Влияние различных центрифугированных концентратов тромбоцитов на ремоделирование кости вокруг зубных имплантатов

Данное исследование проводилось в пародонтологических клиниках. Протокол исследования был одобрен Комитетом по этике человека Университета Хатая Мустафы Кемаля до начала исследования (номер утверждения:). Пациентам, которые соответствовали критериям включения и изъявили желание участвовать в исследовании, перед процедурой была предоставлена ​​подробная информация об исследовании и предоставлено информированное согласие.

Выбор пациента:

Критерии включения лиц, которые были признаны здоровыми по их истории болезни и которые прошли клиническое обследование и рентгенологическую визуализацию, были следующими:

• старше 18 лет
• Симметричные участки без зубов на нижней челюсти
• Достаточная ширина и высота кости, обеспечивающие идеальную установку зубного имплантата
• Лица, которые не курят
• Ширина кератинизированной десны не менее 2 мм и толщина мягких тканей в области имплантата не менее 3 мм.

Лица, отвечающие любому из перечисленных ниже критериев, были исключены из исследования:

• Пациенты с системными заболеваниями, включая сахарный диабет, метаболические заболевания костей, ревматоидный артрит, кожно-слизистые заболевания, иммунологические нарушения, гепатит или ВИЧ.
• Лица, которые принимали антибиотики, противовоспалительные средства, кортикостероиды, иммунодепрессанты, антикоагулянты или гормональные контрацептивы по любой причине, по крайней мере, за 6 месяцев до процедуры, а также те, кто принимал бисфосфонаты в то время или ранее.
• Лица с любой патологией или дефектами в месте имплантации.
• Аугментация истории в месте имплантации.
• Лица с тяжелыми заболеваниями пародонта и плохой гигиеной полости рта.
• Тяжелый кариес или эндодонтические поражения зубов, прилегающих к имплантату.
• Те, кто использует внутриротовые ортодонтические или протезные приспособления, затрудняющие контроль зубного налета.
• Беременные и кормящие особи. Рандомизация и ослепление Обе исследуемые группы и область хирургического вмешательства определялись путем взятия закрытого конверта непосредственно перед операцией. Клинические и рентгенологические записи исследования были получены опытным пародонтологом, который не знал о выделении

Хирургическая процедура

Инфильтративную анестезию проводили раствором анестетика, содержащим эпинефрин 1:100000. С помощью скальпеля 15с был сделан разрез посередине альвеолярного гребня, и был поднят лоскут на всю толщину. Процедура сверления была выполнена (600 об/мин и 25 Нсм) в соответствии с диаметром имплантата и необходимостью отсутствия зубов на нижней челюсти. Для всех имплантатов использовалось сверло с потайной головкой, чтобы свести к минимуму нагрузку на альвеолярную кость. В случае наличия рядом с ложем имплантата естественного зуба оставлялось расстояние не менее 1,5 мм между зубом и полостью имплантата, а также наличие костных пластин толщиной не менее 1 мм со щечной и язычной сторон имплантат. Аутологичный CGF или A-PRF, полученный из центрифугированной крови, помещали в бокс PRF. Таким образом, жидкость, богатая фактором роста и тромбоцитами, вытекающими из фибриновой сети, могла течь в коробку. Жидкость собирали шприцем и наносили на поверхность имплантата до тех пор, пока не оставалось сухого участка. Кроме того, этой жидкостью было заполнено место имплантата, и была обеспечена субкрестальная установка имплантата на 0,5 мм при 40 об/мин и крутящем моменте 25 Н·см. Мембрану, полученную из CGF или A-PRF, поместили поверх имплантата в количестве, достаточном, чтобы покрыть костный гребень, и наложили заживляющий колпачок. Установка имплантата без CGF или A-PRF выполнялась на противоположной стороне челюсти в контрольной группе. Стабильность имплантата определяли с помощью частотно-резонансного анализа. Операционное поле было зашито шелком 5/0. Всем пациентам было рекомендовано не принимать какие-либо лекарства, если в этом нет необходимости. Швы сняты на 10-е сутки после операции. Все операции проводились врачом с пятилетним стажем. Процедура подготовки CGF и A-PRF Перед началом операции по имплантации у пациента было взято 9 мл крови из локтевой вены предплечья, перенесено в пробирку без антикоагулянта и центрифугировано. . CGF получали с помощью автоматически регулируемого центрифужного устройства, работающего на переменных и регулируемых скоростях (2 мин при 2700 об/мин, 4 мин при 2400 об/мин, 4 мин при 2700 об/мин и 3 мин при 3000 об/мин) (MEDIFUGE, Silfradentsrl, S. Sofia , Италия). В группе A-PRF кровь центрифугировали при 1400 об/мин в течение 14 мин (процесс Duo Centrifuge for PRF, Франция). В результате центрифугирования в пробирке образовались три слоя: слой эритроцитов внизу, слой бедной тромбоцитами сыворотки вверху и слой фибринового геля, содержащий факторы роста и тромбоциты, в середине. Сыворотку в верхнем слое удаляли стерильным шприцем, а слой фибрина удаляли из пробирки с помощью зажима. Красные кровяные тельца в нижнем слое удаляли из фибриновой структуры с помощью ножниц.

Клинические измерения и частотно-резонансный анализ Четыре участка каждого заживляющего колпачка, мезиальная, дистальная, щечная и язычная поверхности, были проанализированы на индекс налета (PI), десневой индекс (GI), глубину кармана (PD) и индекс кровоточивости десен (GBI). ). Все клинические измерения были повторены через 2, 4 и 12 недель после процедуры. Резонансно-частотный анализ проводили интраоперационно и после операции на четвертом и двенадцатом месяце.

Измерение маргинального уровня кости:

Для определения уровня маргинальной кости использовали калиброванные панорамные рентгенограммы, полученные в день операции и через 3 месяца после нее. Платформа имплантата-фиксатора рассматривалась как порог для измерения изменений уровня маргинальной кости. При снижении маргинальной кости вокруг дентального имплантата ниже площадки на рентгенограмме проводили две горизонтальные линии: первая плоскость располагалась на площадке фиксатора имплантата, а вторая - на альвеолярном гребне или на дне кости. дефект. Среднее значение потери маргинальной кости получали путем измерения расстояния между двумя точками, оставленными линиями, проведенными от мезиальной и дистальной поверхностей цилиндрической части имплантата по горизонтальным линиям. Все рентгенологические измерения проводились двумя экспертами, имеющими опыт работы в своих областях.

Сбор периимплантатной щелевой жидкости (PICF):

Сначала место имплантации изолировали от слюны и сушили воздухом. Полоску абсорбирующей фильтровальной бумаги помещали на 1 мм в карман на мезиальной и дистальной поверхностях формирователя десны и оставляли там на 30 с, чтобы обеспечить абсорбцию достаточного количества периимплантатной десневой жидкости. Объем жидкости измеряли с помощью калиброванного электронного устройства (Periotron 8010, Oraflow, Amityville, NY, USA). Бумажные полоски, загрязненные кровью или налетом, из исследования исключались. Бумажные полоски переносили в пустую пробирку Эппендорфа, покрытую парафиновым воском, и хранили при 80°С до проведения анализа.

Биохимический анализ:

Первоначально был приготовлен свежий фосфатно-солевой буфер (PBS) (pH: 7,00, 137 мМ NaCl, 10 мМ Na2HPO4 и 2,7 мМ KCl). В каждую пробирку Эппендорфа с двумя бумажными полосками внутри добавляли PBS по 300 мкл, оставляли при комнатной температуре на 30 мин, а затем центрифугировали при 12000×g при 4°C в течение 15 мин. После центрифугирования полоски из пробирки Эппендорфа удаляли, а полученный супернатант использовали для ИФА. Уровни фактора некроза опухоли альфа (TNF-α) (Boster), sRANKL (растворимый рецептор-активатор ядерного фактора-Kb-лиганда) (Elabscience) и остеопротегерина (OPG) (Boster) измеряли с помощью ELISA при длине волны 450 нм с использованием коммерческих наборов и термометров. Fisher Scientific Multiscan Go-Finland ELISA Reader. Все анализы проводились в соответствии с инструкциями производителя.

Статистический анализ:

Данные были проанализированы с достоверностью 95% с использованием программного обеспечения SPSS 21. Непрерывные переменные выражались как среднее, стандартное отклонение, медиана, минимум и максимум. Категориальные переменные выражаются как частоты и проценты. Нормальность распределения данных анализировали с помощью критерия Шапиро-Уилка, а для сравнения независимых групп применяли U-критерий Манна-Уитни и t-критерий Стьюдента. Критерий знакового ранга Уилкоксона и критерий Фридмана использовались для сравнения зависимых переменных. Сравнения двух точек измерения анализировали с помощью критерия Вилкоксона с поправкой Бонферрони (p < 0,016), если достоверное различие определялось с помощью критерия Фридмана. Значение p было определено как 0,05 для всех анализов.