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Amphiréguline Versus Supplémentation Non-Amphiréguline Au Milieu De Culture De Maturation Dans L'IVM.

11 juin 2021 mis à jour par: Mỹ Đức Hospital

Effet de l'étape de culture CAPA sur la compétence méiotique et développementale des ovocytes humains après l'utilisation de deux déclencheurs de maturation méiotique (précédemment utilisés) dans une conception d'étude sur les ovocytes SIBLING

L'utilisation clinique de l'IVM a été lancée dans les années 90, mais n'est pas encore devenue une option réaliste pour une pratique à grande échelle, pour plusieurs raisons. Fondamentalement, malgré les progrès récents dans l'amélioration de l'implantation et des taux de grossesse à l'aide d'ovocytes mûris in vitro, les résultats de l'IVM restent inférieurs à ceux des cycles de traitement utilisant l'ART conventionnel. Pour améliorer les résultats des cycles IVM, cette étude se concentre sur l'amélioration des conditions de culture in vitro.

La maturation in vitro (IVM) d'ovocytes humains obtenus à partir d'ovaires peu stimulés ou non stimulés offre une option de traitement plus « conviviale pour le patient » que le traitement conventionnel de technologie de procréation assistée (ART) avec hyperstimulation ovarienne contrôlée (COH). Typiquement, l'IVM sera proposée aux femmes ayant des ovaires polykystiques (PCO/PCOS), ou aux patientes ayant une excellente réserve ovarienne, c'est-à-dire un nombre élevé de follicules antraux. Le traitement IVM est caractérisé par une administration minimale de FSH ou d'hMG et PAS de déclencheur d'hCG. L'approche IVM perturbe moins la vie quotidienne des patients grâce à la réduction du besoin de surveillance hormonale et échographique, évite une série de complications mineures et majeures, telles que le syndrome d'hyperstimulation ovarienne, et vise à réduire le coût total du traitement de l'infertilité pour le patient et pour le budget de la santé.

Les ovocytes humains récupérés à partir de petits follicules antraux sont capables de reprendre la méiose en subissant une dégradation des vésicules germinales et une extrusion du premier globule polaire, si les ovocytes ont atteint la compétence méiotique. Ces ovocytes peuvent être fécondés bien que seule une partie (moins de 50%) d'entre eux puisse se développer davantage en embryons viables. Il a été émis l'hypothèse que l'échec du développement embryonnaire peut, au moins en partie, être dû à un cytoplasme ovocytaire immature. Un nouveau système de culture de maturation in vitro (IVM) humaine (nommé CAPACITATION-IVM est à l'étude, ci-après nommé "CAPA") utilisant 1°) des composés naturels connus pour influencer les niveaux d'AMPc dans le complexe cumulus-ovocyte et 2°) des composés qui sont cruciaux pour la diaphonie ovocyte-cumulus. Le maintien d'un niveau élevé d'AMP cyclique après récupération dans l'ovocyte GV empêche l'apparition d'une maturation nucléaire, permettant une communication accrue entre l'ovocyte et les cellules du cumulus. Cela permet d'améliorer la synchronisation des processus de maturation nucléaire et cytoplasmique dans l'ovocyte, au bénéfice de la qualité embryonnaire.

Aperçu de l'étude

Statut

Complété

Les conditions

Description détaillée

Deux types de patients peuvent être distingués dans cette étude :

  • Morphologie ovarienne polykystique + durée de cycle normale (jusqu'à 35 jours). La majorité des sujets de ce groupe ont des ovaires polykystiques non syndromiques et n'ont pas de SOPK. Chez ces patients, l'AMH n'est que modérément élevée et le développement folliculaire cyclique se produit sous l'influence de la FSH.
  • SOPK - Morphologie ovarienne polykystique + oligoménorrhée (menstruations survenant à des intervalles supérieurs à 35 jours, avec seulement quatre à neuf périodes par an) ou aménorrhée. Chez ces patients, avec des taux d'AMH souvent fortement élevés et une hyperandrogénémie concomitante, la résistance relative à la FSH entraîne l'arrêt de la croissance folliculaire au niveau du petit état folliculaire antral. La sélection spontanée d'un follicule dominant ne se produit pas ou se produit rarement. Une grande partie des follicules sont atrésiques. Une proportion importante de ces patients ont un IMC supérieur à 25. Ces patients reçoivent généralement le même schéma standard de stimulation aux gonadotrophines que les patients du groupe précédent, mais si les plus gros follicules ont un diamètre inférieur à 8 mm au troisième jour de stimulation, les patients reçoivent un ou deux jours supplémentaires de stimulation aux gonadotrophines. De plus, ces patients prennent généralement deux à trois semaines d'OCP avant le début du cycle IVM et commencent la stimulation environ le cinquième jour après le retrait de l'OCP. Cependant, comme ces patients n'ont pas de recrutement endogène de follicules induit par la FSH, le début de la stimulation est plutôt flexible.
  • L'utilisation d'OCP (pilule contraceptive orale) avant le cycle IVM est obligatoire. OCP (par exemple Microgynon 30 microgrammes) sera administré quotidiennement, pour nettoyer les follicules atrésiques dans l'ovaire. L'OCP sera donnée entre 14 et 21 jours (cette méthode permet de mieux programmer les cycles et la charge de travail au laboratoire d'embryologie).

Avant le premier cycle IVM (visite de sélection) : tous les sujets subiront une échographie pelvienne pour évaluer leur aptitude à subir un traitement IVM. Les patients subiront un test sanguin pour la sérologie (hépatite B, VIH, syphilis) et le profil hormonal de base (LH, FSH, E2, progestérone, AMH, SHBG, testostérone). Analyse complémentaire de la TSH, des anticorps anti-thyroperoxydase, de la prolactine. Tout médicament concomitant pris au cours des 3 derniers mois précédant la tentative de MIV doit être signalé.

Premier cycle de traitement IVM :

  • Première visite à la clinique :

    • Tous les sujets contacteront l'infirmière de l'étude le jour du cycle (cd1) pour lancer le premier cycle de culture de capacitation. Si cd1 est pendant le week-end, les sujets contacteront l'infirmière de l'étude le lundi. Le sujet se rendra à la clinique le jour 1, 2 ou 3 des saignements menstruels. Une échographie est réalisée pour exclure l'existence de kystes ovariens et un prélèvement sanguin est effectué pour bilan hormonal (HCG, FSH, LH, E2, progestérone). Le soir du jour 3 du cycle de la première visite à la clinique, une stimulation flexible de la gonadotrophine sera lancée pour améliorer le développement folliculaire. La première dose de HP-hMG 150 UI à 14 heures. Deuxième dose le lendemain de HP-hMG 150 UI à 14 h. Le sujet reviendra pour une échographie pelvienne et une prise de sang (FSH, LH, E2, progestérone) après les deux jours de stimulation HP-hMG 150 UI (c'est-à-dire le matin du jour 6).
    • Aux patientes présentant des saignements OCP : le premier, le deuxième, le troisième ou le quatrième jour de l'hémorragie de privation qui survient après l'arrêt de l'OCP, le sujet se présentera à la clinique pour subir une échographie pelvienne et un échantillon de sang sera prélevé pour une évaluation hormonale (FSH , LH, E2, progestérone, AMH, testostérone sérique totale, SHBG). Le jour de la première visite à la clinique, une stimulation flexible HP-hMG sera lancée pour améliorer le développement folliculaire, à une première dose quotidienne de HP-hMG à 20 h. Le sujet reviendra pour une échographie pelvienne et une prise de sang (FSH, LH, E2, progestérone) après deux jours de stimulation HP hMG.
  • Deuxième visite à la clinique au jour 6 (après 2 jours de traitement HP-hMG) :

    • Si l'échographie montre la présence d'un seul follicule dominant de plus de 12 mm avec les autres follicules tous de moins de 10 mm, le prélèvement d'ovocytes (RO) sera programmé deux jours plus tard, entre 8h00 et 9h00. Il est important de conserver l'OR 42 à 46 heures après la dernière injection de HP-hMG comme moment fixe. Si l'échographie montre un diamètre folliculaire maximal inférieur à 8 mm, une dernière injection de HP-hMG sera administrée à 14 h. et le prélèvement d'ovocytes (RO) sera programmé deux jours plus tard, entre 8h00 et 9h00. Il est important de conserver l'OR 42 à 46 heures après la dernière injection de HP-hMG comme moment fixe.
    • Pour les patients présentant des saignements OCP : Si l'échographie montre un diamètre folliculaire maximal d'env. 9 mm, une dernière injection de HP-hMG sera administrée à 14 h. et le prélèvement d'ovocytes (RO) sera programmé deux jours plus tard, entre 8h00 et 9h00 (sous anesthésie générale - l'heure exacte de la RO doit être discutée avec les infirmières opératoires et l'anesthésiste). Il est important de maintenir le temps d'OR constant à 42-46 heures après la dernière injection de HP-hMG.
  • Troisième visite - Prélèvement d'ovocytes : Le prélèvement d'ovocytes (RO) sera programmé entre 8h00 et 10h00 (sous anesthésie générale). Le jour de l'OR :

    • Une échographie des deux ovaires et de la muqueuse endométriale est enregistrée.
    • Un échantillon de sang sera obtenu pour le profilage hormonal (LH, FSH, E2, progestérone).
  • Tous les complexes cumulus-ovocytes (COC) prélevés sur la patiente sont cultivés en milieu CAPA pendant 24 heures.
  • Après la culture CAPA, la moitié des ovocytes seront répartis au hasard (50/50) dans les deux milieux déclencheurs de maturation.

    • Groupe 1 : Milieux Medicult IVM + AREG+FSH+HSA+Insuline+Estradiol (groupe AREG-TRIGGER)
    • Groupe 2 : Milieux Medicult IVM + FSH+GH+hCG+HSA (groupe CONTROL-TRIGGER) sans AREG ajouté
  • Maturation in vitro des ovocytes :

    • Évaluer et enregistrer les COC pour la masse cumulus (CM) et le contact cumulus entre les ovocytes et les cellules cumulus. A chaque fois prendre des photos. Jeter les ovocytes entièrement dénudés et dégénérés.
    • Transférer la moitié des COC (5 à 10 à la fois) de la boîte de culture Capacitation à la "boîte de lavage" contenant le "milieu de maturation 1 (milieu AREG-TRIGGER)" à l'aide d'une micropipette Eppendorf et les laver soigneusement (charger les embouts de pipette avec 5µl, max. 10µl). Transférez ensuite les COC dans la "boîte IVM" avec le "milieu de maturation 1 (milieu AREG-TRIGGER)".
    • Transférer la seconde moitié des COC de la boîte de culture Capacitation dans la « boîte de lavage » contenant le « Milieu de maturation 2 (milieu CONTROL-TRIGGER) » et les laver soigneusement (charger les embouts de pipette avec 5 µl, max. 10µl). Transférez ensuite les COC dans la "boîte IVM" avec "Maturation Medium 2 (CONTROL-TRIGGER medium)".
    • Conservez les COC dans des pools de ~ 10.
    • Étiquetez le plat de manière appropriée et cultivez les COC pendant 30 à 32 heures dans un incubateur.
  • L'évaluation de la maturation (MII, GVBD, GV) se fera à 30 heures. Les ovocytes qui ont subi une GVBD mais sans PB clair seront évalués à 32 heures. L'insémination sera réalisée par injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (3-4 heures après le prélèvement des ovocytes ou le contrôle de la maturation) ; seuls les ovocytes matures seront inséminés.
  • Le contrôle de la fécondation sera effectué au microscope inversé 16 à 18 heures après l'insémination. L'évaluation des embryons sera effectuée 68 ± 1 heures après la fécondation en utilisant le consensus d'Istanbul. Protocole standard de vitrification d'embryons utilisé. Les embryons seront vitrifiés selon le protocole de stimulation obtenu (groupe 1 AREG-TRIGGER ou groupe 2 - CONTROL-TRIGGER).
  • Transfert d'embryon congelé : la patiente sera randomisée pour recevoir un embryon au hasard d'AREG-TRIGGER ou CONTROL-TRIGGER. Lorsqu'aucun embryon du groupe randomisé n'était disponible, un ou des embryons de l'autre groupe ont été transférés.
  • Le premier test de grossesse a été réalisé 14 jours après le transfert d'embryon ; un test de grossesse positif a été défini comme bêta hCG sérique > 5 mUI/mL
  • La grossesse clinique a été définie comme au moins un sac gestationnel à l'échographie à 7 semaines de gestation avec détection de l'activité cardiaque.
  • La grossesse en cours a été définie comme une grossesse avec une fréquence cardiaque détectable à ≥ 12 semaines de gestation après la fin du premier transfert.
  • La naissance vivante était définie comme la naissance d'au moins un nouveau-né après 24 semaines de gestation présentant un signe de vie (les jumeaux étaient un seul décompte).
  • Après un premier cycle IVM infructueux : les données cliniques et embryologiques et les résultats liés au premier cycle IVM (cycles cumulatifs d'embryons frais et congelés) seront discutés, afin d'établir une approche plus adaptée au patient pour un éventuel deuxième cycle IVM. L'approche adaptée au patient dans le deuxième cycle IVM pourrait consister en une modification de la gestion de la phase folliculaire.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Réel)

30

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

      • Ho Chi Minh City, Viêt Nam
        • My Duc Hospital

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans à 37 ans (ADULTE)

Accepte les volontaires sains

Non

Sexes éligibles pour l'étude

Femelle

La description

Critère d'intégration:

  • Avoir une morphologie ovarienne polykystique : au moins 24 follicules dans les deux ovaires et/ou un volume ovarien accru (>10 ml) (il suffit qu'un ovaire remplisse ces critères)
  • Subissant ≤ 2 tentatives précédentes d'IVM ou de FIV
  • Accepter de faire transférer ≤ 2 embryons

Critère d'exclusion:

  • Endométriose de haut grade
  • Cycles de don d'ovocytes et de diagnostic génétique préimplantatoire
  • Cas avec une qualité de sperme extrêmement médiocre.

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: TRAITEMENT
  • Répartition: NON_RANDOMIZED
  • Modèle interventionnel: PARALLÈLE
  • Masquage: AUCUN

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
ACTIVE_COMPARATOR: AREG-TRIGGER

Par caisse (6mL) 5940 µL "Milieu basal"

  • 60 µL "IVM MIX" Pas besoin de filtrer le milieu.

Les ovocytes dans le milieu AREG-TRIGGER seront matures dans le milieu AREG + FSH + HSA + Insuline + Estradiol.

Par caisse (6mL) 5940 µL "Milieu basal"

  • 60 µL "IVM MIX" Pas besoin de filtrer le milieu.
Autres noms:
  • Moyen de capacitation IVM
ACTIVE_COMPARATOR: CONTRÔLE-DÉCLENCHEUR
Par caisse (5 ml) 4,3 ml IVM Medicult Medium (flacon 2) 0,5 ml HSA (de la solution de réserve à 10 %) 50 µl de FSH (de la réserve de 7,5 UI/ml) 5 µl hCG (de la réserve de 100 UI/ml) 75 µl de GH (de la stock 0,66 mg/ml)

Les ovocytes dans le milieu CONTROL-TRIGGER seront matures dans le milieu FSH + hCG + GH + HSA.

Par caisse (5 ml) 4,3 ml IVM Medicult Medium (flacon 2) 0,5 ml HSA (de la solution de réserve à 10 %) 50 µl de FSH (de la réserve de 7,5 UI/ml) 5 µl hCG (de la réserve de 100 UI/ml) 75 µl de GH (de la stock 0,66 mg/ml)

Autres noms:
  • Moyen de contrôle CAPA

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Efficacité de la maturation méiotique
Délai: Deux jours après le prélèvement des ovocytes
Pourcentage de PB, GVBD, GV par les deux types de déclenchement. L'ovocyte PB (ou MII) affiche le premier PB dans le PVS. Les ovocytes GVBD n'ont ni GV visible ni PBI. L'ovocyte GV présente un noyau intracytoplasmique appelé « vésicule germinale ».
Deux jours après le prélèvement des ovocytes
Nombre d'embryons transférables au jour 3
Délai: Cinq jours après le prélèvement des ovocytes
Nombre d'embryons transférables au jour 3 obtenus par les deux types de déclencheurs méiotiques
Cinq jours après le prélèvement des ovocytes

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de grossesse en cours
Délai: Au minimum 12 semaines à partir du début du dernier cycle menstruel (chaque cycle dure 4 semaines) jusqu'au moment de l'accouchement
Grossesse avec fréquence cardiaque détectable à 12 semaines de gestation jusqu'au moment de l'accouchement
Au minimum 12 semaines à partir du début du dernier cycle menstruel (chaque cycle dure 4 semaines) jusqu'au moment de l'accouchement
Taux de naissances vivantes
Délai: Au moins 24 semaines de gestation jusqu'au moment de l'accouchement
La naissance vivante est définie comme la naissance d'au moins un nouveau-né après 24 semaines de gestation qui présente un signe de vie (un jumeau sera un seul compte). Pour le moment où cela se produit, la grossesse en cours sera utilisée, c'est-à-dire que la grossesse en cours à 12 semaines sera utilisée dans les calculs, à condition que cette grossesse en cours aboutisse à une naissance vivante.
Au moins 24 semaines de gestation jusqu'au moment de l'accouchement
Analyse génétique et épigénétique du sang de cordon des nouveau-nés (sera effectuée dans une étude distincte)
Délai: 1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)
Le matériel du nouveau-né (sang de cordon) sera prélevé pour analyse génétique (caryotypage) et épigénétique.
1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)
Analyse génétique et épigénétique des cellules de frottis buccaux de nouveau-nés (sera effectuée dans une étude distincte)
Délai: 1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)
Le matériel du nouveau-né (cellules de frottis buccaux) sera collecté pour analyse génétique (caryotypage) et épigénétique.
1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)
Analyse génétique et épigénétique du placenta des nouveau-nés (sera effectuée dans une étude distincte)
Délai: 1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)
Le matériel du nouveau-né (placenta) sera collecté pour analyse génétique (caryotypage) et épigénétique.
1 jour (avant le début de la FIV/IVM) et 1 jour (au moment de l'accouchement)

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Tuong M Ho, MD,MCE, Hope Research Center

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (RÉEL)

17 avril 2019

Achèvement primaire (RÉEL)

12 décembre 2019

Achèvement de l'étude (RÉEL)

31 janvier 2020

Dates d'inscription aux études

Première soumission

3 avril 2019

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

11 avril 2019

Première publication (RÉEL)

16 avril 2019

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (RÉEL)

16 juin 2021

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

11 juin 2021

Dernière vérification

1 juin 2021

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Autres numéros d'identification d'étude

  • CS/BVMD/19/03

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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