Влияние применения I-PRF на уровни ALP и MMP-9 в зубах с апикальным периодонтитом

Исследование было проведено с участием 60 добровольных пациентов в возрасте 18–64 лет, классифицированных как ASA I, которые обратились в отделение эндодонтии стоматологического факультета Университета Кырыккале. У них был хронический апикальный периодонтит в верхней или нижней челюсти и диаметр периапикального поражения менее 1 см на резце или премоляре. Перед началом лечения корневых каналов были собраны образцы десневой жидкости (GCF) из включенных зубов. Зубной налет на поверхности зуба, с которого должны были быть собраны образцы GCF, был удален ватными тампонами, а затем изолирован ватным валиком. Зубы были высушены сжатым воздухом. Бумажные полоски были введены в карман с мезиобуккальной и дистобуккальной поверхностей зуба. Они продвигались до тех пор, пока не ощущалось давление у основания кармана. GCF собирали, удерживая бумажные полоски в борозде в течение 30 секунд. Объем GCF на бумажных полосках измеряли с помощью устройства Periotron 8000, и исследователь записывал объемы. Бумажные полоски, загрязненные кровью или слюной, были исключены из исследования. Бумажные полоски, включенные в исследование, помещали в пробирки Эппендорфа и хранили при -20°C, затем при -80°C до проведения экспериментов ELISA.

Стерильные бумажные штифты использовали для сбора образцов периапикального экссудата из зубов после завершения протоколов формирования и промывания. Корневые каналы высушивали до рабочей длины с помощью бумажного штифта №40. Бумажные штифты №20, отрегулированные на длину на 2 мм больше рабочей длины, перемещали на 2 мм от апикального упора и удерживали в течение 1 минуты. Процесс повторяли три раза. Стерильными хирургическими ножницами делали разрез длиной 4 мм на концах бумажных штифтов, пропитанных периапикальным экссудатом, и полученные сегменты переносили в пробирки Эппендорфа. После сбора периапикального образца в канал помещали пасту с гидроксидом кальция. Зуб временно герметизировали композитной смолой, чтобы предотвратить загрязнение между сеансами.

Описанные выше процедуры выполнялись одинаково в обеих группах. В группе i-PRF у пациентов из локтевой вены брали пять кубических сантиметров крови в пластиковую пробирку со стеклянным покрытием без антикоагулянта. I-PRF центрифугировали при 700 об/мин в течение 3 минут. После центрифугирования полученный в верхней части пробирки i-PRF собирали с помощью шприца. Измеренная во время лечения длина канала использовалась для нанесения i-PRF в точке, ближайшей к верхушке зуба. Для обеспечения стандартизации у всех пациентов 0,5 кубического сантиметра i-PRF вводили подслизисто в указанное место. На втором сеансе после изоляции и дезинфекции, как описано в первом сеансе, собирали образцы GCF, а после окончательной процедуры промывания собирали образцы PAE. Корневые каналы обтурировали методом латеральной конденсации с использованием гуттаперчевых конусов и силера для корневых каналов. Постоянные реставрации выполняли композитной смолой. Образцы анализировали с помощью ELISA. Анализ данных проводили с использованием SPSS 27.0, и был достигнут 95% уровень доверия. Для категориальных (качественных) переменных приводятся частота и процент (n (%)), а для числовых (количественных) переменных — среднее значение, стандартное отклонение, минимум, максимум и медиана. В исследовании для повторных измерений использовали t-критерий для зависимых выборок и критерий Уилкоксона. Для сравнения групп использовали t-критерий для независимых выборок и критерий Манна-Уитни. Для взаимосвязей между измерениями использовали корреляционный тест Спирмена.