- ICH GCP
- Реестр клинических исследований США
- Клиническое испытание NCT02610686
Оценка эффективности хлорохина для лечения инфекций Plasmodium Vivax в Центральном Вьетнаме
Понимание масштабов и регионального распространения малярии CQR vivax и выявление ранних признаков устойчивости имеет решающее значение для предотвращения распространения устойчивых штаммов, оптимизации рекомендаций по лечению и снижения риска рецидивирующей и тяжелой малярии. Во Вьетнаме спорадически сообщалось о CQR у P.vivax. Одно исследование, проведенное в провинции Биньтхуан (центрально-южный Вьетнам) в конце 1990-х годов, продемонстрировало ранние рецидивы P.vivax (7%) на 16-й день после 3-дневного лечения CQ. Однако в сводном отчете для Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), включающем данные из 11 дозорных центров исследований, проведенных в период с 2006 по 2011 год в центральном и южном Вьетнаме (всего 350 пациентов), P.vivax по-прежнему считается чувствительным к CQ. Совсем недавно в когортном исследовании, проведенном в провинции Куангнам (Центральный Вьетнам), в котором пациентов с P.vivax радикально лечили CQ и примахином (10 дней по 0,5 мг/кг/день) в соответствии с национальными рекомендациями, 28-дневная частота неудач была измерена на уровне 3,45%, а концентрации CQ в крови, измеренные в день рецидива (> 100 нг / мл), подтвердили резистентность у трех пациентов. Текущие национальные рекомендации по схеме радикального лечения инфекций, вызванных P.vivax, рекомендуют 3 дня CQ (общая доза 25 мг/кг массы тела (мт)) вместе с 14 днями примахина в дозе 0,25 мг/кг мт/день.
Текущий протокол ВОЗ рекомендует 28-дневное наблюдение для оценки эффективности CQ для лечения инфекций, вызванных P.vivax. Однако рецидив резистентных паразитов на ранней стадии может произойти после 28-го дня при наличии уровней CQ в крови выше минимальной эффективной концентрации (MEC, ≥100 нг/мл), а рецидивы могут возникнуть уже через 36 дней после стандартного лечения CQ. Поэтому для подтверждения CQR рекомендуется продлить период наблюдения до 42 или 63 дня и измерить уровень CQ в цельной крови на 28 день и во время рецидива. Более того, было показано, что возникающая лекарственная устойчивость P.vivax связана с задержкой элиминации паразитов после лечения, т. е. некоторые паразиты все еще обнаруживаются на 3-й день. Целью настоящего исследования является оценка чувствительности in vivo и ex vivo к P.vivax в CQ в Центральном Вьетнаме в соответствии с рекомендуемой в настоящее время схемой радикального лечения и с использованием сертифицированного GMP CQ.
Обзор исследования
Подробное описание
3.1 Дизайн исследования Это исследование разработано как 42-дневное исследование эффективности лекарственного средства для оценки клинических и паразитологических ответов после лечения малярийных инфекций, вызванных P.vivax. Симптоматические пациенты с моноинфекцией P. vivax, отвечающие критериям исследования, будут включены в исследование и получат лечение CQ (общая доза 25 г/кг в течение 3 дней). Лечение будет осуществляться под непосредственным наблюдением, и пациенты будут находиться под активным наблюдением в течение 42 дней в соответствии с расширенным протоколом ВОЗ. По истечении периода наблюдения все пациенты будут получать примахин в соответствии с национальными рекомендациями по радикальному излечению инфекций, вызванных P.vivax.
3.2 Место проведения исследования и популяция Исследование будет проводиться в округе Кронг Па, провинция Зя Лай, где заболеваемость малярией P.falciparum и P.vivax является одной из самых высоких в стране. Исследование будет проходить в коммуне Чу'Р Кам, где исследовательская группа будет работать с местным медицинским персоналом и всеми близлежащими коммунами с больными малярией.
Местное население в основном состоит из этнического меньшинства джарай, и основное занятие состоит из подсечно-огневого земледелия (в основном кукурузы, маниока и риса) на лесных полях, а также сезонных работ на каучуковых плантациях и мелкосерийного производства товаров для повседневного потребления. пропитание или торговля кофе и орехи кешью. Климат тропический с сухим сезоном с ноября по апрель и сезоном дождей с мая по октябрь. Район холмистый и засажен деревьями (вторичный лес), а основным переносчиком малярии является Anopheles dirus.
3.4 Исследуемая популяция Целевая популяция включает всех пациентов, инфицированных P. vivax (детей и взрослых), либо спонтанно обратившихся в ЦГП, либо выявленных в ходе активного скрининга среди населения.
3.5 Процедуры исследования 3.5.1 Скрининг и набор Всем консультируемым пациентам, которые соответствуют основным критериям включения во время скрининга, будет присвоен последовательный номер скрининга, и врач будет более тщательно их оценивать. Как только пациент соответствует всем критериям включения, его или ее (или родителя или опекуна в случае детей) попросят дать согласие на участие в исследовании. Затем ему/ей будет присвоен номер исследования (ID = порядковая нумерация). Любой человек, решивший не участвовать в исследовании, будет обследован, пролечен и под наблюдением персонала медицинского учреждения в соответствии со стандартом медицинской помощи, установленным Министерством здравоохранения.
При регистрации (день 0) пациент будет обследован и заполнен стандартизированным предварительно закодированным вопросником. Образец венозной крови будет собираться в стерильные пробирки для вакутейнеров, содержащие ЭДТА или кислотно-цитратно-декстрозный (ЭДТА/АКД) у всех пациентов при включении в исследование. У взрослых будет взято не менее 5 мл крови и не более 8 мл, а у детей — от 1 мл/кг до 5 мл. Две капли крови будут добавлены в пробирку объемом 1,5 мл, содержащую 500 мкл реагента RNAprotect (Qiagen).
3.5.2 Лечение Все пациенты будут получать полный курс лечения CQ в дозе 25 мг основания CQ на кг массы тела (м.т.) в течение 3 дней и под непосредственным наблюдением. Пациенты будут наблюдаться в течение 60 минут после лечения на предмет побочных реакций или рвоты. Те пациенты, которые рвут свое лекарство в течение первых 30 минут, получат повторную полную дозу; те, кого рвет от 30 до 60 минут, получат половину дозы. Если пациента снова вырвет, его или ее выведут и предложат неотложную терапию.
Спасательное лекарство:
Перорально = CQ (3 дня, 25 мг/кг) вместе с примахином (0,25 мг/кг/день в течение 14 дней); Внутривенно (в/в) = артесунат (4 мг/кг/день) в течение как минимум 24 часов и до тех пор, пока пациент не сможет принимать лекарство перорально. Затем продолжите пероральный прием DHA-PPQ в течение 3 дней.
Радикальное излечение. Лечение примахином будет отложено до конца периода наблюдения и назначено в соответствии с рекомендациями национальных руководств, т. е. 0,25 мг/кг/день в течение 14 дней всем пациентам с отрицательным экспресс-тестом на Г6ФД.
3.5.3 Последующее наблюдение С 0-го дня до исчезновения паразитов пациенты будут контролироваться каждые 12 часов с помощью микроскопии крови, по крайней мере, до 3-го дня и дольше, если необходимо, до полного уничтожения паразитов, определяемого как два последовательных отрицательных слайда.
При каждом посещении пациента будут опрашивать и осматривать, а образец крови из пальца будет собираться для следующих результатов: два предметных стекла крови для наблюдения ЛМ (толстая и тонкая пленка), 200 мкл крови в микротейнерной пробирке с ЭДТА/АКД для ДНК. выделения и 2 капли крови в другую пробирку микротейнера, содержащую RNAprotect для выделения РНК. На 3-й день будет взята дополнительная капля крови для измерения концентрации гемоглобина с помощью метода Hemocue.
День 7, 14, 21, 28, 35, 42 Пациенты будут опрошены и обследованы, форма последующего наблюдения будет заполнена, а любое нежелательное явление будет задокументировано. Образец крови из пальца будет собран для следующих результатов: два предметных стекла крови для наблюдения ЛМ (толстая и тонкая пленка), 200 мкл крови в пробирке с микротейнерами с ЭДТА/АКД для выделения ДНК и 2 капли крови в пробирке с РНКзащитой. .
Кроме того, на 7-й день берут 100 мкл крови на фильтровальную бумагу для определения концентрации CQ в крови. На 7-й, 14-й, 28-й и 42-й дни концентрацию гемоглобина (Hemocue) измеряют по уколу пальца.
День рецидива P.vivax: если рецидив подтвердится, перед введением экстренного лечения будет взят дополнительный образец венозной крови. 100 мкл этой венозной крови наносят на фильтровальную бумагу для определения концентрации CQ в крови, а оставшуюся часть используют для анализа ex vivo и криоконсервации, как подробно описано в Приложении VI-C.
3.5.4 Потеря для последующего наблюдения Нарушения протокола Потеря для последующего наблюдения происходит, когда, несмотря на все разумные усилия, зарегистрированный пациент не посещает запланированные визиты и не может быть найден. Этим пациентам не будет назначен результат лечения. Эти пациенты будут классифицированы как потерянные для последующего наблюдения и подвергнуты цензуре или исключены из анализа.
Пациенты исследования, которые соответствуют любому из следующих критериев, будут классифицированы как выбывшие: i) отзыв согласия; ii) неспособность завершить лечение; iii) серьезные нежелательные явления, требующие прекращения лечения до завершения полного курса; iv) нарушение правил зачисления; v) добровольное нарушение протокола; vi) ненамеренное нарушение протокола
3.5.5 Лабораторные процедуры и оценка Микроскопия При скрининге необходимо получить три предметных стекла (тонкие/толстые мазки крови), одно из которых следует быстро окрасить (10% Гимза в течение 10 минут) для исследования в ограниченном числе полей, чтобы убедиться в наличии бесполых форм P.vivax. при минимальной паразитемии 250/мкл. Как только пациент будет зарегистрирован, два других предметных стекла будут окрашены более тщательно (3% Гимза в течение 45 минут). Плотность выражается как количество бесполых паразитов на мкл крови и рассчитывается путем деления количества бесполых паразитов на количество подсчитанных лейкоцитов и с поправкой на предполагаемую плотность лейкоцитов (обычно 8000 на мкл). Когда количество бесполых паразитов составляет менее 10 на 200 лейкоцитов, подсчет будет проводиться по крайней мере на 500 лейкоцитов. Мазок крови будет считаться отрицательным, если исследование 1000 лейкоцитов не выявит бесполых паразитов.
- Кольцевая стадия паразитемии: количество кольцевых стадий будет подсчитано во всех положительных предметных стеклах в день 0 и в день рецидива против 200 бесполых паразитов; только те изоляты, для которых доля кольцевых стадий превышает 65%, будут использоваться для анализа лекарств ex vivo.
- Гаметоциты: плотность будет рассчитываться путем подсчета количества гаметоцитов на 500 лейкоцитов.
Уровни гемоглобина Уровни гемоглобина будут измеряться в цельной крови, собранной в микрокювету с использованием Hemocue в соответствии с инструкциями производителя.
Измерение концентрации CQ на 7-й день и в день рецидива из 100 мкл крови, выброшенной на хроматографическую бумагу (31ETCHR, Whatman). ДНК для молекулярного обнаружения и генотипирования паразитов будет извлечена в ITM/NIMPE из образцов крови из пальца, собранных в микротейнеры. Молекулярное подтверждение наличия видов Plasmodium в день 0 будет выполнено с помощью количественной ПЦР, нацеленной на рибосомный ген 18S. Тот же метод количественной ПЦР будет использоваться для выявления и количественного определения инфекций, вызванных P. vivax, в День 0 и последующих образцов.
Генотипы P. vivax будут идентифицированы с помощью ПЦР-амплификации 3 маркеров, особенно эффективных для снятия отпечатков пальцев в клинических испытаниях (MS16, Pv3.2 и msp1F3), с последующим электрофорезом в капиллярном геле.
Экстракция РНК и RT-qPCR для гаметоцитов РНК будет экстрагирована из образцов RNAprotect в ITM/NIMPE с использованием аффинных колонок и расщепления ДНКазой геномной ДНК. Для обнаружения и количественной оценки стадий гаметоцитов P. vivax будет проведена количественная ПЦР с обратной транскрипцией (RT-qPCR), нацеленная на транскрипты гена Pvs25, в день D0 и во всех последующих образцах.
Лабораторный анализ лекарственной устойчивости (день 0 и рецидив) Вкратце, кровь будет центрифугирована, а плазма будет храниться при -20ºC. Верхнюю часть лейкоцитарной пленки осторожно удаляют и хранят при температуре -20ºC. Красные кровяные тельца (эритроциты) ресуспендируют в PBS (1:1), а лейкоциты удаляют с использованием колонок с целлюлозой (Sigma). Отфильтрованные клетки промывают и измеряют осадок перед повторным суспендированием при 50% гематокрите в среде McCoy (смесь кровяной среды, BMM, 4 мл).
Анализы чувствительности к лекарствам ex vivo: Вкратце, планшеты с предварительно дозированными 7-точечными двукратными разведениями CQ, PPQ, DHA и хинина будут подготовлены в соответствии с процедурами WWARN [http://www.wwarn.org/sites/default/files/INV08_PFalciparumDrugSensitivity .pdf]. Минимальные ингибирующие концентрации и IC50 будут рассчитываться с использованием инструмента анализа и отчетности in vitro (IVART), разработанного WWARN в режиме онлайн.
Тест на дефицит G6PD: все пациенты будут проверены на дефицит G6PD с помощью теста CareStart (Access Bio, Нью-Джерси, США) по месту оказания медицинской помощи перед лечением PQ.
4. Контрольные визиты на объект для обеспечения качества будут планироваться на регулярной основе. Во время этих посещений информация, записанная в формах отчетов о делах, будет сверяться с первичными документами. После того, как формы отчетов о случаях будут сопоставлены в конце судебного разбирательства, они будут проверены на предмет полноты и точности. Данные будут дважды внесены в электронную базу данных, где используются специально разработанные компьютерные проверки для выявления отдельных нарушений протокола и ошибок в данных.
Все мазки крови при поступлении будут прочитаны в исследовательском центре, а также старшим микроскопистом в координационном центре. Кроме того, в ITM будет проведен внешний контроль качества 10% случайно выбранных слайдов. Для каждого из молекулярных анализов (qPCR, RT-qPCR и генотипирование паразитов) 10% образцов, обработанных в NIMPE, будут случайным образом выбраны для повторного анализа в ITM. Внешний контроль качества результатов анализа лекарств ex vivo будет проводиться в ITM, где слайды будут повторно исследованы на наличие 10% случайно выбранных изолятов.
5. Статистический аналитический план. Анализ частоты излечения на 42-й день будет проводиться как для популяции пациентов, намеренных лечиться (ITT), так и для популяции пациентов, поддающихся оценке (согласно протоколу). Анализ данных будет выполняться с использованием программного обеспечения STATA 12. Для категориальных переменных проценты и соответствующие 95% доверительные интервалы будут рассчитываться по методу Уилсона. Пропорции будут сравниваться путем вычисления *2 с поправкой Йейтса или с помощью точного критерия Фишера, где это применимо. Нормально распределенные непрерывные данные будут сравниваться с помощью критерия Стьюдента и дисперсионного анализа. Данные, не соответствующие нормальному распределению, будут сравниваться с помощью U-критерия Манна-Уитни или дисперсионного анализа Крускала-Уоллиса. Корреляция между двумя непрерывными переменными будет оцениваться с использованием коэффициента ранговой корреляции Пирсона или Спирмена по мере необходимости.
Общий риск неэффективности лечения к 28-му и 42-му дню будет рассчитываться по методу Каплана-Мейера, а сравнения между группами риска будут проводиться с использованием логарифмического рангового теста. Скорректированный с помощью ПЦР риск на 28-й и 42-й день также будет рассчитываться по результатам генотипирования каждой рецидивирующей инфекции P.vivax. Время и скорость очистки от паразитов будут оцениваться с помощью онлайн-инструмента PCE, разработанного WWARN (http://www.wwarn.org/toolkit/data-management/parasite-clearance-estimator). Средние IC50 и IC90 для CQ будут оцениваться с использованием инструмента анализа и отчетности in vitro (IVART), разработанного WWARN (http://www.wwarn.org/toolkit/data-management/ivart).
Гематологические изменения будут оцениваться путем измерения изменений концентрации гемоглобина между днями 0, 3, 7, 14, 28 и 42 соответственно.
6. Этические вопросы 6.1 Этическое разрешение на проведение исследования будет получено от Комитета по этике NIMPE, Ханой и от Комитета по этике Университета Антверпена, а также от Институционального наблюдательного совета ITM, Анверпен.
6.2 Процесс получения согласия Пациенты будут включены в исследование только в том случае, если они (или родители или опекуны детей) дадут информированное согласие. Запрос согласия доступен на английском языке и переведен на вьетнамский язык, чтобы его могли прочитать только пациент, родитель или опекун. Подробная информация об испытании и его преимуществах и потенциальных рисках будет объяснена. После того, как будут даны ответы на все вопросы, на документе будет запрошена подпись. Если больной неграмотен, должен расписаться грамотный свидетель; если возможно, подписавший будет выбран участником и не будет иметь никакого отношения к исследовательской группе.
Тип исследования
Регистрация (Ожидаемый)
Фаза
- Фаза 4
Контакты и местонахождение
Места учебы
-
-
Gia Lai
-
Pleiku, Gia Lai, Вьетнам
- Рекрутинг
- Chu R Cam
-
Контакт:
- Phuc Bui, MD, PhD
- Номер телефона: +84 913522874
- Электронная почта: phucnimpe@yahoo.com
-
Контакт:
- Hong Nguyen, MD
- Номер телефона: +84 01668188919
- Электронная почта: nvhong1982@yahoo.com
-
Младший исследователь:
- Annette Erhart, MD, PhD
-
Младший исследователь:
- Edu Rovira Vallbona, PhD
-
-
Критерии участия
Критерии приемлемости
Возраст, подходящий для обучения
Принимает здоровых добровольцев
Полы, имеющие право на обучение
Описание
Критерии включения:
- Моноинфекция P. vivax при световой микроскопии (LM) с плотностью бесполых паразитов >250/мкл
- Возраст ≥1 год
- Подмышечная температура ≥ 37,5º C и/или лихорадка в анамнезе в течение предшествующих 48 часов;
- Согласие пациента или опекуна на зачисление и согласие на взятие проб и повторные посещения;
Критерий исключения:
- Общие опасные признаки или симптомы тяжелой малярии (согласно определениям ВОЗ; Приложение I);
- Признаки или симптомы тяжелой недостаточности питания, определяемые как соотношение массы тела к возрасту ≤ 3 стандартных отклонений ниже среднего (нормализованные референсные значения NCHS/ВОЗ, Приложение II);
- Подтвержденная на слайде инфекция любыми другими видами Plasmodium (включая смешанные инфекции);
- Тяжелая анемия, определяемая как гемоглобин (Hb)
- Известная гиперчувствительность к любому из оцениваемых препаратов;
- Наличие лихорадки из-за болезни, отличной от малярии;
- Серьезные и/или хронические заболевания в анамнезе (сердечные, почечные, печеночные заболевания, серповидно-клеточная анемия, ВИЧ/СПИД);
- Беременность (подтвержденная экспресс-тестом) или кормление грудью;
- Регулярное использование лекарств, которые могут влиять на фармакокинетику противомалярийных препаратов;
Учебный план
Как устроено исследование?
Детали дизайна
- Основная цель: Уход
- Распределение: Н/Д
- Интервенционная модель: Одногрупповое задание
- Маскировка: Нет (открытая этикетка)
Оружие и интервенции
Группа участников / Армия |
Вмешательство/лечение |
|---|---|
|
Другой: Хлорохин
Одно лечебное плечо
|
Эффективность хлорохина для лечения инфекций Plasmodium vivax
Другие имена:
|
Что измеряет исследование?
Первичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Количество пациентов с адекватным клиническим и паразитологическим ответом (ACPR) на 42-й день после лечения хлорохином.
Временное ограничение: день 42
|
Этот результат будет оцениваться на 42-й день наблюдения.
Исходы лечения, такие как ACPR, ранняя или поздняя клиническая неудача, определяются в соответствии с рекомендациями ВОЗ;
|
день 42
|
Вторичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Чувствительность ex vivo изолятов P. vivax к QN, DHA, PPQ и CQ (среднее значение IC50 и IC90)
Временное ограничение: На 0-й день и в день рецидива паразитемии P. vivax после первоначальной элиминации паразитов оценивали до 42-го дня.
|
Индивидуальные и средние значения IC50 и IC90 будут рассчитаны для каждого препарата с использованием инструмента IVART, доступного в Интернете (http://www.wwarn.org/tools-resources/toolkit/analyse/ivart).
|
На 0-й день и в день рецидива паразитемии P. vivax после первоначальной элиминации паразитов оценивали до 42-го дня.
|
Другие показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Количество пациентов с бесполыми паразитами за 42 дня наблюдения
Временное ограничение: С дня 0 по день 42
|
бесполые формы паразита будут обнаружены с помощью количественной ПЦР.
Этот результат будет измеряться для каждой временной точки выборки.
|
С дня 0 по день 42
|
|
Количество пациентов с паразитами, несущими молекулярные маркеры резистентности Plasmodium vivax к ХЛ, в 0-й день и среди рецидивирующих vivax-инфекций
Временное ограничение: С дня 0 по день 42
|
Все паразиты в день 0 будут генотипированы и подвергнуты секвенированию всего генома для выявления молекулярных маркеров устойчивости к CHL.
Такой же анализ будет проводиться для любого рецидива P. vivax, возникающего в течение 42-дневного наблюдения.
|
С дня 0 по день 42
|
|
Количество пациентов с дефицитом глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Г6ФД), измеренное с помощью экспресс-теста
Временное ограничение: день 42
|
Все пациенты будут проверены на дефицит G6PD с помощью экспресс-теста (CareStart) до того, как им будет назначено радикальное лечение примахином.
|
день 42
|
|
Количество пациентов с половыми паразитами за 42 дня наблюдения
Временное ограничение: С дня 0 по день 42
|
формы половых паразитов будут обнаружены с помощью RT-qPCR.
Этот результат будет измеряться для каждой временной точки выборки.
|
С дня 0 по день 42
|
|
Количество пациентов с аллельными вариантами дефицита глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Г6ФД)
Временное ограничение: День 42
|
Аллельные варианты G6PD будут оцениваться с помощью аллель-специфического анализа количественной ПЦР.
|
День 42
|
Соавторы и исследователи
Следователи
- Главный следователь: Duong Tran, MD, PhD, National Institute of Malariology Parasitology Entomology, Hanoi, Vietnam
- Главный следователь: Anna Rosanas-Urgell, MD, PhD, Institute of Tropical Medicine, Antwerp, Belgium
Публикации и полезные ссылки
Общие публикации
- Rosanas-Urgell A, Mueller D, Betuela I, Barnadas C, Iga J, Zimmerman PA, del Portillo HA, Siba P, Mueller I, Felger I. Comparison of diagnostic methods for the detection and quantification of the four sympatric Plasmodium species in field samples from Papua New Guinea. Malar J. 2010 Dec 14;9:361. doi: 10.1186/1475-2875-9-361.
- Koepfli C, Mueller I, Marfurt J, Goroti M, Sie A, Oa O, Genton B, Beck HP, Felger I. Evaluation of Plasmodium vivax genotyping markers for molecular monitoring in clinical trials. J Infect Dis. 2009 Apr 1;199(7):1074-80. doi: 10.1086/597303.
- Wampfler R, Mwingira F, Javati S, Robinson L, Betuela I, Siba P, Beck HP, Mueller I, Felger I. Strategies for detection of Plasmodium species gametocytes. PLoS One. 2013 Sep 27;8(9):e76316. doi: 10.1371/journal.pone.0076316. eCollection 2013.
- Auburn S, Marfurt J, Maslen G, Campino S, Ruano Rubio V, Manske M, Machunter B, Kenangalem E, Noviyanti R, Trianty L, Sebayang B, Wirjanata G, Sriprawat K, Alcock D, Macinnis B, Miotto O, Clark TG, Russell B, Anstey NM, Nosten F, Kwiatkowski DP, Price RN. Effective preparation of Plasmodium vivax field isolates for high-throughput whole genome sequencing. PLoS One. 2013;8(1):e53160. doi: 10.1371/journal.pone.0053160. Epub 2013 Jan 4.
- Kerlin DH, Boyce K, Marfurt J, Simpson JA, Kenangalem E, Cheng Q, Price RN, Gatton ML. An analytical method for assessing stage-specific drug activity in Plasmodium vivax malaria: implications for ex vivo drug susceptibility testing. PLoS Negl Trop Dis. 2012;6(8):e1772. doi: 10.1371/journal.pntd.0001772. Epub 2012 Aug 7.
- Borlon C, Russell B, Sriprawat K, Suwanarusk R, Erhart A, Renia L, Nosten F, D'Alessandro U. Cryopreserved Plasmodium vivax and cord blood reticulocytes can be used for invasion and short term culture. Int J Parasitol. 2012 Feb;42(2):155-60. doi: 10.1016/j.ijpara.2011.10.011. Epub 2011 Dec 27.
- Kim S, Nguon C, Guillard B, Duong S, Chy S, Sum S, Nhem S, Bouchier C, Tichit M, Christophel E, Taylor WR, Baird JK, Menard D. Performance of the CareStart G6PD deficiency screening test, a point-of-care diagnostic for primaquine therapy screening. PLoS One. 2011;6(12):e28357. doi: 10.1371/journal.pone.0028357. Epub 2011 Dec 2.
- Rovira-Vallbona E, Van Hong N, Kattenberg JH, Huan RM, Binh NTH, Ngoc NTH, Guetens P, Hieu NL, Hien NTT, Sang VT, Long ND, Sauve E, Duong TT, Xa NX, Erhart A, Rosanas-Urgell A. High Proportion of Genome-Wide Homology and Increased Pretreatment pvcrt Levels in Plasmodium vivax Late Recurrences: a Chloroquine Therapeutic Efficacy Study. Antimicrob Agents Chemother. 2021 Jul 16;65(8):e0009521. doi: 10.1128/AAC.00095-21. Epub 2021 Jul 16.
Даты записи исследования
Изучение основных дат
Начало исследования
Первичное завершение (Ожидаемый)
Завершение исследования (Ожидаемый)
Даты регистрации исследования
Первый отправленный
Впервые представлено, что соответствует критериям контроля качества
Первый опубликованный (Оценивать)
Обновления учебных записей
Последнее опубликованное обновление (Оценивать)
Последнее отправленное обновление, отвечающее критериям контроля качества
Последняя проверка
Дополнительная информация
Термины, связанные с этим исследованием
Ключевые слова
Дополнительные соответствующие термины MeSH
Другие идентификационные номера исследования
- ITM- NIMPE
Эта информация была получена непосредственно с веб-сайта clinicaltrials.gov без каких-либо изменений. Если у вас есть запросы на изменение, удаление или обновление сведений об исследовании, обращайтесь по адресу register@clinicaltrials.gov. Как только изменение будет реализовано на clinicaltrials.gov, оно будет автоматически обновлено и на нашем веб-сайте. .