АОА при рецидивирующей неудаче оплодотворения (AOA)

Это рандомизированное контролируемое исследование включало 150 пациенток с повторной неудачей оплодотворения в анамнезе. Пациенты прошли испытания ИКСИ в отделении ВРТ Университета Аль-Азхар, Каир, Египет, с июля 2017 года по ноябрь 2018 года. Исследование было одобрено комитетом по медицинской этике университета (регистрационный номер 202010454), и все пары подписали письменное согласие до начала исследования и циклов лечения. Пары-кандидаты в AOA были проконсультированы относительно процедуры. Пациентов отбирали по следующим критериям:

Критерии включения: -

1. Возраст от 20 до 40 лет.
2. Случаи полной неудачи оплодотворения в предыдущих циклах ИКСИ в анамнезе
3. Ооциты с нормальной морфологией.
4. Мужской фактор бесплодия. Критерии исключения: - Аномальная морфология ооцитов, дегенеративные или незрелые ооциты.

Случайным образом были определены две группы:

Первая группа: ооциты были обработаны ионофором кальция. В этой группе было проведено 75 циклов ИКСИ.

Вторая группа: ооциты не обрабатывались ионофором кальция. В этой группе было проведено 75 циклов ИКСИ.

Методы:

1. Стимуляция яичников:

   Все женщины получали препараты, стимулирующие яичники, в соответствии с протоколами ВРТ (протоколы длительных агонистов, обострений или антагонистов). Дека 0,1 вводили подкожно. ежедневно, для снижения регуляции в коротком и длинном протоколе, в то время как 0,25 цетротида вводили подкожно. ежедневно для подавления в протоколе антагониста. Развитие фолликулов контролировали с помощью ультразвукового сканирования и определения эстрадиола в сыворотке. Пациенты получали 10 000 МЕ хронического гонадотропина человека (ХГЧ), когда диаметр большинства фолликулов превышал 17-20 мм.

2. Подготовка спермы:

   • Мужа попросили сдать образец спермы в стерильном пластиковом контейнере после 2-3-дневного периода воздержания и примерно за 2 часа до процедуры ИКСИ. Контейнер для образцов должен быть чистым, стерильным и с широким горлышком, чтобы свести к минимуму ошибки сбора.

3. Получение ооцитов:

   • Под общей анестезией ооциты аспирировали специальной иглой под ультразвуковым контролем (аспирационный катетер Labotect, Германия) через 34-36 ч после инъекции ХГЧ. Нагретую буферную среду HEPES (Irvine Scientific, Ирвин, Калифорния, США) использовали для обработки и промывания ооцитов.
   • После ИКСИ все инъецированные ооциты промывали средой Global total Fertilization Medium (Global pharm, Life Global, Брюссель, Бельгия, Европа) и пациенток случайным образом распределяли на две равные группы (по 75 пациенток в каждой) с помощью компьютерной программы рандомизации. Первая группа, в которой инъецированные ооциты переносили в среду, содержащую 10 мкмоль ионофора кальция (GM508 Cult-Active, Gynemed, Германия), и инкубировали в течение 10 минут, затем ооциты снова промывали средой Global total Fertilization Medium (Global pharm , Life Global, Брюссель, Бельгия, Европа) и инкубировали при 37°C в 6% CO2. Во второй группе инъецированные ооциты не подвергались активации ионофором кальция.
   • Через 18 часов после инъекции целые инъецированные ооциты в обеих группах оценивали на предмет оплодотворения, дробления и качества в день переноса эмбрионов (ET).

Перенос эмбрионов

• После ЭТ проводилась поддержка лютеиновой фазы (внутримышечные инъекции прогестерона по 100 мг ежедневно) в течение 14 дней до теста на беременность.

После сбора данных обе группы сравнивали по количеству ооцитов, частоте оплодотворения ооцитов, количеству и качеству эмбрионов, частоте имплантации и частоте наступления клинической беременности.