- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT06097754
Cetosis exógena intermitente (IEK) a gran altitud
Cetosis exógena intermitente (IEK): una nueva estrategia para mejorar la tolerancia y la adaptación hipóxica
La hipoxia relacionada con la altitud disminuye la capacidad funcional humana, especialmente durante el ejercicio. Incluso con una aclimatación prolongada, las adaptaciones fisiológicas son insuficientes para preservar completamente la capacidad de ejercicio, especialmente en altitudes más altas. En consecuencia, ha habido una búsqueda continua de diversas intervenciones para mitigar los efectos negativos de la hipoxia en el desempeño humano y la capacidad funcional. Curiosamente, los primeros datos en roedores y humanos indican que la cetosis exógena intermitente (IEK) por la ingesta de ésteres cetónicos mejora la tolerancia hipóxica, es decir, facilitando la homeostasis energética muscular y neuronal y reduciendo el estrés oxidativo. Además, existe evidencia que indica que la hipoxia eleva la contribución de los cuerpos cetónicos a la generación de trifosfato de adenosina (ATP), sustituyendo la glucosa y convirtiéndose en un combustible prioritario para el cerebro. Sin embargo, es razonable postular que los cuerpos cetónicos también podrían facilitar la aclimatación a largo plazo a la hipoxia mediante la regulación positiva tanto del factor 1α inducible por hipoxia como de la estimulación de la producción de eritropoyetina.
El presente proyecto tiene como objetivo investigar exhaustivamente los efectos de la cetosis exógena intermitente en las respuestas fisiológicas, cognitivas y funcionales a la exposición aguda y subaguda a la altitud/hipoxia durante el descanso, el ejercicio y el sueño en adultos sanos. Específicamente, nuestro objetivo es dilucidar 1) los efectos de la cetosis exógena aguda durante el ejercicio de intensidad máxima y submáxima en hipoxia, 2) los efectos de la cetosis exógena en la arquitectura y la calidad del sueño en hipoxia, y 3) los efectos de la cetosis exógena en la tolerancia hipóxica y adaptación subaguda a la gran altitud. Para ello, se llevó a cabo un ensayo clínico (TC) controlado con placebo en hipoxia hipobárica (gran altitud real) correspondiente a 3375 m s.n.m. (Rifugio Torino, Courmayeur, Italia) se realizará con individuos sanos para investigar los efectos funcionales de las intervenciones probadas y dilucidar los mecanismos fisiológicos, celulares y moleculares exactos implicados en la adaptación aguda y crónica a la hipoxia. Los resultados generados no solo proporcionarán información novedosa sobre el papel de los cuerpos cetónicos en condiciones hipóxicas, sino que también serán de valor aplicado para los montañeros y atletas que compiten en altitud, así como para múltiples enfermedades clínicas asociadas con la hipoxia.
Descripción general del estudio
Estado
Intervención / Tratamiento
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Hombres o mujeres entre 18 y 35 años.
- Índice de masa corporal (IMC) entre 18 y 25
- Estar en buena forma física y realizar actividad física regularmente (2-5 sesiones de ejercicio de > 30 minutos por semana)
- Buen estado de salud confirmado por un examen médico.
- De no fumadores
Criterio de exclusión:
- Cualquier tipo de lesión/patología que sea contraindicación para la exposición hipóxica y/o para la realización de ejercicio de alta intensidad.
- Ingesta de cualquier medicamento o suplemento nutricional que se sepa que afecta el ejercicio, el rendimiento o el sueño.
- Ingesta de analgésicos, agentes antiinflamatorios o antioxidantes suplementarios, desde 2 semanas antes del inicio del estudio.
- Residencia reciente o entrenamiento bajo hipoxia; más de 7 días de exposición a una altitud> 2000 m durante un período de 3 meses antes del estudio.
- Turnos de noche o viajes a través de husos horarios en el mes anterior al estudio.
- Donación de sangre dentro de los 3 meses anteriores al inicio del estudio.
- De fumar
- Más de 3 bebidas alcohólicas al día.
- Implicación en entrenamiento deportivo de élite a nivel semiprofesional o profesional.
- Cualquier otro argumento para creer que es poco probable que el sujeto complete con éxito el protocolo completo del estudio.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Prevención
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Doble
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
---|---|
Experimental: Grupo cetona
Se proporcionarán ésteres de cetona
|
Éster cetónico: se proporcionará un total de 300 g de suplementación con éster cetónico en una de las sesiones experimentales de 72 h para establecer cetosis exógena intermitente. Se añade sucralosa (5 % p/p) al éster de cetona (R)-3-hidroxibutirato de (R)-3-hidroxibutirato. Hipoxia hipobárica: protocolo experimental de 72 horas realizado en altitud terrestre. |
Comparador de placebos: Control
Se proporcionará cetona placebo.
|
Placebo: agua, sucralosa al 5% (p/p), octaacetato (1 mM) Hipoxia hipobárica: protocolo experimental de 72 horas realizado en altitud terrestre. |
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
---|---|---|
Reactividad cerebrovascular al dióxido de carbono (CO2)
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 2 (36 horas después) de la exposición a hipoxia hipobárica.
|
Los sujetos respirarán 4 min 3% CO2 y 4 min 6% CO2 separados por 4 min de aire ambiente.
La arteria cerebral media se registrará continuamente mediante Doppler transcraneal.
|
El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 2 (36 horas después) de la exposición a hipoxia hipobárica.
|
Función cognitiva
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 0 y el día 2 (4 horas y 48 horas) después de la exposición a la hipoxia hipobárica, respectivamente.
|
La función cognitiva será evaluada mediante la batería de pruebas psicométricas computarizadas: The Psychology Experiment Building Language (PEBL).
Se utilizarán las siguientes pruebas cognitivas: la prueba de color-stroop (mide la atención, la velocidad de procesamiento y el control inhibitorio; el tiempo que se tarda en completar la tarea y la precisión de las respuestas; el número de respuestas correctas e incorrectas), el dígito -prueba de intervalo (mide la capacidad de la memoria de trabajo y la memoria a corto plazo de un individuo; la puntuación del intervalo de dígitos recordados correctamente), la prueba ppvt (mide el tiempo de reacción, atención, concentración; el tiempo para reaccionar ante la señal visual) la prueba de fitts (mide la coordinación mano-ojo, la motricidad fina, la concentración; el tiempo para posicionar el objetivo) y el test de muro de tiempo (mide el razonamiento, el cálculo, el tiempo de reacción, la estrategia y la resolución de problemas; estima el tiempo en que un objetivo en movimiento alcanzará un ubicación detrás de una pared).
|
El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 0 y el día 2 (4 horas y 48 horas) después de la exposición a la hipoxia hipobárica, respectivamente.
|
Mal Agudo de Montaña (AMS)
Periodo de tiempo: Todos los días a las 21.00 horas. (antes de dormir) y a las 6.15 a.m. (al despertar) en normoxia e hipoxia hipobárica, respectivamente.
|
El mal agudo de montaña (MAM) se evaluará mediante la escala de Lake Louise.
Los síntomas medidos en la prueba incluyen dolor de cabeza, malestar gastrointestinal, fatiga/debilidad, mareos/aturdimiento y alteraciones del sueño.
Estos se califican con un nivel de intensidad de 0 (el más bajo) a 3 (el más alto).
Una puntuación total ≥3, incluido el dolor de cabeza, es indicativa de AMS.
|
Todos los días a las 21.00 horas. (antes de dormir) y a las 6.15 a.m. (al despertar) en normoxia e hipoxia hipobárica, respectivamente.
|
Cambio en la función pulmonar estimando la capacidad vital forzada (FVC) y el volumen espiratorio forzado en el primer segundo (FEV1).
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
La función pulmonar será evaluada por FVC y FEV1.
|
El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
Cambio en la función pulmonar al estimar el flujo espiratorio máximo (PEF).
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
La función pulmonar será evaluada por PEF.
|
El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
Cambio en la función pulmonar.
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
La función pulmonar se evaluará mediante la relación FEV1/FVC.
|
El día 1 al nivel del mar y el día 3 de exposición a hipoxia hipobárica.
|
Respuesta de la frecuencia cardíaca al ejercicio.
Periodo de tiempo: Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
La frecuencia cardíaca (FC, lpm) se controlará continuamente durante diferentes series de ejercicios de una variedad de intensidades (se utilizarán intensidades moderadas y intensas).
|
Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
Respuesta respiratoria al ejercicio.
Periodo de tiempo: Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
El consumo de oxígeno (VO2, L/min y ml/min/kg) se controlará continuamente durante diferentes series de ejercicio de diversas intensidades (se utilizarán intensidades moderadas y intensas).
|
Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
Cambios en la oxigenación muscular durante el ejercicio.
Periodo de tiempo: Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
La oxigenación / desoxigenación muscular se registrará continuamente durante cada serie de ejercicio mediante espectroscopia de infrarrojo cercano (NIRS) colocada en el vasto lateral.
NIRS mide la cantidad de hemoglobina y mioglobina (microM) oxigenada y desoxigenada en las áreas investigadas (vasto lateral).
|
Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
Cambios en la oxigenación cerebral durante el ejercicio.
Periodo de tiempo: Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
La oxigenación/desoxigenación del cerebro se registrará continuamente durante cada serie de ejercicio mediante espectroscopia de infrarrojo cercano (NIRS) colocada en los niveles frontales.
NIRS mide la cantidad de hemoglobina oxigenada y desoxigenada (microM) en las áreas investigadas (corteza prefrontal).
|
Todos los días durante cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
Cambios en la tasa de consumo de oxígeno muscular (mV#O2)
Periodo de tiempo: Todos los días antes de cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
El consumo de oxígeno muscular se evaluará mediante un protocolo previamente validado.
Brevemente, se colocará un optodo de espectroscopia de infrarrojo cercano (NIRS) en el músculo vasto lateral.
Antes del protocolo, se realizará una calibración isquémica para normalizar las señales NIRS inflando el manguito de presión arterial a 250-300 mmHg durante un máximo de 5 min.
El mV#O2 en reposo se evaluará a partir de la disminución de la oxigenación muscular que acompaña a la oclusión arterial. Luego, cada sujeto realizará un ejercicio de intensidad moderada de 3 x 6 minutos, un ejercicio de intensidad intensa de 8 minutos y una prueba de ejercicio gradual.
Para medir la recuperación del consumo de oxígeno después del ejercicio, el sujeto tendrá una serie de oclusión arterial de la siguiente manera: 5 oclusiones 5 segundos encendido-5 segundos apagado, 5 oclusiones 5 segundos encendido-5 segundos apagado y 5 oclusiones 10 segundos encendido-20 segundos apagado.
|
Todos los días antes de cada serie de ejercicio de 20 a 90 minutos de duración realizada entre las 9 a. m. y las 6 p. m.. El día 0 y el día 1 en normoxia. El día 0, el día 1, el día 2 y el día 3 en hipoxia hipobárica.
|
Duración de las diferentes etapas del sueño.
Periodo de tiempo: Durante toda la noche, hasta 8 horas después del horario de acostarse individual (entre las 22:00 y las 6:00 horas). El día 0 en normoxia. El día 0 y el día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Se utilizará polisomnografía para evaluar la duración de las diferentes etapas del sueño.
|
Durante toda la noche, hasta 8 horas después del horario de acostarse individual (entre las 22:00 y las 6:00 horas). El día 0 en normoxia. El día 0 y el día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Cambios en los marcadores de estrés oxidativo en la sangre.
Periodo de tiempo: Se recolectarán muestras de sangre el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
La concentración de marcadores de estrés oxidativo se medirá en la muestra de sangre venosa recolectada.
|
Se recolectarán muestras de sangre el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
Cambio en la concentración de cortisol salival.
Periodo de tiempo: Se recolectarán muestras de saliva el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
La concentración de cortisol se medirá en muestras de saliva recolectadas.
|
Se recolectarán muestras de saliva el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
Cambio en el estado de hidratación.
Periodo de tiempo: Se recolectarán muestras de orina el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
Las muestras de orina se evaluarán utilizando la gravedad específica de la orina.
|
Se recolectarán muestras de orina el día 1 en normoxia y el día 1, día 2 y día 3 en hipoxia hipobárica a las 6 am (al despertar).
|
Sensibilidad barorrefleja
Periodo de tiempo: Dentro de las 24 h siguientes a la exposición a normoxia e hipoxia hipobárica, respectivamente
|
Al nivel del mar: los sujetos respirarán 6 min de aire ambiente normal (21 % O2, 0,03 % CO2), 6 min de aire normocápnico hipóxico (13,8 % O2, 0,03 % CO2) y 6 min de aire hipercápnico normóxico (21 % O2, 3 % CO2). . A gran altitud: los sujetos respirarán 6 min de aire hipobárico hipóxico (21% O2, 0,03% CO2), hipobárico normóxico (32% O2, 0,03% CO2), hipobárico normóxico hipercápnico (32% O2, 3% CO2). |
Dentro de las 24 h siguientes a la exposición a normoxia e hipoxia hipobárica, respectivamente
|
Cambio en la saturación de oxígeno nocturna.
Periodo de tiempo: Durante toda la noche, hasta 8 horas después del horario de acostarse individual (entre las 22:00 y las 6:00 horas). El día 0 en normoxia. El día 0 y el día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Medido mediante oximetría de pulso
|
Durante toda la noche, hasta 8 horas después del horario de acostarse individual (entre las 22:00 y las 6:00 horas). El día 0 en normoxia. El día 0 y el día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Cantidad absoluta de excreción urinaria nocturna de catecolaminas.
Periodo de tiempo: A partir de las 22 h. a 6 a. m. el día 0 en normoxia y el día 0, día 1 y día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Medido mediante ELISA de orina nocturna recolectada.
Los sujetos vacían la vejiga antes de dormir y se recolectará orina durante toda la noche, hasta 8 horas.
Hasta 8 horas de 22 a 22 horas. a 6 a. m. el día 0 en normoxia y el día 0, día 1 y día 2 en hipoxia hipobárica.
|
A partir de las 22 h. a 6 a. m. el día 0 en normoxia y el día 0, día 1 y día 2 en hipoxia hipobárica.
|
Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
---|---|---|
Cambio en el flujo sanguíneo cerebral en la arteria carótida interna.
Periodo de tiempo: El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 2 (36 horas después) de la exposición a hipoxia hipobárica.
|
El flujo sanguíneo cerebral en el interior se evaluará todas las mañanas mediante ecografía Doppler.
|
El día 1 al nivel del mar (en normoxia). El día 2 (36 horas después) de la exposición a hipoxia hipobárica.
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Estimado)
Finalización del estudio (Estimado)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- IEK Weave
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .
Ensayos clínicos sobre Éster de cetona
-
University of FloridaTerminadoEnfermedad de Parkinson | CetosisEstados Unidos
-
Insel Gruppe AG, University Hospital BernRetirado
-
University of AarhusNovo Nordisk A/S; Aarhus University Hospital; RiisfortReclutamiento
-
University of Sao PauloTerminadoTrastornos TemporomandibularesBrasil
-
University of ManitobaTerminado
-
Institute for Clinical and Experimental MedicineReclutamientoCetosis | Insuficiencia cardiaca aguda | Inestabilidad hemodinámica | Síndrome de gasto cardíaco bajoChequia
-
Duke UniversityEisai LimitedTerminadoAnemia drepanocítica | Crisis vaso-oclusivaEstados Unidos
-
Universidade Federal do CearáDesconocidoEnfermedades musculoesqueléticas | Trastornos de la articulación temporomandibularBrasil
-
AstraZenecaTerminadoTrastorno bipolar | Depresión BipolarEstados Unidos
-
Celgene CorporationTerminado