Identification rapide peropératoire des ganglions lymphatiques et de la parathyroïde

Dans le groupe expérimental, lorsque des glandes parathyroïdes ou des ganglions lymphatiques suspects ont été observés, une aiguille de 22 G a été appliquée pour une ponction in situ à un angle de 45 degrés. L'aiguille a d'abord été enfoncée dans la glande sur 0,2 mm, puis nous avons avancé l'aiguille sur 0,2 mm supplémentaire tout en retirant doucement le piston de la seringue et en maintenant une pression négative. À ce stade, du tissu parathyroïdien a été adsorbé dans l'aiguille. Répétez ce processus dans deux directions différentes pour garantir le volume simple.

Une fois les frottis cellulaires terminés, les frottis ont été fixés dans un liquide stationnaire en 2 à 4 secondes pendant 5 à 20 secondes, puis la technique de coloration Diff-Quik (DQ) a été effectuée pour une identification rapide à l'aide du kit de coloration Diff-Quik conformément aux instructions. Après la coloration Diff-quick suivante pendant 30 secondes, nous pouvons distinguer les cellules parathyroïdiennes et les ganglions lymphatiques sous un microscope à haute puissance.

De plus, le kit de dosage immunochromatographique PTH peut également être utilisé pour la détection des glandes parathyroïdes. En utilisant du papier indicateur pour plonger dans le tissu perforé, l'existence de glandes parathyroïdes pourrait être assurée.

La coloration HE (hématoxyline et éosine) a été utilisée pour la vérification pathologique des ganglions suspects trouvés pendant la chirurgie. Les ganglions suspects apparus en chirurgie ont été isolés et fixés avec du paraformaldéhyde à 4 % pendant 12 h, inclus dans de la paraffine et coupés en sections sériées de 3 µm. Les sections correspondantes ont été colorées avec de l'hématoxyline (BASO Diagnostics Inc. Zhuhai) pendant 10 min à température ambiante. Ensuite, les coupes ont été lavées à l'eau courante. Par la suite, les coupes ont été lavées avec du liquide Scott Promote Blue pendant 1 min, un liquide de différenciation à base d'alcool d'acide chlorhydrique à 1 % pendant 20 s et un liquide Scott Promote Blue pendant 1 min. Ensuite, les coupes ont été colorées avec de l'éosine (BASO Diagnostics Inc. Zhuhai) pendant 30 s. Les sections ont été lavées à l'eau courante et scellées pour observation. Enfin, les sections ont été observées par le logiciel Image-Pro Plus 5.0 (Media Cybernetics, Inc., Bethesda, MD, USA).