- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT04545307
Transplante de CTM alogênicas em pacientes com necrose pulpar e periodontite apical crônica (MSC)
Transplante de Células Estromais Mesenquimais Alogênicas em Pacientes com Dentes com Ápice Imaturo com Necrose Pulpar e Periodontite Apical Crônica
O objetivo do estudo é avaliar o efeito da implantação de Células Estromais Mesenquimais (MSC) na regeneração pulpar e periapical de dentes imaturos com necrose pulpar e periodontite apical crônica.
FUNDO:
- A necrose pulpar pós-traumática impede o desenvolvimento radicular em crianças e adolescentes.
- A capacidade multipotente das MSC de se diferenciar em células formadoras de osso (osteoblastos) e células formadoras de dentina (odontoblastos) permitiu o desenvolvimento de protocolos para induzir a regeneração da polpa dentária em modelos pré-clínicos e pacientes com dentes imaturos com necrose pulpar.
IMPACTO:
- Mundialmente, a necrose pulpar pós-traumática em crianças e adolescentes constitui um problema de saúde na área endodôntica.
- O tratamento com MSC forneceria uma alternativa terapêutica eficaz para pacientes com necrose pulpar e formação incompleta da raiz.
- A possível regeneração pulpar e periapical de dentes imaturos induzida por MSC teria um grande impacto no tratamento desses pacientes.
Elegibilidade para o estudo de implante EMC Idade: 6 a 16 anos Sexo: Masculino ou Feminino Voluntários saudáveis aceitos: NÃO.
GRUPOS DE TRATAMENTO:
No presente estudo, a implantação de MSC será realizada em pacientes com dentes imaturos com necrose pulpar com periodontite apical, que receberão o tratamento endodôntico adequado (de acordo com as diretrizes da Associação Americana de Endodontia) e implantação de BM-MSC alogênico . Este grupo será comparado com a história feita na Pós-Graduação em Endodontia da Universidad Central de Venezuela (UCV) e com séries de casos internacionais feitas por revascularização.
Acompanhamento clínico de cada paciente:
- Os controles clínicos (avaliação facial, avaliação gengival, palpação apical, percussão horizontal e vertical, testes de sensibilidade ao frio e ao calor) serão realizados nos dias 0, 7, 30, 90, 180 e 364. Além disso, uma avaliação clínica será realizada nos dois anos pós-implante de MSC.
- Os controles radiológicos serão realizados nos dias 0, 7, 30, 90, 180 e 364. Além disso, serão realizados dois anos após a implantação do MSC.
- Uma avaliação tomográfica será realizada quando houver reparo periapical evidente em uma radiografia periapical. Para medir a formação da raiz, o estreitamento do canal radicular e a verificação do reparo periapical em 3D.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Descrição detalhada
O procedimento endodôntico nos pacientes incluídos neste estudo será focado em casos de necrose pulpar com periodontite apical sem evidências de processos infecciosos.
MATERIAIS E MÉTODOS. Reagentes Anticorpos monoclonais murinos, direcionados contra antígenos de diferenciação humana (CD34, CD45, CD14, CD90, CD73, CD29, CD49b, CD166), conjugados com isotiocianato de fluoresceína (CFI) ou ficoeritrina (PE) foram adquiridos da BD Biosciences (EUA).
Isolamento e cultura de células estromais mesenquimais (MSC) obtidas de medula óssea humana. No presente estudo, serão utilizados EMFs isolados da medula óssea (MO) de pacientes com diagnóstico de pseudartrose pós-traumática (falha de união óssea nos locais de fratura). Essas células foram transplantadas para o local da pseudoartrose para induzir a regeneração óssea nesses pacientes. O protocolo de regeneração óssea por transplante de EMF foi realizado no Hospital Universitário de Caracas, Hospital Universitario de Los Andes, Hospital Pérez de León II e tem a aprovação dos Comitês de Bioética de cada instituição e de cada paciente mediante consentimento informado. Nesse protocolo, a MO de cada paciente foi isolada por punção na crista ilíaca. Este procedimento foi realizado em centro cirúrgico, sob anestesia e por médico especialista. O aspirado de MO foi colocado em meio alfa-MEM (Invitrogen, EUA) com heparina (Sanofi Aventis). As células mononucleares foram separadas por centrifugação em gradiente Ficoll-Hypaque (GE Healthcare, Suécia) e cultivadas em meio alfa-MEM-Chang (Irvine Scientific, EUA) enriquecido com 20% de soro autólogo. Essas células foram mantidas em cultivo em ambiente controlado a 37ºC e 5% de CO2. Após 72 horas, as células não aderentes foram eliminadas e adicionado um meio de cultura basal (alfa-MEM-Chang / 20% soro autólogo). Sua aderência ao plástico isolou as MSCs. As trocas do meio de cultura foram feitas até atingir uma confluência próxima a 70-80%. As MSCs foram expandidas descascando as culturas, seguindo o processo descrito acima. Os exames microbiológicos foram realizados após a obtenção da MO e antes da realização do implante das MSC. Após o uso de MSC, um lote dessas células foi criopreservado a -70 -C.
Caracterização fenotípica de MSC. Estudos de caracterização fenotípica de MSC foram realizados por citometria de fluxo. Para o qual as células aderentes a MO foram separadas do frasco de cultura usando enzimas do tipo tripsina. Posteriormente, as células foram incubadas com anticorpos específicos para marcadores MSC (CD90, CD73, CD105, CD29, CD166 e CD49b) e hematopoiéticos (CD34, CD45 e CD14). A análise citométrica dos marcadores de expressão mostrou que 100% das células utilizadas para transplante em cada paciente eram MSC.
Estudos de diferenciação MSC. A capacidade de diferenciação multipotencial das MSCs foi examinada por cultivo dessas células em meios de diferenciação osteogênico, condrogênico e adipogênico, seguindo uma metodologia semelhante à descrita anteriormente. Resumidamente, as MSCs foram destacadas e semeadas em placas de cultura de 24 poços com uma densidade celular de 5x104 por poço, procedendo-se à adição do meio de diferenciação correspondente. Para diferenciação osteogênica, as MSCs foram cultivadas na presença de meio basal enriquecido com dexametasona (100nM, Biotech), ácido ascórbico (10mM, Sigma), fosfato inorgânico (1,8mM, Merck) e beta-glicerol fosfato (2mM, Sigma). Para diferenciação condrogênica, as células foram cultivadas em meio comercial para condrócitos (Cell Application, EUA) e para diferenciação para a linhagem adipogênica foi utilizado o meio comercial NH Adipodiff Human (Miltenyi, EUA). Em todos os casos, as células foram mantidas em cultura por 21-28 dias com trocas de meio a cada 4-5 dias. Para demonstrar as alterações associadas ao processo de diferenciação, as células foram fixadas com paraformaldeído (Merck, EUA) e foram realizadas colorações específicas para cada caso. Resumidamente, vermelho de alizarina para detectar deposição de cálcio (evidência de osteogênese), azul Alcian para detectar proteoglicanos (evidência de condrogênese) e vermelho de óleo (Oil Red) para ver lipídios (evidência de adipogênese). Em todos os casos, foi realizada observação microscópica e registro fotográfico. Para diferenciação endotelial (CEn), os EMFs foram cultivados em meio MCDB 131 (Invitrogen, EUA) enriquecido com 10% de soro autólogo, 10µg/ml de fator de crescimento epidérmico humano (hu-EGF, R&D) e hidrocortisona (1µg/ml, Sigma) .
Implante de MSC em pacientes com necrose pulpar e periodontite apical. Todos os procedimentos de processamento de MSC serão realizados na sala limpa da Unidade de Terapia Celular IVIC seguindo os padrões de boas práticas de fabricação (GMP). As BM-MSC alogênicas de pacientes diagnosticados com pseudartrose pós-traumática e tratadas com implantação dessas células serão utilizadas para induzir a regeneração óssea. As MSC a serem utilizadas neste protocolo foram previamente caracterizadas fenotipicamente e funcionalmente. O MSC será descongelado, crescido e expandido conforme descrito anteriormente. Uma parte das células será mantida em meio para MSCs, e outra parte será cultivada em meio de diferenciação endotelial (CEM-Endo). Uma vez atingido o número necessário de MSCs e MSCs-Endo, uma suspensão dessas células (75.000 células de cada uma delas) será colocada em tubos de cultura estéreis contendo meio de cultura DMEM-F12, sem vermelho de fenol, suplementado com 20% de solução autóloga sérum. Cada tubo contendo MSC / MSC-Endo será transportado em uma pequena adega de transporte de amostras biológicas, em temperatura ambiente, para o Serviço de Odontologia do Instituto Venezolano de Investigaciones Científicas (IVIC).
Sob condições estéreis, o paciente será anestesiado localmente na área do dente afetada; o canal radicular do dente afetado será exposto e preparado para a realização do implante MSC/MSC-Endo/PRP. Ao mesmo tempo, o sobrenadante do meio de cultura é removido de cada tubo e o "botão (pellet)" CEM/CEM-Endo é ressuspenso em plasma rico em plaquetas (PRP) autólogo. Posteriormente à suspensão de MSC/Endo/PRP, serão adicionados 5% de CaCl2 e trombina. Imediatamente, e antes da formação do coágulo, 20 microlitros da suspensão CEM/CEM-Endo/PRP serão colocados no canal radicular, cobertos com uma membrana de colágeno. Posteriormente, será realizado o procedimento de obturação com biocerâmica ao nível da câmara pulpar, vidro ionomérico para proteger a biocerâmica e posteriormente resina composta para restaurar o dente.
Avaliação clínica pós-implantação de EMF
- Os controles clínicos (avaliação facial, avaliação gengival, palpação apical, percussão horizontal e vertical, testes de sensibilidade ao frio e ao calor) serão realizados nos dias 0, 7, 30, 90, 180 e 364. Adicionalmente, uma avaliação clínica será realizada dois anos após a implantação do EMC.
- Os controles radiológicos serão realizados nos dias 0, 7, 30, 90, 180 e 364. Adicionalmente, serão realizados dois anos após a implantação de células estromais mesenquimais.
- Uma avaliação tomográfica será realizada quando o reparo periapical for evidente em uma radiografia periapical.
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Fase 2
- Fase 3
Contactos e Locais
Locais de estudo
-
-
Miranda
-
San Antonio de los Altos, Miranda, Venezuela, 1020-A
- Unidad de Terapia Celular del Instituto de Investigaciones Científicas
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-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- Diagnóstico de necrose pulpar e periodontite apical em dentes com ápices imaturos.
- Consentimento informado pelo representante do paciente e consentimento do paciente para receber tratamento de transplante alogênico de células estromais mesenquimais de medula óssea.
Critério de exclusão:
- HIV positivo
- Hepatite B ou C positivo
- Doenças autoimunes: lúpus, artrite reumatoide.
- Doenças Neoplásicas.
- Principais distúrbios metabólicos
- Gravidez
- Estar em tratamento com esteroides
- Outros critérios que os pesquisadores consideram inadequados para a inclusão do paciente
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: TRATAMENTO
- Alocação: N / D
- Modelo Intervencional: SINGLE_GROUP
- Mascaramento: NENHUM
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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EXPERIMENTAL: Transplante alogênico de BM-MSCs
Sob condições estéreis, o paciente será anestesiado localmente na área do dente afetada; o canal radicular do dente afetado será exposto e preparado para a realização do implante MSC/MSC-Endo/PRP.
Ao mesmo tempo, o sobrenadante do meio de cultura é removido de cada tubo e o MSC/MSC-Endo "botão (pellet)" é ressuspenso em plasma rico em plaquetas (PRP) autólogo.
Posteriormente à suspensão de MSC/MSC-Endo/PRP, serão adicionados 5% de CaCl2 e trombina.
Imediatamente, e antes da formação do coágulo, 20 microlitros da suspensão MSC/MSC-Endo/PRP serão colocados no canal radicular, cobertos com uma membrana de colágeno.
Posteriormente, será realizado o procedimento de obturação com biocerâmica ao nível da câmara pulpar, vidro ionomérico para proteger a biocerâmica e posteriormente resina composta para restaurar o dente.
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O implante de BM-MSC/MSC-Endo/PRP em um canal radicular limpo e modelado de pacientes com ápices imaturos e necrose pulpar e periodontite apical
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Sinais e Sintomas Ausência
Prazo: 15 dias pós implante
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Através da inspeção clínica avaliar ausência de fístula, inflamação intra ou extra oral, sem dor à percussão ou palpação
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15 dias pós implante
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Estreitamento do canal radicular
Prazo: 6 a 12 meses
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Através de radiografias periódicas medem o lúmen do canal radicular meses após meses para avaliar qualquer redução do lúmen
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6 a 12 meses
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Alongamento da raiz
Prazo: 6 a 12 meses
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Através de radiografias periódicas medir o comprimento dos dentes desde a borda incisal até o ápice mês após mês para avaliar qualquer aumento do comprimento da raiz
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6 a 12 meses
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Sensibilidade testa percepção
Prazo: 6 a 12 meses
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Com auxílio do pulpômetro e Endo Ice avalie se o paciente começa a sentir algum estímulo
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6 a 12 meses
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Reparação da lesão óssea produzida pela periodontite apical
Prazo: 12 a 24 meses
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Através de uma radiografia periódica avaliar mês a mês o aumento da radiopacidade na área radiolúcida produzida pela periodontite apical.
Quando um reparo evidente for confirmado, um estudo de tomografia será realizado para avaliá-lo em 3D
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12 a 24 meses
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Estabilidade de cimentos biocerâmicos utilizados na obturação da cavidade de acesso
Prazo: 6 a 12 meses
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Através de radiografias periapicais avaliar a manutenção do cimento biocerâmico em contato com o implante
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6 a 12 meses
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Avalie a circulação sanguínea dentro do canal radicular
Prazo: 6 a 24 meses
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Por meio de oxímetro de pulso avalie o aumento da atividade
|
6 a 24 meses
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
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- Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, Moorman MA, Simonetti DW, Craig S, Marshak DR. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999 Apr 2;284(5411):143-7. doi: 10.1126/science.284.5411.143.
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- Wittig O, Diaz-Solano D, Cardier J. Viability and functionality of mesenchymal stromal cells loaded on collagen microspheres and incorporated into plasma clots for orthopaedic application: Effect of storage conditions. Injury. 2018 Jun;49(6):1052-1057. doi: 10.1016/j.injury.2018.04.005. Epub 2018 Apr 5.
- Wittig O, Romano E, Gonzalez C, Diaz-Solano D, Marquez ME, Tovar P, Aoun R, Cardier JE. A method of treatment for nonunion after fractures using mesenchymal stromal cells loaded on collagen microspheres and incorporated into platelet-rich plasma clots. Int Orthop. 2016 May;40(5):1033-8. doi: 10.1007/s00264-016-3130-6. Epub 2016 Mar 16.
Datas de registro do estudo
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- MSCYPPNAP001
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Ensaios clínicos em Periodontite Apical
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