Местное воспаление не коррелирует с бактериальной колонизацией и загрязнением периневральных катетеров

Двести ортопедических пациентов, которым планируется проведение ПНК, проспективно рандомизируют в группу удаления ПНК со спиртовой дезинфекцией кожи или группу удаления ПНК без дезинфекции кожи.

После стандартизированного размещения ПНП в стерильных условиях пациенты получают периоперационную антибиотикопрофилактику и периодически регистрируют клинические признаки локального воспаления или инфекции: ПНП осматривали два раза в день на наличие клинических признаков местного воспаления и локальной инфекции. Пациентов также оценивали на наличие клинических признаков системной инфекции. Адгезивную повязку меняли только в том случае, если она смещалась или если кровь или выделения делали невозможным визуализацию места пункции. Для смены повязки анестезиолог надел маску, шапочку и стерильные перчатки.

В послеоперационном периоде, через 6 часов после первоначального болюса, к микрофильтру ПНЦ была подключена инфузионная линия местного анестетика. Все пациенты получали контролируемую пациентом периневральную анальгезию (базальная скорость 5 мл/ч, болюс 4 мл, время блокировки 20 мин) 0,3% ропивакаина в течение 24 часов, а затем снижали до 0,2%.

ПНП удаляли в стерильных условиях через 72 ч или ранее в случае признаков инфекции: Удаление ПНК выполнял в хирургическом отделении анестезиолог по стандартной процедуре: В маске и шапочке снимали липкую кожную повязку . В «С-группе» кожу теперь дезинфицировали аэрозольным спиртовым раствором (пропанол-бифенол). Процедуру продолжили через три минуты, когда кожа стала сухой, анестезиолог был в стерильных перчатках и использовал стерильный пинцет.

Дистальную часть ПНК (направленную к кончику ПНК) вытягивали на 1 см в месте введения, а затем стерильными ножницами отрезали дистально от пинцета. Затем дистальную часть ПНГ полностью удаляли стерильным пинцетом и стерильными ножницами разрезали на две части: кончик (определяемый как самые дистальные 2 см) и подкожную часть, которые помещали в отдельные сухие стерильные контейнеры. контейнеры.

Наконец, оставшуюся проксимальную часть ПНК выбрасывали.

Стерильные контейнеры, содержащие ПНЦ, хранили при 4°C и в тот же день отправляли в лабораторию для микробиологического анализа ПНЦ: ПНЦ накатывали на чашки с агаром с овечьей кровью (Becton Dickinson BD, Базель, Швейцария), аналогично полуколичественному анализу. метод культивирования для внутривенных катетеров [10] и после этого немедленно переносили в жидкую среду обогащения (тиогликолатная среда, BD Basel Switzerland). Агар с бараньей кровью инкубировали в течение 2 сут, тиогликолят – 5 сут. В случае роста только на питательной среде аликвоту жидкости пересевают на твердую среду. Отчеты считались положительными, если присутствовал какой-либо рост. Идентификацию выделенных бактерий и определение чувствительности проводили по стандартным методикам.

У всех пациентов наблюдались клинические признаки локальной инфекции в месте введения ЧПУ и клинические признаки системной инфекции через неделю после удаления ЧПУ. Для корреляции обнаружения бактерий на ПЯЦ с клиническими признаками воспаления чувствительность, специфичность, положительные и отрицательные прогностические значения рассчитывали на основе следующих трех категорий: 1) любой рост бактерий, включая обогащение, 2 ) больше или равно 5 колоний и 3) больше или равно 15 колоний при полуколичественном методе культивирования соответственно.