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Les prostasomes comme outil de diagnostic pour la détection du cancer de la prostate

8 janvier 2024 mis à jour par: Hackensack Meridian Health

Quantification et purification des prostasomes circulants comme outil de diagnostic pour la détection du cancer de la prostate

Le cancer de la prostate est le cancer le plus fréquemment diagnostiqué chez les hommes de plus de 50 ans dans les sociétés occidentales, avec une incidence en constante augmentation dans la plupart des pays. Le biomarqueur actuel le plus couramment utilisé pour le cancer de la prostate est l'antigène spécifique de la prostate (PSA), dont la précision est bien connue et qui nécessite des tests supplémentaires. Cependant, les cellules cancéreuses de la prostate sécrètent des exosomes, également appelés prostasomes, qui ne sont détectables que dans le sang des patients atteints d'un cancer de la prostate. La présence de prostasomes dans le sang est en soi un diagnostic de cancer de la prostate. Cependant, le test qui a été conçu pour la purification des prostasomes nécessite des tests supplémentaires pour évaluer sa robustesse et son utilité dans le cadre clinique. De plus, l'évaluation de la cargaison des prostasomes purifiés peut fournir plus d'informations sur la nature du cancer de la prostate, ce qui peut aider à développer un test moléculaire pour une biopsie liquide du cancer de la prostate plutôt qu'une biopsie tissulaire. L'objectif de cette étude est donc double : une phase de validation où la purification des prostasomes sera testée sur du plasma prélevé chez des patients atteints d'un cancer de la prostate et une phase de tests moléculaires où le contenu des prostasomes purifiés sera évalué sur leur capacité à déterminer le grade des tumeurs de la prostate.

Nous collaborerons avec le Dr Masood Kamali-Moghaddam de l'Université d'Uppsala (Département d'immunologie, de génétique et de pathologie) pour le traitement des tests moléculaires.

Aperçu de l'étude

Type d'étude

Observationnel

Inscription (Estimé)

600

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

    • New Jersey
      • Hackensack, New Jersey, États-Unis, 07601
        • Hackensack University Medical Center

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans et plus (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Oui

Méthode d'échantillonnage

Échantillon non probabiliste

Population étudiée

Tous les patients de sexe masculin avec un PSA élevé et suspectés d'un cancer de la prostate ou les patients atteints d'un cancer de la prostate diagnostiqué mais avant le traitement seront invités à participer. En fonction des résultats de la biopsie diagnostique guidée par IRM, les participants seront affectés soit à la cohorte témoin (si la biopsie est négative), soit à la cohorte de patients (si la biopsie est positive).

La description

Critère d'intégration:

  • Homme
  • Avec PSA élevé ou patients atteints d'un cancer de la prostate diagnostiqué
  • 18 ans et plus
  • Volonté de participer à l'étude et respect des exigences du protocole
  • N'ont reçu aucun type de traitement pour le cancer de la prostate

Critère d'exclusion:

  • Patients atteints d'un cancer de la prostate confirmé ou suspecté qui ont déjà reçu tout type de traitement
  • Patients atteints d'un autre cancer primitif au cours des cinq dernières années suivant le diagnostic de cancer de la prostate. Cependant, les cancers cutanés superficiels tels que les cancers basocellulaires ou épidermoïdes n'excluraient pas un patient.

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

Cohortes et interventions

Groupe / Cohorte
Intervention / Traitement
Population de patients
Les hommes avec un PSA élevé et une biopsie IRM positive ET les hommes avec un cancer de la prostate diagnostiqué (mais avant tout traitement)

Le sang total sera prélevé et traité dans les 2 heures. Les échantillons seront apportés au Hackensack University Medical Center et seront centrifugés.

Les échantillons de plasma seront testés pour la présence de prostasomes à l'aide du test ExoPLA (Exosome in situ Proximity Ligation Assay) et les prostasomes seront purifiés pour un séquençage ultérieur des miARN.

Population témoin
Hommes avec PSA élevé et biopsie négative par IRM

Le sang total sera prélevé et traité dans les 2 heures. Les échantillons seront apportés au Hackensack University Medical Center et seront centrifugés.

Les échantillons de plasma seront testés pour la présence de prostasomes à l'aide du test ExoPLA (Exosome in situ Proximity Ligation Assay) et les prostasomes seront purifiés pour un séquençage ultérieur des miARN.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
sensibilité de la méthodologie de purification du prostasome
Délai: jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois
taux de vrais positifs de la méthodologie de purification des prostasomes en utilisant les résultats de détection des prostasomes pour chacun des échantillons de patients (cas et témoins)
jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois
spécificité de la méthodologie de purification du prostasome
Délai: jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois
taux de vrais négatifs de la méthodologie de purification des prostasomes utilisant les résultats de détection des prostasomes pour chacun des échantillons de patients (cas et témoins)
jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Quantification des profils d'expression des miARN des protostomes purifiés avant et après traitement (dans la cohorte de patients uniquement)
Délai: jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois
identifier les 20 marqueurs miARN les plus fréquemment exprimés et leur niveau d'expression dans chacun des échantillons de patients
jusqu'à la fin des études - jusqu'à 24 mois
Délai jusqu'à progression de la maladie (dans la cohorte de patients uniquement)
Délai: Jusqu'à 24 mois
Jusqu'à 24 mois
Délai de rechute de la maladie (dans la cohorte de patients uniquement)
Délai: Jusqu'à 24 mois
Jusqu'à 24 mois
Survie globale (dans la cohorte de patients uniquement)
Délai: Jusqu'à 24 mois
Jusqu'à 24 mois

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Publications générales

  • 1. Gomella LG, Johannes J, Trabulsi EJ. Current prostate cancer treatments: Effect on quality of life. Urology. 2009;73(5, Suppl): S28-S35. 2. Network, N.C.C. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology: Prostate Cancer, Version 2.2017. [cited 2017 May 31];2017 Available from: https://www.nccn.org/professionals/physician_gls/pdf/prostate.pdf. 3. Pienta KJ. Critical appraisal of prostate-specific antigen in prostate cancer screening: 20 years later. Urology. 2009;73(5, Suppl):S11-S20. 4. Stamey TA, et al. Prostate-specific antigen as a serum marker for adenocarcinoma of the prostate. N Engl J Med. 1987;317:909-916. 5. Catalona WJ. Management of cancer of the prostate. N Engl J Med. 1994;331:996-1004. 6. Harvey P, et al. A systematic review of the diagnostic accuracy of prostate specific antigen. BMC Urol. 2009;9:14. 7. Cramer SD, et al. Association between genetic polymorphisms in the prostate-specific antigen gene promoter and serum prostate-specific antigen levels. J Natl Cancer Inst. 2003;95:1044-1053.
  • 8. Inal JM, Kosgodage U, Azam S, Stratton D, Antwi-Baffour S, Lange S. Blood/plasma secretome and microvesicles. Biochim Biophys Acta. 2013;1834(11):2317-25. 9. Ronquist G, Brody I, Gottfries A, Stegmayr B. An Mg2+ and Ca2+-stimulated adenosine triphosphatase in human prostatic fluid-part II. Andrologia. 1978;10:427-433. 10. Ronquist G, Brody I, Gottfries A, Stegmayr B. An Mg2+ and Ca2+-stimulated adenosine triphosphatase in human prostatic fluid: Part I. Andrologia. 1978;10:261-272. 11. Ronquist G, Hedström M. Restoration of detergent-inactivated adenosine triphosphatase activity of human prostatic fluid with concanavalin A. Biochim Biophys Acta. 1977;483:483-486. 12. Minciacchi VR, Zijlstra A, Rubin MA, Di Vizio D. Extracellular vesicles for liquid biopsy in prostate cancer: where are we and where are we headed? Prostate Cancer Prostatic Dis. 2017;20(3):251-258. 13. Poliakov A, Spilman M, Dokland T, Amling CL, Mobley JA. Structural heterogeneity and protein composition of exosome-like vesicles (prostasomes) in human semen. Prostate. 2009;69:159-167. 14. Utleg AG, et al. Proteomic analysis of human prostasomes. Prostate. 2003;56:150-161. 15. Carlsson L, et al. Characteristics of human prostasomes isolated from three different sources. Prostate. 2003;54:322-330.
  • 16. Carlsson L, Ronquist G, Eliasson R, Egberg N, Larsson A. Flow cytometric technique for determination of prostasomal quantity, size and expression of CD10, CD13, CD26 and CD59 in human seminal plasma. Int J Androl. 2006;29:331-338. 17. Fernández JA, Heeb MJ, Radtke KP, Griffin JH. Potent blood coagulant activity of human semen due to prostasome-bound tissue factor. Biol Reprod. 1997;56:757-763. 18. Fabiani R, Johansson L, Lundkvist O, Ronquist G. Enhanced recruitment of motile spermatozoa by prostasome inclusion in swim-up medium. Hum Reprod. 1994;9:1485-1489. 19. Carlsson L, Påhlson C, Bergquist M, Ronquist G, Stridsberg M. Antibacterial activity of human prostasomes. Prostate. 2000;44:279-286. 20. Rooney IA, et al. Physiologic relevance of the membrane attack complex inhibitory protein CD59 in human seminal plasma: CD59 is present on extracellular organelles (prostasomes), binds cell membranes, and inhibits complement-mediated lysis. J Exp Med. 1993;177:1409-1420. 21. Saez F, Motta C, Boucher D, Grizard G. Antioxidant capacity of prostasomes in human semen. Mol Hum Reprod. 1998;4:667-672. 22. Skibinski G, Kelly RW, Harkiss D, James K. Immunosuppression by human seminal plasma-extracellular organelles (prostasomes) modulate activity of phagocytic cells. Am J Reprod Immunol. 1992;28:97-103.
  • 23. Floryk D, Tollaksen SL, Giometti CS, Huberman E. Differentiation of human prostate cancer PC-3 cells induced by inhibitors of inosine 5'-monophosphate dehydrogenase. Cancer Res. 2004;64:9049-9056. 24. Nilsson BO, Egevad L, Jin M, Ronquist G, Busch C. Distribution of prostasomes in neoplastic epithelial prostate cells. Prostate. 1999;39:36-40. 25. Sahlén G, et al. Prostasomes are secreted from poorly differentiated cells of prostate cancer metastases. Prostate. 2004;61:291-297. 26. Fredriksson S, et al. Protein detection using proximity-dependent DNA ligation assays. Nat Biotechnol. 2002;20:473-477. 27. Tavoosidana G, Ronquist G, Darmanis S, Yan J, Carlsson L, Wu D, Conze T, Ek P, Semjonow A, Eltze E, Larsson A, Landegren UD, Kamali-Moghaddam M. Multiple recognition assay reveals prostasomes as promising plasma biomarkers for prostate cancer. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 May 24;108(21):8809-14. 28. Löf L, Ebai T, Dubois L, Wik L, Ronquist KG, Nolander O, Lundin E, Söderberg O, Landegren U, Kamali-Moghaddam M. Detecting individual extracellular vesicles using a multicolor in situ proximity ligation assay with flow cytometric readout. Sci Rep. 2016; 6:34358. 29. Loudig O, Wang T, Ye K, Lin J, Wang Y, Ramnauth A, Liu C, Stark A, Chitale D, Greenlee R, Multerer D, Honda S, Daida Y, Spencer Feigelson H, Glass A, Couch FJ, Rohan T, Ben-Dov IZ. Evaluation and Adaptation of a Laboratory-Based cDNA Library Preparation Protocol for Retrospective Sequencing of Archived MicroRNAs from up to 35-Year-Old Clinical FFPE Specimens. Int J Mol Sci. 2017; 18(3). pii: E627. 30. Loudig O, Liu C, Rohan T, and Ben-Dov IZ. Retrospective MicroRNA Sequencing: Complementary DNA Library Preparation Protocol Using Formalin-fixed Paraffin-embedded RNA Specimens. Journal of Visualized Experiments, 2018.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

3 octobre 2018

Achèvement primaire (Estimé)

1 octobre 2024

Achèvement de l'étude (Estimé)

1 octobre 2024

Dates d'inscription aux études

Première soumission

25 septembre 2018

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

2 octobre 2018

Première publication (Réel)

3 octobre 2018

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

10 janvier 2024

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

8 janvier 2024

Dernière vérification

1 janvier 2024

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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