- ICH GCP
- Реестр клинических исследований США
- Клиническое испытание NCT04545307
Трансплантация аллогенных МСК у больных с некрозом пульпы и хроническим верхушечным периодонтитом (MSC)
Трансплантация аллогенных мезенхимальных стромальных клеток у пациентов с несформированными верхушечными зубами с некрозом пульпы и хроническим верхушечным периодонтитом
Цель исследования — оценить влияние имплантации мезенхимальных стромальных клеток (МСК) на пульпу и периапикальную регенерацию несформированных зубов с некрозом пульпы и хроническим апикальным периодонтитом.
ФОН:
- Посттравматический некроз пульпы препятствует развитию корней у детей и подростков.
- Мультипотентная способность МСК дифференцироваться в костеобразующие клетки (остеобласты) и дентинобразующие клетки (одонтобласты) позволила разработать протоколы для индукции регенерации пульпы зуба в доклинических моделях и у пациентов с несформированными зубами с некрозом пульпы.
ВЛИЯНИЕ:
- Во всем мире посттравматический некроз пульпы у детей и подростков представляет собой проблему для здоровья в области эндодонтии.
- Лечение МСК могло бы обеспечить эффективную терапевтическую альтернативу пациентам с некрозом пульпы и незавершенным формированием корня.
- Возможная регенерация пульпы и периапикальной области несформированных зубов, вызванная MSC, может иметь огромное влияние на лечение этих пациентов.
Право на участие в исследовании имплантатов EMC Возраст: от 6 до 16 лет Пол: мужчина или женщина Приняты здоровые добровольцы: НЕТ.
ГРУППЫ ЛЕЧЕНИЯ:
В настоящем исследовании имплантация МСК будет проводиться у пациентов с несформированными зубами с некрозом пульпы с апикальным периодонтитом, которым будет проведено соответствующее эндодонтическое лечение (согласно рекомендациям Американской ассоциации эндодонтии) и имплантация аллогенных КМ-МСК. . Эта группа будет сравниваться с историей, сделанной в постдипломной эндодонтии Центрального университета Венесуэлы (UCV), и с международной серией случаев реваскуляризации.
Клиническое наблюдение за каждым пациентом:
- Клинический контроль (оценка лица, оценка десен, апикальная пальпация, горизонтальная и вертикальная перкуссия, тесты на чувствительность к холоду и теплу) будет проводиться в дни 0, 7, 30, 90, 180 и 364. Кроме того, через два года после имплантации МСК будет проведена клиническая оценка.
- Радиологический контроль будет проводиться в дни 0, 7, 30, 90, 180 и 364. Кроме того, они будут проводиться через два года после имплантации МСК.
- Томографическая оценка будет выполнена, когда периапикальная реконструкция будет очевидна на периапикальной рентгенограмме. Для измерения формирования корня, сужения корневого канала и проверки периапикального восстановления в 3D.
Обзор исследования
Статус
Подробное описание
Эндодонтическая процедура у пациентов, включенных в это исследование, будет сосредоточена на случаях некроза пульпы с апикальным периодонтитом без признаков инфекционных процессов.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Реагенты Мышиные моноклональные антитела, направленные против антигенов дифференцировки человека (CD34, CD45, CD14, CD90, CD73, CD29, CD49b, CD166), конъюгированные с флуоресцеинизотиоцианатом (CFI) или фикоэритрином (PE), были приобретены у BD Biosciences (США).
Выделение и культивирование мезенхимальных стромальных клеток (МСК), полученных из костного мозга человека. В настоящем исследовании будут использованы изолированные ЭМП костного мозга (КМ) пациентов с диагнозом «посттравматическое несращение» (нарушение сращения костей в местах переломов). Эти клетки были трансплантированы в область псевдоартроза, чтобы вызвать регенерацию кости у этих пациентов. Протокол регенерации кости с помощью трансплантации ЭМП был проведен в Университетской больнице Каракаса, Университетской больнице Лос-Андес, Больнице Перес-де-Леон II и получил одобрение комитетов по биоэтике каждого учреждения и каждого пациента посредством информированного согласия. В этом протоколе костный мозг каждого пациента изолировали путем прокола гребня подвздошной кости. Эта процедура проводилась в операционной под наркозом и врачом-специалистом. Аспират МО помещали в среду альфа-МЕМ (Invitrogen, США) с гепарином (Sanofi Aventis). Мононуклеарные клетки отделяли центрифугированием в градиенте Ficoll-Hypaque (GE Healthcare, Швеция) и культивировали в среде альфа-MEM-Chang (Irvine Scientific, США), обогащенной 20% аутологичной сывороткой. Эти клетки содержали в культуре в контролируемой среде при 37ºC и 5% CO2. Через 72 часа неприлипшие клетки удаляли и добавляли основную культуральную среду (альфа-MEM-Chang/20% аутологичной сыворотки). Их прилипание к пластику изолировало МСК. Замену культуральной среды проводили до достижения степени слияния, близкой к 70-80%. МСК размножали путем шелушения культур, следуя описанному выше процессу. Микробиологические исследования проводили после получения БМ и перед имплантацией МСК. После использования МСК партию этих клеток подвергали криоконсервации при -70 -С.
Фенотипическая характеристика МСК. Изучение фенотипических характеристик МСК проводили методом проточной цитометрии. Для чего прикрепленные к МО клетки отделяли от культурального флакона с помощью трипсиноподобных ферментов. В дальнейшем клетки инкубировали с антителами, специфичными к маркерам МСК (CD90, CD73, CD105, CD29, CD166 и CD49b) и гемопоэтическими (CD34, CD45 и CD14). Цитометрический анализ маркеров экспрессии показал, что 100% клеток, использованных для трансплантации у каждого пациента, были МСК.
Исследования дифференцировки МСК. Способность МСК к мультипотенциальной дифференцировке исследовали путем культивирования этих клеток в остеогенной, хондрогенной и адипогенной среде для дифференцировки, следуя методологии, аналогичной описанной ранее. Вкратце, МСК отделяли и высевали в 24-луночные культуральные планшеты с плотностью клеток 5×104 на лунку, добавляя соответствующую среду для дифференцировки. Для остеогенной дифференцировки МСК культивировали в присутствии базовой среды, обогащенной дексаметазоном (100 нМ, Biotech), аскорбиновой кислотой (10 мМ, Sigma), неорганическим фосфатом (1,8 мМ, Merck) и бета-глицеролфосфатом (2 мМ, Sigma). Для хондрогенной дифференцировки клетки культивировали в коммерческой среде для хондроцитов (Cell Application, США), а для дифференцировки в сторону адипогенной линии использовали коммерческую среду NH Adipodiff Human (Miltenyi, США). Во всех случаях клетки выдерживали в культуре в течение 21-28 сут со сменой среды каждые 4-5 сут. Для демонстрации изменений, связанных с процессом дифференцировки, клетки фиксировали параформальдегидом (Merck, США) и для каждого случая проводили специфическое окрашивание. Вкратце, ализариновый красный для обнаружения отложений кальция (свидетельство остеогенеза), альциановый синий для обнаружения протеогликанов (свидетельство хондрогенеза) и масляный красный (масляный красный) для выявления липидов (свидетельство адипогенеза). Во всех случаях проводили микроскопическое наблюдение и фоторегистрацию. Для эндотелиальной дифференцировки (CEn) ЭМП культивировали в среде MCDB 131 (Invitrogen, США), обогащенной 10% аутологичной сывороткой, 10 мкг/мл человеческого эпидермального фактора роста (hu-EGF, R&D) и гидрокортизоном (1 мкг/мл, Sigma). .
Имплантация МСК у пациентов с некрозом пульпы и апикальным периодонтитом. Все процедуры обработки МСК будут проводиться в чистой комнате отделения клеточной терапии IVIC в соответствии со стандартами надлежащей производственной практики (GMP). Аллогенные BM-MSC от пациентов с диагнозом посттравматического несращения и пролеченных имплантацией этих клеток будут использоваться для индукции регенерации кости. МСК, которые будут использоваться в этом протоколе, ранее были фенотипически и функционально охарактеризованы. MSC будет разморожен, выращен и расширен, как описано ранее. Часть клеток будет храниться в среде для МСК, а часть будет культивироваться в среде эндотелиальной дифференцировки (СЕМ-Эндо). После достижения необходимого количества МСК и МСК-Эндо суспензию этих клеток (по 75 000 клеток из каждой) помещают в стерильные культуральные пробирки, содержащие питательную среду DMEM-F12, без фенолового красного, с добавлением 20% аутологичных сыворотка. Каждая пробирка, содержащая MSC/MSC-Endo, будет транспортироваться в небольшом подвале для перевозки биологических образцов при комнатной температуре в Стоматологическую службу Венецианского института научных исследований (IVIC).
В стерильных условиях пациенту проводят местную анестезию в области пораженного зуба; корневой канал пораженного зуба будет обнажен и подготовлен для установки имплантата MSC / MSC-Endo / PRP. Одновременно из каждой пробирки удаляют супернатант культуральной среды и ресуспендируют «кнопку (осадок)» СЕМ/СЕМ-Эндо в аутологичной богатой тромбоцитами плазме (PRP). Впоследствии к суспензии MSC/Endo/PRP будут добавлены 5% CaCl2 и тромбин. Немедленно и до образования сгустка в корневой канал, покрытый коллагеновой мембраной, будет помещено 20 мкл суспензии CEM/CEM-Endo/PRP. В последующем будет проведена процедура обтурации биокерамикой на уровне пульповой камеры, иономерным стеклом для защиты биокерамики, а затем композитной смолой для восстановления зуба.
Постимплантационная клиническая оценка ЭМП
- Клинический контроль (оценка лица, оценка десен, апикальная пальпация, горизонтальная и вертикальная перкуссия, тесты на чувствительность к холоду и теплу) будет проводиться в дни 0, 7, 30, 90, 180 и 364. Кроме того, через два года после имплантации EMC будет проведена клиническая оценка.
- Радиологический контроль будет проводиться в дни 0, 7, 30, 90, 180 и 364. Кроме того, они будут проводиться через два года после имплантации мезенхимальных стромальных клеток.
- Томографическая оценка будет выполнена, когда периапикальное восстановление станет очевидным на периапикальной рентгенограмме.
Тип исследования
Регистрация (Действительный)
Фаза
- Фаза 2
- Фаза 3
Контакты и местонахождение
Места учебы
-
-
Miranda
-
San Antonio de los Altos, Miranda, Венесуэла, 1020-A
- Unidad de Terapia Celular del Instituto de Investigaciones Científicas
-
-
Критерии участия
Критерии приемлемости
Возраст, подходящий для обучения
Принимает здоровых добровольцев
Полы, имеющие право на обучение
Описание
Критерии включения:
- Диагностика некроза пульпы и апикального периодонтита зубов с несформированными верхушками.
- Информированное согласие представителя пациента и согласие пациента на лечение методом аллогенной трансплантации мезенхимальных стромальных клеток костного мозга.
Критерий исключения:
- ВИЧ положительный
- Гепатит В или С положительный
- Аутоиммунные заболевания: волчанка, ревматоидный артрит.
- Опухолевые заболевания.
- Основные нарушения обмена веществ
- Беременность
- Находится на лечении стероидами
- Другие критерии, которые исследователи считают неуместными для включения пациента
Учебный план
Как устроено исследование?
Детали дизайна
- Основная цель: УХОД
- Распределение: Нет данных
- Интервенционная модель: SINGLE_GROUP
- Маскировка: НИКТО
Оружие и интервенции
Группа участников / Армия |
Вмешательство/лечение |
|---|---|
|
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ: Аллогенная трансплантация КМ-МСК
В стерильных условиях пациенту проводят местную анестезию в области пораженного зуба; корневой канал пораженного зуба будет обнажен и подготовлен для установки имплантата MSC / MSC-Endo / PRP.
Одновременно из каждой пробирки удаляют супернатант культуральной среды и ресуспендируют «кнопку (осадок)» MSC/MSC-Endo в аутологичной богатой тромбоцитами плазме (PRP).
Впоследствии к суспензии MSC/MSC-Endo/PRP будут добавлены 5% CaCl2 и тромбин.
Немедленно и до образования сгустка в корневой канал, покрытый коллагеновой мембраной, будет помещено 20 мкл суспензии MSC/MSC-Endo/PRP.
В последующем будет проведена процедура обтурации биокерамикой на уровне пульповой камеры, иономерным стеклом для защиты биокерамики, а затем композитной смолой для восстановления зуба.
|
Имплантат BM-MSC/MSC-Endo/PRP в чистый и сформированный корневой канал у пациентов с несформированными верхушками и некрозами пульпы и апикальным периодонтитом
|
Что измеряет исследование?
Первичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Признаки и отсутствие симптомов
Временное ограничение: 15 дней после имплантации
|
При клиническом осмотре оцените отсутствие свищей, интраорального или экстраорального воспаления, отсутствие болезненности при перкуссии или пальпации.
|
15 дней после имплантации
|
|
Сужение корневого канала
Временное ограничение: От 6 до 12 месяцев
|
С помощью периодических рентгенограмм измеряйте просвет корневого канала месяц за месяцем, чтобы оценить любое уменьшение просвета.
|
От 6 до 12 месяцев
|
|
Удлинение корня
Временное ограничение: От 6 до 12 месяцев
|
С помощью периодических рентгенограмм измеряйте длину зубов от режущего края до апекса месяц за месяцем, чтобы оценить любое увеличение длины корня.
|
От 6 до 12 месяцев
|
|
Восприятие тестирует чувствительность
Временное ограничение: От 6 до 12 месяцев
|
С помощью пульпометра и Endo Ice оцените, начинает ли пациент ощущать какую-либо стимуляцию.
|
От 6 до 12 месяцев
|
|
Репарация костного поражения, вызванного апикальным периодонтитом
Временное ограничение: От 12 до 24 месяцев
|
На периодической рентгенограмме месяц за месяцем оценивают увеличение рентгеноконтрастности в рентгенопрозрачной области, вызванное апикальным периодонтитом.
Когда очевидное восстановление будет подтверждено, будет проведено томографическое исследование, чтобы оценить его в 3D.
|
От 12 до 24 месяцев
|
Вторичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Стабильность биокерамических цементов, используемых при обтурации полости доступа
Временное ограничение: От 6 до 12 месяцев
|
На периапикальных рентгенограммах оценивают сохранение биокерамического цемента в контакте с имплантатом.
|
От 6 до 12 месяцев
|
|
Оценить кровообращение в корневом канале
Временное ограничение: От 6 до 24 месяцев
|
С помощью пульсоксиметра оценивают повышение активности
|
От 6 до 24 месяцев
|
Соавторы и исследователи
Публикации и полезные ссылки
Общие публикации
- Xuan K, Li B, Guo H, Sun W, Kou X, He X, Zhang Y, Sun J, Liu A, Liao L, Liu S, Liu W, Hu C, Shi S, Jin Y. Deciduous autologous tooth stem cells regenerate dental pulp after implantation into injured teeth. Sci Transl Med. 2018 Aug 22;10(455):eaaf3227. doi: 10.1126/scitranslmed.aaf3227.
- Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, Moorman MA, Simonetti DW, Craig S, Marshak DR. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999 Apr 2;284(5411):143-7. doi: 10.1126/science.284.5411.143.
- Antunes LS, Salles AG, Gomes CC, Andrade TB, Delmindo MP, Antunes LA. The effectiveness of pulp revascularization in root formation of necrotic immature permanent teeth: A systematic review. Acta Odontol Scand. 2016;74(3):161-9. doi: 10.3109/00016357.2015.1069394. Epub 2015 Jul 15.
- Caplan AI, Dennis JE. Mesenchymal stem cells as trophic mediators. J Cell Biochem. 2006 Aug 1;98(5):1076-84. doi: 10.1002/jcb.20886.
- Diaz-Solano D, Wittig O, Mota JD, Cardier JE. Isolation and Characterization of Multipotential Mesenchymal Stromal Cells from Congenital Pseudoarthrosis of the Tibia: Case Report. Anat Rec (Hoboken). 2015 Oct;298(10):1804-14. doi: 10.1002/ar.23198. Epub 2015 Jul 30.
- Eramo S, Natali A, Pinna R, Milia E. Dental pulp regeneration via cell homing. Int Endod J. 2018 Apr;51(4):405-419. doi: 10.1111/iej.12868. Epub 2017 Nov 7.
- Fouad AF. Microbiological aspects of traumatic injuries. Dent Traumatol. 2019 Dec;35(6):324-332. doi: 10.1111/edt.12494. Epub 2019 Oct 14.
- Guerrero F, Mendoza A, Ribas D, Aspiazu K. Apexification: A systematic review. J Conserv Dent. 2018 Sep-Oct;21(5):462-465. doi: 10.4103/JCD.JCD_96_18.
- Hawryluk GW, Mothe A, Wang J, Wang S, Tator C, Fehlings MG. An in vivo characterization of trophic factor production following neural precursor cell or bone marrow stromal cell transplantation for spinal cord injury. Stem Cells Dev. 2012 Aug 10;21(12):2222-38. doi: 10.1089/scd.2011.0596. Epub 2012 Feb 7.
- Huang GT. Dental pulp and dentin tissue engineering and regeneration: advancement and challenge. Front Biosci (Elite Ed). 2011 Jan 1;3(2):788-800. doi: 10.2741/e286.
- Iohara K, Nakashima M, Ito M, Ishikawa M, Nakasima A, Akamine A. Dentin regeneration by dental pulp stem cell therapy with recombinant human bone morphogenetic protein 2. J Dent Res. 2004 Aug;83(8):590-5. doi: 10.1177/154405910408300802.
- Moradi S, Talati A, Forghani M, Jafarian AH, Naseri M, Shojaeian S. Immunohistological Evaluation of Revascularized Immature Permanent Necrotic Teeth Treated by Platelet-Rich Plasma: An Animal Investigation. Cell J. 2016 Fall;18(3):389-96. doi: 10.22074/cellj.2016.4567. Epub 2016 Aug 24.
- Murakami M, Hayashi Y, Iohara K, Osako Y, Hirose Y, Nakashima M. Trophic Effects and Regenerative Potential of Mobilized Mesenchymal Stem Cells From Bone Marrow and Adipose Tissue as Alternative Cell Sources for Pulp/Dentin Regeneration. Cell Transplant. 2015;24(9):1753-65. doi: 10.3727/096368914X683502. Epub 2014 Jul 30.
- Nakashima M, Iohara K. Regeneration of dental pulp by stem cells. Adv Dent Res. 2011 Jul;23(3):313-9. doi: 10.1177/0022034511405323.
- Shammaa R, El-Kadiry AE, Abusarah J, Rafei M. Mesenchymal Stem Cells Beyond Regenerative Medicine. Front Cell Dev Biol. 2020 Feb 18;8:72. doi: 10.3389/fcell.2020.00072. eCollection 2020.
- Wang X, Thibodeau B, Trope M, Lin LM, Huang GT. Histologic characterization of regenerated tissues in canal space after the revitalization/revascularization procedure of immature dog teeth with apical periodontitis. J Endod. 2010 Jan;36(1):56-63. doi: 10.1016/j.joen.2009.09.039.
- Wittig O, Diaz-Solano D, Cardier J. Viability and functionality of mesenchymal stromal cells loaded on collagen microspheres and incorporated into plasma clots for orthopaedic application: Effect of storage conditions. Injury. 2018 Jun;49(6):1052-1057. doi: 10.1016/j.injury.2018.04.005. Epub 2018 Apr 5.
- Wittig O, Romano E, Gonzalez C, Diaz-Solano D, Marquez ME, Tovar P, Aoun R, Cardier JE. A method of treatment for nonunion after fractures using mesenchymal stromal cells loaded on collagen microspheres and incorporated into platelet-rich plasma clots. Int Orthop. 2016 May;40(5):1033-8. doi: 10.1007/s00264-016-3130-6. Epub 2016 Mar 16.
Даты записи исследования
Изучение основных дат
Начало исследования (ДЕЙСТВИТЕЛЬНЫЙ)
Первичное завершение (ДЕЙСТВИТЕЛЬНЫЙ)
Завершение исследования (ДЕЙСТВИТЕЛЬНЫЙ)
Даты регистрации исследования
Первый отправленный
Впервые представлено, что соответствует критериям контроля качества
Первый опубликованный (ДЕЙСТВИТЕЛЬНЫЙ)
Обновления учебных записей
Последнее опубликованное обновление (ДЕЙСТВИТЕЛЬНЫЙ)
Последнее отправленное обновление, отвечающее критериям контроля качества
Последняя проверка
Дополнительная информация
Термины, связанные с этим исследованием
Ключевые слова
Дополнительные соответствующие термины MeSH
Другие идентификационные номера исследования
- MSCYPPNAP001
Планирование данных отдельных участников (IPD)
Планируете делиться данными об отдельных участниках (IPD)?
Описание плана IPD
Информация о лекарствах и устройствах, исследовательские документы
Изучает лекарственный продукт, регулируемый FDA США.
Изучает продукт устройства, регулируемый Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США.
Эта информация была получена непосредственно с веб-сайта clinicaltrials.gov без каких-либо изменений. Если у вас есть запросы на изменение, удаление или обновление сведений об исследовании, обращайтесь по адресу register@clinicaltrials.gov. Как только изменение будет реализовано на clinicaltrials.gov, оно будет автоматически обновлено и на нашем веб-сайте. .