzują aktualny poziom tlenu w guzie w: (1) „stanie ustalonym” (podczas oddychania powietrzem pokojowym), 2) odpowiedzi na terapię hiperoksygenacyjną (wdychanie powietrza wzbogaconego tlenem przez 10 min) oraz 3) reakcja na wznowienie wdychania powietrza z pomieszczenia.
Pomiary EPR są powtarzane nieinwazyjnie podczas radioterapii lub chemioterapii w celu zbadania zmian.
Minimalna liczba wizyt zależy od kohorty pacjenta; wszystkie mogą mieć dodatkowe pomiary.
Jeśli wstrzyknięcie atramentu nie zostanie usunięte chirurgicznie, pomiary pulsoksymetrii EPR można powtarzać w nieskończoność.
Inne nazwy:
|
|
2: Nowotwory złośliwe skóry
Pacjenci z pierwotnymi nowotworami złośliwymi skóry (w tym między innymi rak płaskonabłonkowy, rak podstawnokomórkowy lub czerniak), których guz znajduje się w odległości do 5 mm od powierzchni i których plan leczenia obejmuje resekcję chirurgiczną i/lub radioterapię pooperacyjną.
Pacjenci ci mogą otrzymać zastrzyk Carlo Erba Ink przed chirurgiczną resekcją guza, po resekcji guza (w polu napromieniania pooperacyjnego), zarówno w guzie, jak iw polu napromieniania pooperacyjnego lub w guzie przed radioterapią.
Pomiary oksymetrii EPR zostaną wykonane w guzie i/lub, jeśli ma to zastosowanie, w trakcie napromieniania w guzie lub w odpowiednim polu promieniowania pooperacyjnego.
|
Atrament Carlo Erba India jest używany w tym badaniu jako paramagnetyczny czujnik tlenu, który jest wstrzykiwany do tkanki i który, mierzony za pomocą oksymetrii EPR, może zapewnić czułe, powtarzalne i bezpośrednie pomiary tlenu w tkankach.
Każdy uczestnik badania otrzyma co najmniej jeden zastrzyk z atramentem 20-50 µl Carlo Erba India Ink.
Wstrzyknięcie tuszu nastąpi w odległości 5 mm od powierzchni ciała (tj. skóry lub błony śluzowej) i może zostać wstrzyknięte do guza, pooperacyjnego pola promieniowania i/lub sąsiadującej zdrowej tkanki.
Atrament Carlo Erba to wodna zawiesina składająca się z proszku węglowego, wody do wstrzykiwań i środka zawieszającego.
Carlo Erba to nazwa producenta dostarczającego węgiel drzewny.
Inne nazwy:
Wizyta z pomiarem pulsoksymetrycznym składa się z około 30 minut ciągłego skanowania tlenu w tkankach in vivo przy użyciu czujnika tlenu (tj.
Skany, przeliczone na pomiary pO2, charakteryzują aktualny poziom tlenu w guzie w: (1) „stanie ustalonym” (podczas oddychania powietrzem pokojowym), 2) odpowiedzi na terapię hiperoksygenacyjną (wdychanie powietrza wzbogaconego tlenem przez 10 min) oraz 3) reakcja na wznowienie wdychania powietrza z pomieszczenia.
Pomiary EPR są powtarzane nieinwazyjnie podczas radioterapii lub chemioterapii w celu zbadania zmian.
Minimalna liczba wizyt zależy od kohorty pacjenta; wszystkie mogą mieć dodatkowe pomiary.
Jeśli wstrzyknięcie atramentu nie zostanie usunięte chirurgicznie, pomiary pulsoksymetrii EPR można powtarzać w nieskończoność.
Inne nazwy:
|
|
3: Raki piersi
Pacjenci z rakiem piersi, których plan leczenia obejmuje resekcję chirurgiczną, a następnie radioterapię.
Wszyscy pacjenci poddawani resekcji chirurgicznej otrzymają wstrzyknięcie Carlo Erba Ink w pole promieniowania po wystarczającym wygojeniu obszaru, który ma być wstrzyknięty, zgodnie z ustaleniami w porozumieniu z lekarzami prowadzącymi, oraz przy użyciu miejscowego środka znieczulającego lub miejscowego środka znieczulającego, jeśli pacjent tak pragnie.
Oczekuje się, że wszyscy pacjenci w tej kohorcie zgodzą się na co najmniej jeden pomiar oksymetrii EPR w planowanym polu promieniowania przed napromienianiem i co najmniej jeden pomiar wykonany w trakcie radioterapii.
|
Atrament Carlo Erba India jest używany w tym badaniu jako paramagnetyczny czujnik tlenu, który jest wstrzykiwany do tkanki i który, mierzony za pomocą oksymetrii EPR, może zapewnić czułe, powtarzalne i bezpośrednie pomiary tlenu w tkankach.
Każdy uczestnik badania otrzyma co najmniej jeden zastrzyk z atramentem 20-50 µl Carlo Erba India Ink.
Wstrzyknięcie tuszu nastąpi w odległości 5 mm od powierzchni ciała (tj. skóry lub błony śluzowej) i może zostać wstrzyknięte do guza, pooperacyjnego pola promieniowania i/lub sąsiadującej zdrowej tkanki.
Atrament Carlo Erba to wodna zawiesina składająca się z proszku węglowego, wody do wstrzykiwań i środka zawieszającego.
Carlo Erba to nazwa producenta dostarczającego węgiel drzewny.
Inne nazwy:
Wizyta z pomiarem pulsoksymetrycznym składa się z około 30 minut ciągłego skanowania tlenu w tkankach in vivo przy użyciu czujnika tlenu (tj.
Skany, przeliczone na pomiary pO2, charakteryzują aktualny poziom tlenu w guzie w: (1) „stanie ustalonym” (podczas oddychania powietrzem pokojowym), 2) odpowiedzi na terapię hiperoksygenacyjną (wdychanie powietrza wzbogaconego tlenem przez 10 min) oraz 3) reakcja na wznowienie wdychania powietrza z pomieszczenia.
Pomiary EPR są powtarzane nieinwazyjnie podczas radioterapii lub chemioterapii w celu zbadania zmian.
Minimalna liczba wizyt zależy od kohorty pacjenta; wszystkie mogą mieć dodatkowe pomiary.
Jeśli wstrzyknięcie atramentu nie zostanie usunięte chirurgicznie, pomiary pulsoksymetrii EPR można powtarzać w nieskończoność.
Inne nazwy:
|
|
4: Inne guzy
Inne guzy w obrębie 5 mm od powierzchni, których planowane leczenie obejmuje radioterapię guza i nie obejmuje planowej resekcji guza.
Ponieważ oczekuje się, że te inne kwalifikujące się nowotwory złośliwe będą występować rzadko, zostaną one zgrupowane w jednej kohorcie pomimo potencjalnie zróżnicowanej histologii.
Ci pacjenci otrzymają zastrzyk Carlo Erba Ink w guzie przed radioterapią.
Oczekuje się, że wszyscy pacjenci w tej kohorcie zgodzą się na co najmniej jeden pomiar oksymetrii EPR w planowanym polu promieniowania przed napromienianiem i co najmniej jeden pomiar wykonany w trakcie radioterapii.
|
Atrament Carlo Erba India jest używany w tym badaniu jako paramagnetyczny czujnik tlenu, który jest wstrzykiwany do tkanki i który, mierzony za pomocą oksymetrii EPR, może zapewnić czułe, powtarzalne i bezpośrednie pomiary tlenu w tkankach.
Każdy uczestnik badania otrzyma co najmniej jeden zastrzyk z atramentem 20-50 µl Carlo Erba India Ink.
Wstrzyknięcie tuszu nastąpi w odległości 5 mm od powierzchni ciała (tj. skóry lub błony śluzowej) i może zostać wstrzyknięte do guza, pooperacyjnego pola promieniowania i/lub sąsiadującej zdrowej tkanki.
Atrament Carlo Erba to wodna zawiesina składająca się z proszku węglowego, wody do wstrzykiwań i środka zawieszającego.
Carlo Erba to nazwa producenta dostarczającego węgiel drzewny.
Inne nazwy:
Wizyta z pomiarem pulsoksymetrycznym składa się z około 30 minut ciągłego skanowania tlenu w tkankach in vivo przy użyciu czujnika tlenu (tj.
Skany, przeliczone na pomiary pO2, charakteryzują aktualny poziom tlenu w guzie w: (1) „stanie ustalonym” (podczas oddychania powietrzem pokojowym), 2) odpowiedzi na terapię hiperoksygenacyjną (wdychanie powietrza wzbogaconego tlenem przez 10 min) oraz 3) reakcja na wznowienie wdychania powietrza z pomieszczenia.
Pomiary EPR są powtarzane nieinwazyjnie podczas radioterapii lub chemioterapii w celu zbadania zmian.
Minimalna liczba wizyt zależy od kohorty pacjenta; wszystkie mogą mieć dodatkowe pomiary.
Jeśli wstrzyknięcie atramentu nie zostanie usunięte chirurgicznie, pomiary pulsoksymetrii EPR można powtarzać w nieskończoność.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Pomiar poziomu tlenu w tkankach w odpowiedzi na terapię hiperoksyczną
Ramy czasowe: Od momentu wstrzyknięcia atramentu do czasu jego usunięcia poprzez resekcję chirurgiczną. Może to trwać od dni do lat lub do zakończenia rekrutacji do badania, przewidywanego na rok 2020.
|
W badaniu tym zostanie ocenione, czy dodanie terapii hiperoksycznej (100% tlen dostarczany przez maskę twarzową bez rebreathera) zwiększy poziom tlenu w guzie lub loży po guzie o > 5 mm Hg przy użyciu oksymetrii EPR.
Wartości tlenu w guzie będą podawane w milimetrach słupa rtęci (mmHg).
|
Od momentu wstrzyknięcia atramentu do czasu jego usunięcia poprzez resekcję chirurgiczną. Może to trwać od dni do lat lub do zakończenia rekrutacji do badania, przewidywanego na rok 2020.
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Scharakteryzuj zmiany tlenu w loży guza w trakcie radioterapii
Ramy czasowe: Od momentu wstrzyknięcia tuszu do zakończenia radioterapii; średnio 4 miesiące.
|
Ten wynik będzie mierzyć poziom tlenu w tkance pooperacyjnej w trakcie radioterapii za pomocą oksymetrii EPR.
Wartości tlenu w tkankach będą podawane w milimetrach słupa rtęci (mmHg).
|
Od momentu wstrzyknięcia tuszu do zakończenia radioterapii; średnio 4 miesiące.
|
|
Scharakteryzuj zmiany tlenu w guzach w trakcie radioterapii
Ramy czasowe: Od momentu wstrzyknięcia tuszu do zakończenia radioterapii; średnio 4 miesiące.
|
Ten wynik będzie mierzyć poziom tlenu w tkance nowotworowej w trakcie radioterapii za pomocą oksymetrii EPR.
Wartości tlenu w tkankach będą podawane w milimetrach słupa rtęci (mmHg).
|
Od momentu wstrzyknięcia tuszu do zakończenia radioterapii; średnio 4 miesiące.
|
|
Scharakteryzuj zmiany tlenu w guzie i loży guza przed radioterapią
Ramy czasowe: Od momentu wstrzyknięcia atramentu do zakończenia leczenia raka; średnio 4 miesiące.
|
W przypadku osób otrzymujących zastrzyki z atramentu indyjskiego zarówno w nieleczonym guzie, jak i w łóżku pooperacyjnym przed napromieniowaniem, zbadamy wzorce w tych dwóch „stanach” w poszczególnych guzach, co może poprawić nasze zrozumienie związku między poziomami tlenu w guza iw powstałym loży po guzie.
Wartości tlenu w tkankach będą podawane w milimetrach słupa rtęci (mmHg).
|
Od momentu wstrzyknięcia atramentu do zakończenia leczenia raka; średnio 4 miesiące.
|
|
Scharakteryzuj zmiany tlenu w guzie i loży guza w trakcie radioterapii
Ramy czasowe: Od momentu wstrzyknięcia atramentu do zakończenia leczenia raka; średnio 6 miesięcy.
|
W przypadku pacjentów otrzymujących zastrzyki z tuszu indyjskiego zarówno w nieleczonym guzie, jak i w łóżku pooperacyjnym podczas radioterapii, zbadamy wzorce w tych dwóch „stanach” w poszczególnych guzach, co może poprawić nasze zrozumienie związku między poziomami tlenu w guzie i powstałym loży po guzie.
Wartości tlenu w tkankach będą podawane w milimetrach słupa rtęci (mmHg).
|
Od momentu wstrzyknięcia atramentu do zakończenia leczenia raka; średnio 6 miesięcy.
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Histologia tkanek
Ramy czasowe: Około 30 dni po chirurgicznym wycięciu guza
|
W przypadku pacjentów, których guz został usunięty wraz z tkanką zawierającą cząsteczki węgla tuszu indyjskiego w ramach ich zwykłej opieki, tkanka w miejscu wstrzyknięcia zostanie poddana obróbce zgodnie ze standardowymi procedurami patologicznymi.
Skrawki tkanki obejmujące miejsce (miejsca) wstrzyknięcia zostaną ocenione pod kątem zakresu i mechanizmu rozprzestrzeniania się oraz obecności ostrego lub przewlekłego stanu zapalnego lub innej reakcji tkankowej (blizny, zwłóknienia, tworzenia się torebek lub innych).
Tkanka zostanie oceniona pod kątem tego, czy zaobserwowana reakcja jest zgodna z oczekiwaniami dla wstrzyknięć tuszu.
|
Około 30 dni po chirurgicznym wycięciu guza
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Philip E Schaner, M.D., Ph.D., Dartmouth-Hitchcock Medical Center
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Bacic G, Liu KJ, O'Hara JA, Harris RD, Szybinski K, Goda F, Swartz HM. Oxygen tension in a murine tumor: a combined EPR and MRI study. Magn Reson Med. 1993 Nov;30(5):568-72. doi: 10.1002/mrm.1910300507.
- Baudelet C, Gallez B. How does blood oxygen level-dependent (BOLD) contrast correlate with oxygen partial pressure (pO2) inside tumors? Magn Reson Med. 2002 Dec;48(6):980-6. doi: 10.1002/mrm.10318.
- Brizel DM, Scully SP, Harrelson JM, Layfield LJ, Dodge RK, Charles HC, Samulski TV, Prosnitz LR, Dewhirst MW. Radiation therapy and hyperthermia improve the oxygenation of human soft tissue sarcomas. Cancer Res. 1996 Dec 1;56(23):5347-50.
- Brizel DM, Sibley GS, Prosnitz LR, Scher RL, Dewhirst MW. Tumor hypoxia adversely affects the prognosis of carcinoma of the head and neck. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1997 May 1;38(2):285-9. doi: 10.1016/s0360-3016(97)00101-6.
- Charlier N, Beghein N, Gallez B. Development and evaluation of biocompatible inks for the local measurement of oxygen using in vivo EPR. NMR Biomed. 2004 Aug;17(5):303-10. doi: 10.1002/nbm.902.
- Chaplin DJ, Horsman MR. Tumor blood flow changes induced by chemical modifiers of radiation response. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1992;22(3):459-62. doi: 10.1016/0360-3016(92)90853-a.
- Dardzinski BJ, Sotak CH. Rapid tissue oxygen tension mapping using 19F inversion-recovery echo-planar imaging of perfluoro-15-crown-5-ether. Magn Reson Med. 1994 Jul;32(1):88-97. doi: 10.1002/mrm.1910320112.
- Demidenko E. Mixed models: theory and applications with R. John Wiley & Sons; 2013 Aug 26.
- Dewhirst MW, Poulson JM, Yu D, Sanders L, Lora-Michiels M, Vujaskovic Z, Jones EL, Samulski TV, Powers BE, Brizel DM, Prosnitz LR, Charles HC. Relation between pO2, 31P magnetic resonance spectroscopy parameters and treatment outcome in patients with high-grade soft tissue sarcomas treated with thermoradiotherapy. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2005 Feb 1;61(2):480-91. doi: 10.1016/j.ijrobp.2004.06.211.
- Dunn JF, Ding S, O'Hara JA, Liu KJ, Rhodes E, Weaver JB, Swartz HM. The apparent diffusion constant measured by MRI correlates with pO2 in a RIF-1 tumor. Magn Reson Med. 1995 Oct;34(4):515-9. doi: 10.1002/mrm.1910340405.
- Flood AB, Satinsky VA, Swartz HM. Comparing the Effectiveness of Methods to Measure Oxygen in Tissues for Prognosis and Treatment of Cancer. Adv Exp Med Biol. 2016;923:113-120. doi: 10.1007/978-3-319-38810-6_15.
- Gallez B, Baudelet C, Jordan BF. Assessment of tumor oxygenation by electron paramagnetic resonance: principles and applications. NMR Biomed. 2004 Aug;17(5):240-62. doi: 10.1002/nbm.900.
- Gallez B, Debuyst R, Dejehet F, Liu KJ, Walczak T, Goda F, Demeure R, Taper H, Swartz HM. Small particles of fusinite and carbohydrate chars coated with aqueous soluble polymers: preparation and applications for in vivo EPR oximetry. Magn Reson Med. 1998 Jul;40(1):152-9. doi: 10.1002/mrm.1910400120.
- Gallez B, Swartz HM. In vivo EPR: when, how and why? NMR Biomed. 2004 Aug;17(5):223-5. doi: 10.1002/nbm.913.
- Gatenby RA, Kessler HB, Rosenblum JS, Coia LR, Moldofsky PJ, Hartz WH, Broder GJ. Oxygen distribution in squamous cell carcinoma metastases and its relationship to outcome of radiation therapy. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1988 May;14(5):831-8. doi: 10.1016/0360-3016(88)90002-8.
- Glockner JF, Swartz HM. In vivo EPR oximetry using two novel probes: fusinite and lithium phthalocyanine. Adv Exp Med Biol. 1992;317:229-34. doi: 10.1007/978-1-4615-3428-0_24. No abstract available.
- Glockner JF, Norby SW, Swartz HM. Simultaneous measurement of intracellular and extracellular oxygen concentrations using a nitroxide-liposome system. Magn Reson Med. 1993 Jan;29(1):12-8. doi: 10.1002/mrm.1910290105.
- Goda F, Liu KJ, Walczak T, O'Hara JA, Jiang J, Swartz HM. In vivo oximetry using EPR and India ink. Magn Reson Med. 1995 Feb;33(2):237-45. doi: 10.1002/mrm.1910330214.
- Goda F, O'Hara JA, Rhodes ES, Liu KJ, Dunn JF, Bacic G, Swartz HM. Changes of oxygen tension in experimental tumors after a single dose of X-ray irradiation. Cancer Res. 1995 Jun 1;55(11):2249-52.
- Goda F, O'Hara JA, Liu KJ, Rhodes ES, Dunn JF, Swartz HM. Comparisons of measurements of pO2 in tissue in vivo by EPR oximetry and microelectrodes. Adv Exp Med Biol. 1997;411:543-9. doi: 10.1007/978-1-4615-5865-1_67. No abstract available.
- Haga T, Hirata H, Lesniewski P, Rychert KM, Williams BB, Flood AN, Swartz HM. L-band surface-coil resonator with voltage-control impedance-matching for EPR tooth dosimetry. Concepts in Magnetic Resonance Part B: Magnetic Resonance Engineering. 2013 Feb 1;43(1):32-40.2013).
- Hall EJ, Giaccia AJ. Radiobiology for the Radiologist. Philadelphia: JB Lippincott. 1988.
- Hees PS, Sotak CH. Assessment of changes in murine tumor oxygenation in response to nicotinamide using 19F NMR relaxometry of a perfluorocarbon emulsion. Magn Reson Med. 1993 Mar;29(3):303-10. doi: 10.1002/mrm.1910290305. Erratum In: Magn Reson Med 1993 May;29(5):716.
- Hirata H, Walczak T, Swartz HM. Electronically tunable surface-coil-type resonator for L-band EPR spectroscopy. J Magn Reson. 2000 Jan;142(1):159-67. doi: 10.1006/jmre.1999.1927.
- Hockel M, Schlenger K, Mitze M, Schaffer U, Vaupel P. Hypoxia and Radiation Response in Human Tumors. Semin Radiat Oncol. 1996 Jan;6(1):3-9. doi: 10.1053/SRAO0060003.
- Hockel M, Vorndran B, Schlenger K, Baussmann E, Knapstein PG. Tumor oxygenation: a new predictive parameter in locally advanced cancer of the uterine cervix. Gynecol Oncol. 1993 Nov;51(2):141-9. doi: 10.1006/gyno.1993.1262.
- Hyde JS and Subczynski, WK. Spin-label oximetry. (1989). Pp 399-425. In: Berliner LJ, Reuben J (ed). Spin Labeling: Theory and Applications. New York: Plenum Press. doi: 10.1007/978-1-4613-0743-3_8
- Islam PS, Chang C, Selmi C, Generali E, Huntley A, Teuber SS, Gershwin ME. Medical Complications of Tattoos: A Comprehensive Review. Clin Rev Allergy Immunol. 2016 Apr;50(2):273-86. doi: 10.1007/s12016-016-8532-0.
- Jordan BF, Baudelet C, Gallez B. Carbon-centered radicals as oxygen sensors for in vivo electron paramagnetic resonance: screening for an optimal probe among commercially available charcoals. MAGMA. 1998 Dec;7(2):121-9. doi: 10.1007/BF02592236.
- Jordan BF, Gregoire V, Demeure RJ, Sonveaux P, Feron O, O'Hara J, Vanhulle VP, Delzenne N, Gallez B. Insulin increases the sensitivity of tumors to irradiation: involvement of an increase in tumor oxygenation mediated by a nitric oxide-dependent decrease of the tumor cells oxygen consumption. Cancer Res. 2002 Jun 15;62(12):3555-61.
- Jordan BF, Misson P, Demeure R, Baudelet C, Beghein N, Gallez B. Changes in tumor oxygenation/perfusion induced by the no donor, isosorbide dinitrate, in comparison with carbogen: monitoring by EPR and MRI. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2000 Sep 1;48(2):565-70. doi: 10.1016/s0360-3016(00)00694-5.
- Jordan BF, Sonveaux P, Feron O, Gregoire V, Beghein N, Gallez B. Nitric oxide-mediated increase in tumor blood flow and oxygenation of tumors implanted in muscles stimulated by electric pulses. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2003 Mar 15;55(4):1066-73. doi: 10.1016/s0360-3016(02)04505-4.
- Lartigau E, Randrianarivelo H, Avril MF, Margulis A, Spatz A, Eschwege F, Guichard M. Intratumoral oxygen tension in metastatic melanoma. Melanoma Res. 1997 Oct;7(5):400-6. doi: 10.1097/00008390-199710000-00006.
- Lartigau E, Lusinchi A, Eschwege F, Guichard M. Tumor oxygenation: the Institut Gustave Roussy experience. In: Vaupel P, Kelleher DK (ed). Tumor hypoxia pathophysiology, clinical significance and therapeutic perspectives. Stuttgart, Germany: Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft mbH. 1999:47-52.
- Liu KJ, Gast P, Moussavi M, Norby SW, Vahidi N, Walczak T, Wu M, Swartz HM. Lithium phthalocyanine: a probe for electron paramagnetic resonance oximetry in viable biological systems. Proc Natl Acad Sci U S A. 1993 Jun 15;90(12):5438-42. doi: 10.1073/pnas.90.12.5438.
- Nakashima T, Goda F, Jiang J, Shima T, Swartz HM. Use of EPR oximetry with India ink to measure the pO2 in the liver in vivo in mice. Magn Reson Med. 1995 Dec;34(6):888-92. doi: 10.1002/mrm.1910340614.
- Nilges MJ, Walczak T, Swartz HM. GHz in vivo ESR spectrometer operating with a surface probe. Phys. Med. 1989;5:195-201.
- Nordsmark M, Alsner J, Keller J, Nielsen OS, Jensen OM, Horsman MR, Overgaard J. Hypoxia in human soft tissue sarcomas: adverse impact on survival and no association with p53 mutations. Br J Cancer. 2001 Apr 20;84(8):1070-5. doi: 10.1054/bjoc.2001.1728.
- Nordsmark M, Bentzen SM, Rudat V, Brizel D, Lartigau E, Stadler P, Becker A, Adam M, Molls M, Dunst J, Terris DJ, Overgaard J. Prognostic value of tumor oxygenation in 397 head and neck tumors after primary radiation therapy. An international multi-center study. Radiother Oncol. 2005 Oct;77(1):18-24. doi: 10.1016/j.radonc.2005.06.038. Epub 2005 Aug 10.
- O'Hara JA, Goda F, Demidenko E, Swartz HM. Effect on regrowth delay in a murine tumor of scheduling split-dose irradiation based on direct pO2 measurements by electron paramagnetic resonance oximetry. Radiat Res. 1998 Nov;150(5):549-56.
- O'Hara JA, Goda F, Liu KJ, Bacic G, Hoopes PJ, Swartz HM. The pO2 in a murine tumor after irradiation: an in vivo electron paramagnetic resonance oximetry study. Radiat Res. 1995 Nov;144(2):222-9.
- O'Hara JA, Hou H, Demidenko E, Springett RJ, Khan N, Swartz HM. Simultaneous measurement of rat brain cortex PtO2 using EPR oximetry and a fluorescence fiber-optic sensor during normoxia and hyperoxia. Physiol Meas. 2005 Jun;26(3):203-13. doi: 10.1088/0967-3334/26/3/006. Epub 2005 Feb 25.
- O'Hara JA, Khan N, Hou H, Wilmo CM, Demidenko E, Dunn JF, Swartz HM. Comparison of EPR oximetry and Eppendorf polarographic electrode assessments of rat brain PtO2. Physiol Meas. 2004 Dec;25(6):1413-23. doi: 10.1088/0967-3334/25/6/007.
- Petryakov SV, Schreiber W, Kmiec MM, Williams BB, Swartz HM. Surface Dielectric Resonators for X-band EPR Spectroscopy. Radiat Prot Dosimetry. 2016 Dec;172(1-3):127-132. doi: 10.1093/rpd/ncw167. Epub 2016 Jul 15.
- Salikhov I, Hirata H, Walczak T, Swartz HM. An improved external loop resonator for in vivo L-band EPR spectroscopy. J Magn Reson. 2003 Sep;164(1):54-9. doi: 10.1016/s1090-7807(03)00175-7.
- Salikhov IK, Swartz HM. Measurement of specific absorption rate for clinical EPR at 1200 MHz. Applied Magnetic Resonance. 2005 Jun 1;29(2):287-91.
- Smirnov AI, Norby SW, Clarkson RB, Walczak T, Swartz HM. Simultaneous multi-site EPR spectroscopy in vivo. Magn Reson Med. 1993 Aug;30(2):213-20. doi: 10.1002/mrm.1910300210.
- Smirnov AI, Norby SW, Walczak T, Liu KJ, Swartz HM. Physical and instrumental considerations in the use of lithium phthalocyanine for measurements of the concentration of the oxygen. J Magn Reson B. 1994 Feb;103(2):95-102. doi: 10.1006/jmrb.1994.1016.
- Swartz HM. Using EPR to measure a critical but often unmeasured component of oxidative damage: oxygen. Antioxid Redox Signal. 2004 Jun;6(3):677-86. doi: 10.1089/152308604773934440.
- Swartz HM. EPR Studies of Cells and Tissue. In: Foundations Of Modern EPR 1998 (pp. 451-459).
- Swartz HM. Potential Medical (Clinical) Applications of EPR: Overview & Perspectives. InIn Vivo EPR (ESR) 2003 (pp. 599-621). Springer US.
- Swartz HM, Clarkson RB. The measurement of oxygen in vivo using EPR techniques. Phys Med Biol. 1998 Jul;43(7):1957-75. doi: 10.1088/0031-9155/43/7/017.
- Swartz HM, Dunn JF. Measurements of oxygen in tissues: overview and perspectives on methods. Adv Exp Med Biol. 2003;530:1-12. doi: 10.1007/978-1-4615-0075-9_1.
- Swartz HM, Dunn J, Grinberg O, O'Hara J, Walczak T. What does EPR oximetry with solid particles measure--and how does this relate to other measures of PO2? Adv Exp Med Biol. 1997;428:663-70. doi: 10.1007/978-1-4615-5399-1_93. No abstract available.
- Swartz HM, Halpern H. EPR studies of living animals and related model systems (in vivo EPR). InBiological magnetic resonance 2002 (pp. 367-404). Springer US.
- Swartz HM, Hou H, Khan N, Jarvis LA, Chen EY, Williams BB, Kuppusamy P. Advances in probes and methods for clinical EPR oximetry. Adv Exp Med Biol. 2014;812:73-79. doi: 10.1007/978-1-4939-0620-8_10.
- Khan N, Grinberg O, Wilmot C, Kiefer H, Swartz HM. "Distant spin trapping": a method for expanding the availability of spin trapping measurements. J Biochem Biophys Methods. 2005 Feb 28;62(2):125-30. doi: 10.1016/j.jbbm.2004.10.001. Epub 2004 Nov 13.
- Swartz HM, Khan N, Buckey J, Comi R, Gould L, Grinberg O, Hartford A, Hopf H, Hou H, Hug E, Iwasaki A, Lesniewski P, Salikhov I, Walczak T. Clinical applications of EPR: overview and perspectives. NMR Biomed. 2004 Aug;17(5):335-51. doi: 10.1002/nbm.911.
- Swartz, HM, N. Khan, B.B. Williams, A.C. Hartford, B. Zaki, M. Ernstoff, J.C. Buckey, F.F. Gubaidullin, H. Hou, P. Lesniewski, M. Kmiec, O.Y. Grinberg, A. Sucheta, and T. Walczak, Clinical Applications of In Vivo EPR: EPR Oximetry in Treasures of Eureka, Electron Paramagnetic Resonance From Fundamental Research To Pioneering Applications & Zavoisky Award, Volume 1, Axas Publishing, New Zealand, pp. 178-179 (2009).
- Swartz HM, Iwasaki A, Walczak T, Demidenko E, Salikov I, Lesniewski P, Starewicz P, Schauer D, Romanyukha A. Measurements of clinically significant doses of ionizing radiation using non-invasive in vivo EPR spectroscopy of teeth in situ. Appl Radiat Isot. 2005 Feb;62(2):293-9. doi: 10.1016/j.apradiso.2004.08.016.
- Swartz HM, Liu KJ, Goda F, Walczak T. India ink: a potential clinically applicable EPR oximetry probe. Magn Reson Med. 1994 Feb;31(2):229-32. doi: 10.1002/mrm.1910310218.
- Swartz, HM, R.P. Mason, N. Hogg, B. Kalyanaraman, T. Sarna, P.M. Plonka, M. Zareb, P.L. Gutierrez, and L.J. Berliner, Free Radicals and Medicine, in Biomedical ESR a volume in the Biological Magnetic Resonance Series (S.S. Eaton, G.R. Eaton, L.J. Berliner, eds.), Kluwer Publisher (The Netherlands, New York, Boston), Chapter 3, pp. 25-74 (2004a).
- Swartz HM, Williams BB, Jarvis LA, Zaki BI, Gladstone DJ. Repeated monitoring of tumor oxygen while breathing carbogen to determine the therapeutic potential of hyperoxic therapy. Pract Radiat Oncol. 2013 Apr-Jun;3(2 Suppl 1):S23-4. doi: 10.1016/j.prro.2013.01.084. Epub 2013 Mar 25. No abstract available.
- Swartz HM, Williams BB, Hou H, Khan N, Jarvis LA, Chen EY, Schaner PE, Ali A, Gallez B, Kuppusamy P, Flood AB. Direct and Repeated Clinical Measurements of pO2 for Enhancing Cancer Therapy and Other Applications. Adv Exp Med Biol. 2016;923:95-104. doi: 10.1007/978-3-319-38810-6_13.
- Swartz HM, Williams BB, Zaki BI, Hartford AC, Jarvis LA, Chen EY, Comi RJ, Ernstoff MS, Hou H, Khan N, Swarts SG, Flood AB, Kuppusamy P. Clinical EPR: unique opportunities and some challenges. Acad Radiol. 2014 Feb;21(2):197-206. doi: 10.1016/j.acra.2013.10.011.
- Tremper KK, Friedman AE, Levine EM, Lapin R, Camarillo D. The preoperative treatment of severely anemic patients with a perfluorochemical oxygen-transport fluid, Fluosol-DA. N Engl J Med. 1982 Jul 29;307(5):277-83. doi: 10.1056/NEJM198207293070503.
- Vaeth JM. Hyperbaric oxygen and radiation therapy of cancer. Frontiers of Radiation Therapy and Oncology. 1: 195 (1968).
- Vahidi N, Clarkson RB, Liu KJ, Norby SW, Wu M, Swartz HM. In vivo and in vitro EPR oximetry with fusinite: a new coal-derived, particulate EPR probe. Magn Reson Med. 1994 Feb;31(2):139-46. doi: 10.1002/mrm.1910310207.
- Vaupel P. Tumor microenvironmental physiology and its implications for radiation oncology. Semin Radiat Oncol. 2004 Jul;14(3):198-206. doi: 10.1016/j.semradonc.2004.04.008.
- Vaupel P, Hockel M, Mayer A. Detection and characterization of tumor hypoxia using pO2 histography. Antioxid Redox Signal. 2007 Aug;9(8):1221-35. doi: 10.1089/ars.2007.1628.
- Williams BB, Khan N, Zaki B, Hartford A, Ernstoff MS, Swartz HM. Clinical electron paramagnetic resonance (EPR) oximetry using India ink. Adv Exp Med Biol. 2010;662:149-56. doi: 10.1007/978-1-4419-1241-1_21.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby skórne
- Nowotwory według typu histologicznego
- Nowotwory według lokalizacji
- Nowotwory gruczołowe i nabłonkowe
- Choroby piersi
- Nowotwory, płaskonabłonkowy
- Nowotwory, komórki podstawne
- Nowotwory
- Nowotwory piersi
- Nowotwory głowy i szyi
- Rak
- Rak, płaskonabłonkowy
- Nowotwory skóry
- Rak, podstawnokomórkowy
- Fizjologiczne skutki leków
- Środki ochronne
- Odtrutki
- Węgiel drzewny
Inne numery identyfikacyjne badania
- 29880 D17008
- P01CA190193 (Grant/umowa NIH USA)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .
Badania kliniczne na Czerniak
-
M.D. Anderson Cancer CenterNational Cancer Institute (NCI)ZakończonyStopień IV czerniaka skóry AJCC v6 i v7 | Czerniak oka | Stadium IIIC Czerniak skóry AJCC v7 | Czerniak skóry | Czerniak błony śluzowej | Stadium IIIB czerniak skóry AJCC v7 | Stopień IV czerniaka błony naczyniowej oka AJCC v7 | Stopień IIIB Czerniak błony naczyniowej oka AJCC v7 | Stopień IIIC Czerniak błony... i inne warunkiStany Zjednoczone