Vergleich der Aquaporin -4-, -5-, -9- und IL -8 -Spiegel in GCF-, Dentinflüssigkeits- und Zellstoffproben

Insgesamt 70 gesunde (Gruppe 1) und symptomatische irreversible Pulpitis (Gruppe 2) Patienten im Alter von 18 bis 64 Jahren, die sich einer routinemäßigen Wurzelkanal-Behandlung an der Kırıkkale-Universität, der Fakultät für Zahnmedizin, Abteilung für Endodontik, unterziehen werden, werden in die Studie mit mindestens 35 Teilnehmern für jede Gruppe einbezogen. Vor Beginn der Behandlung werden GCF-Proben aus gesunden, symptomatischen, irreversiblen Pulpitis-diagnostizierten Zähnen und Zähnen entnommen, die zu diesen Zähnen kontralateral sind. Der Zahn, aus dem die GCF -Probe entnommen wird, wird mit Baumwollpellets isoliert. Nachdem die Supragingival -Plaque sorgfältig mit einer Kurette entfernt wurde, ohne das Zahnfleisch zu berühren, wird der Zahn 10 Sekunden lang mit leichter Luftdruck getrocknet, und Periopaper -Streifen werden in den Gingivalsulkus gelegt, bis der Widerstand zu spüren ist. Die Periopaper -Streifen werden nach 1 Minute aus dem Gingivalsulcus entfernt. Während der Einnahme der Proben sollte darauf geachtet werden, dass sie nicht mit Blut und Speichel verunreinigt werden. Kontaminierte Proben werden wiederholt. Die Menge an GCF wird mit dem Periotron -Gerät gemessen und aufgezeichnet. Die Mikrolitikernäquivalente der auf dem Periotron -Gerät gemessenen Werte werden aufgezeichnet. Periopaper -Streifen werden in 1,5 cmpl; sterile Eppendorf -Röhrchen platziert. Gingivalindex- und Taschen -Tiefenmessungen werden durchgeführt, nachdem GCF -Proben angenommen wurden, um die Reizung von Parodontalgeweben und Blutverschmutzung zu verhindern. Patienten mit einer Taschentiefe von mehr als 4 mm werden von der Studie ausgeschlossen.

Nach Anästhesie mit 1,8 ml Articain HCl mit 1: 100000-Epinephrin werden die Zähne mit mit 70% Alkohol desinfizierter Gummi-Dam-Dam isoliert. Nach Desinfektion der Zahnkronen und der Umgebung mit 30% Wasserstoffperoxid und 2,5% Naocl werden karies- und bestehende Restaurationen, falls vorhanden, entfernt. In Zähnen mit normalem Zellstoff werden Dentinfluidproben aus dem Dentinhöhle ungefähr 2 mm vom Zellstoff entfernt entnommen, wie auf Röntgenaufnahmen berechnet. Die freiliegende harte Dentinoberfläche wird mit Druckluft getrocknet. Unter Verwendung einer sterilen Presse wird 1 Membran pro Zahn auf 1 Minute auf den freiliegenden Dentin angelegt und 1,5 ml in ein steriles Eppendorf -Röhrchen übertragen.

Die Decke der Zellstoffkammer wird unter Verwendung eines Mikromotors mit einem Nr. 14 -Rond -Mahlschneider entfernt. Unter Verwendung eines sterilen Baggers und Tirnerf werden gesunde und entzündete Zellstoffproben entfernt und in sterile Eppendorf -Röhrchen überführt, zu denen 200 & mgr; l Phosphatpuffer (PBS) pH: 7,2 zugesetzt werden.

Beim Sammeln der Proben sollte darauf geachtet werden, sie nicht mit Blut und Speichel zu kontaminieren. GCF- und Dentinflüssigkeitsproben mit vermuteter Kontamination werden wiederholt. Patienten mit Proben mit Kontamination von Zellstoffgewebe oder Verschlechterung der Lagerung werden von der Studie ausgeschlossen. GCF-, Dentinflüssigkeits- und Zellstoffgewebeproben, die in ein steriles Eppendorf -Röhrchen von 1,5 ml mit einem Code übertragen wurden, der dem Patienten mit Diagnose und Datum mit geringer Proteinbindung zugewiesen ist, sofort auf Eis aufbewahrt, auf einen Gefrierschrank übertragen und bei -20 ° C gehalten wird. Die Proben werden von der Klinik in den Gefrierschrank bei -80 ° C transportiert und in einem Gefrierschrank bei -80 ° C gelagert, um die Denaturierung bis zur weiteren Analyse zu verhindern.

Das Behandlungsprozess wird durch Anbringen von Routine -Wurzelkanalverfahren auf die Zähne abgeschlossen. Die Zähne in der gesunden Zellstoffgruppe mit einem Indikation für die Extraktion werden nach der Entnahme der Proben extrahiert, und werden normalen Extraktionsverfahren ausgesetzt.

Aquaporin -4-, -5-, -9- und IL -8 -Spiegel der Proben werden durch einen spezifischen enzymgebundenen Immunosorbent -Assay (ELISA) analysiert.

Die Daten werden in der Computerumgebung mit SPSS 28.0 (Statistisches Paket für das statistische Paketprogramm für Social Sciences, NY, USA) analysiert. Die Ergebnisse werden mit 95% -Konfidenzintervall und P <0,05 Signifikanzniveau bewertet.