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Suplementação de anfirregulina versus não-anfirregulina para meio de cultura de maturação em IVM.

11 de junho de 2021 atualizado por: Mỹ Đức Hospital

Efeito da etapa de cultura CAPA na competência meiótica e de desenvolvimento de oócitos humanos após o uso de dois gatilhos de maturação meiótica (usados ​​anteriormente) em um projeto de estudo de oócitos de irmãos

O uso clínico da MIV foi iniciado nos anos noventa, mas ainda não se tornou uma opção realista para prática em larga escala, por vários motivos. Fundamentalmente, apesar do progresso recente na melhoria das taxas de implantação e gravidez usando oócitos maturados in vitro, os resultados da IVM permanecem inferiores aos ciclos de tratamento utilizando ART convencional. Para melhorar o resultado dos ciclos IVM, este estudo se concentra na melhoria das condições de cultura in vitro.

A maturação in vitro (IVM) de oócitos humanos obtidos de ovários minimamente estimulados ou não estimulados oferece uma opção de tratamento mais "amigável ao paciente" do que o tratamento convencional de Tecnologia de Reprodução Assistida (ART) com hiperestimulação ovariana controlada (COH). Normalmente, a IVM será oferecida a mulheres com ovários policísticos (SOP/SOP) ou a pacientes com excelente reserva ovariana, ou seja, alta contagem de folículos antrais. O tratamento da MIV caracteriza-se pela administração mínima de FSH ou hMG e NO gatilho hCG. A abordagem IVM é menos perturbadora para a vida diária dos pacientes através da redução da necessidade de monitoramento hormonal e ultrassonográfico, evita uma série de complicações menores e maiores, como a síndrome de hiperestimulação ovariana, e visa reduzir o custo total do tratamento de infertilidade para o paciente e para o orçamento da saúde.

Oócitos humanos recuperados de pequenos folículos antrais são capazes de retomar a meiose por meio da quebra da vesícula germinativa e extrusão do primeiro corpúsculo polar, se os oócitos atingirem a competência meiótica. Esses oócitos podem ser fertilizados, embora apenas uma proporção (menos de 50%) deles possa se desenvolver em embriões viáveis. Foi levantada a hipótese de que a falha no desenvolvimento embrionário pode, pelo menos em parte, ser devida a um citoplasma imaturo do oócito. Um novo sistema de cultura de maturação humana in vitro (IVM) (denominado CAPACITAÇÃO-IVM está sendo investigado, doravante denominado "CAPA") usando 1°) compostos naturais conhecidos por influenciar os níveis de cAMP dentro do complexo cumulus-oócito e 2°) compostos que são cruciais para o cross-talk oócito-cúmulo. A manutenção do AMP cíclico elevado após a captação no oócito GV previne a ocorrência de maturação nuclear, possibilitando maior comunicação entre o oócito e as células do cumulus. Isso permite melhorar a sincronização dos processos de maturação nuclear e citoplasmática no oócito, em benefício da qualidade do embrião.

Visão geral do estudo

Status

Concluído

Condições

Descrição detalhada

Existem dois tipos de pacientes que podem ser distinguidos neste estudo:

  • Morfologia ovariana policística + duração normal do ciclo (até 35 dias). A maioria dos indivíduos neste grupo tem ovários policísticos não sindrômicos e não tem SOP. Nesses pacientes, o AMH está apenas moderadamente elevado e o desenvolvimento folicular cíclico ocorre sob a influência do FSH.
  • SOP - Morfologia ovariana policística + oligomenorréia (períodos menstruais ocorrendo em intervalos superiores a 35 dias, com apenas quatro a nove períodos em um ano) ou amenorréia. Nesses pacientes, frequentemente com níveis fortemente elevados de AMH e hiperandrogenemia concomitante, a resistência relativa ao FSH resulta na interrupção do crescimento folicular no estado folicular antral pequeno. A seleção espontânea de um folículo dominante não ocorre ou ocorre raramente. Uma grande proporção de folículos é atrésica. Uma proporção importante desses pacientes tem um IMC maior que 25. Esses pacientes geralmente recebem o mesmo regime padrão de estimulação com gonadotrofina que os pacientes do grupo anterior, mas se os folículos maiores tiverem diâmetro inferior a 8 mm no terceiro dia de estimulação, os pacientes recebem um ou dois dias suplementares de estimulação com gonadotrofina. Além disso, esses pacientes geralmente tomam duas a três semanas de ACO antes do início do ciclo IVM e iniciam a estimulação aproximadamente no dia cinco após a retirada do ACO. No entanto, como esses pacientes não apresentam recrutamento endógeno de folículos por FSH, o início da estimulação é bastante flexível.
  • O uso de ACO (pílula anticoncepcional) antes do ciclo MIV é obrigatório. OCP (por exemplo Microgynon 30 microgramas) será administrado diariamente, para limpar os folículos atrésicos no ovário. OCP será dado entre 14 e 21 dias (este método permite uma melhor programação dos ciclos e da carga horária no laboratório de embriologia).

Antes do primeiro ciclo de IVM (visita de triagem): Todos os indivíduos serão submetidos a uma ultrassonografia pélvica para avaliar a adequação ao tratamento com IVM. Os pacientes serão submetidos a um exame de sangue para sorologia (Hepatite B, HIV, sífilis) e perfil hormonal basal (LH, FSH, E2, progesterona, AMH, SHBG, Testosterona). Análise adicional de TSH, anticorpos tiroperoxidase, prolactina. Qualquer medicação concomitante tomada nos últimos 3 meses antes da tentativa de IVM deve ser notificada.

Primeiro ciclo de tratamento IVM:

  • Primeira consulta clínica:

    • Todos os sujeitos entrarão em contato com a enfermeira do estudo no dia do ciclo (cd1) para iniciar o primeiro ciclo de cultura de Capacitação. Se cd1 for durante o fim de semana, os sujeitos entrarão em contato com a enfermeira do estudo na segunda-feira. O sujeito comparecerá à clínica no dia 1, 2 ou 3 do sangramento menstrual. Uma ultrassonografia é realizada para descartar a existência de cistos ovarianos e uma amostra de sangue é coletada para avaliação hormonal (HCG, FSH, LH, E2, progesterona). Na noite do dia 3 do ciclo da primeira visita clínica, a estimulação flexível de Gonadotrofina será iniciada para melhorar o desenvolvimento folicular. A primeira dose de HP-hMG 150 UI às 14h. Segunda dose no dia seguinte de HP-hMG 150 UI às 14h. O sujeito retornará para uma ultrassonografia pélvica e um exame de sangue (FSH, LH, E2, progesterona) após os dois dias de estimulação HP-hMG 150 UI (ou seja, na manhã do dia 6).
    • Para pacientes com sangramento de OCP: No primeiro, segundo, terceiro ou quarto dia do sangramento de privação que ocorre após a interrupção do OCP, o indivíduo comparecerá à clínica para fazer uma ultrassonografia pélvica e uma amostra de sangue será coletada para avaliação hormonal (FSH , LH, E2, progesterona, AMH, testosterona sérica total, SHBG). No dia da primeira visita clínica, a estimulação flexível de HP-hMG será iniciada para melhorar o desenvolvimento folicular, em uma primeira dose diária de HP-hMG às 20h. O sujeito retornará para uma ultrassonografia pélvica e um exame de sangue (FSH, LH, E2, progesterona) após dois dias de estimulação HP hMG.
  • Segunda visita clínica no dia 6 (após 2 dias de tratamento com HP-hMG):

    • Se a ultrassonografia mostrar a presença de um único folículo dominante maior que 12 mm com os demais folículos todos menores que 10 mm, a coleta de ovócitos (SO) será agendada dois dias depois, entre 8h e 9h. É importante manter o OR 42 - 46 horas após a última injeção de HP-hMG como um tempo fixo. Se a ultrassonografia mostrar um diâmetro folicular máximo inferior a 8 mm, uma injeção final de HP-hMG será administrada às 14h. e a coleta de ovócitos (SO) será agendada dois dias depois, entre 8:00 e 9:00 h. É importante manter o OR 42 - 46 horas após a última injeção de HP-hMG como um tempo fixo.
    • Para pacientes com sangramento OCP: Se a ultrassonografia mostrar um diâmetro folicular máximo de aprox. 9 mm, uma injeção final de HP-hMG será administrada às 14h. e a coleta de oócitos (SO) será agendada dois dias depois, entre 8:00 e 9:00 h (sob anestesia geral - o horário exato da SO deve ser discutido com enfermeiras operacionais e anestesista). É importante manter o tempo de OR constante em 42 -46 horas após a última injeção de HP-hMG.
  • Terceira consulta - Recuperação de ovócitos: A captação de ovócitos (SO) será agendada entre 8:00 e 10:00 h (sob anestesia geral). No dia da sala de cirurgia:

    • Uma ultrassonografia de ambos os ovários e do revestimento endometrial é registrada.
    • Uma amostra de sangue será obtida para perfilação hormonal (LH, FSH, E2, progesterona).
  • Todos os complexos cumulus-oócitos (COC) retirados do paciente são cultivados em meio CAPA por 24 horas.
  • Após o cultivo CAPA, metade dos oócitos será dividida aleatoriamente (50/50) para os dois meios de maturação.

    • Grupo 1: Meio Medicult IVM + AREG+FSH+HSA+Insulina+Estradiol (grupo AREG-TRIGGER)
    • Grupo 2: Meio Medicult IVM + FSH+GH+hCG+HSA (grupo CONTROL-TRIGGER) sem adição de AREG
  • Maturação oocitária in vitro:

    • Avalie e registre COCs para massa cumulus (CM) e contato cumulus entre oócito e células cumulus. Cada vez tire fotos. Descarte os oócitos totalmente desnudos e degenerados.
    • Transfira metade dos COCs (5-10 de cada vez) do prato de cultura Capacitation para o "prato de lavagem" contendo "Maturation Medium 1 (meio AREG-TRIGGER)" usando uma micropipeta Eppendorf e lave-os bem (carregue as pontas das pipetas com 5µl, máx. 10µl). Em seguida, transfira os COCs para a "placa IVM" com "meio de maturação 1 (meio AREG-TRIGGER)".
    • Transfira a segunda metade dos COCs do prato de cultura de Capacitação para o "prato de lavagem" contendo "Meio de maturação 2 (meio CONTROL-TRIGGER)" e lave-os bem (carregue as pontas das pipetas com 5µl, máx. 10µl). Em seguida, transfira COCs para o "prato IVM" com "meio de maturação 2 (meio CONTROL-TRIGGER)".
    • Mantenha COCs em grupos de ~10.
    • Rotule a placa adequadamente e cultive os COCs por 30 a 32 horas em uma incubadora.
  • A avaliação da maturação (MII, GVBD, GV) será feita às 30 horas. Oócitos que sofreram GVBD, mas sem PB claro, serão avaliados em 32 horas. A inseminação será realizada por meio de injeção intracitoplasmática de espermatozoides (3-4 horas após a coleta do oócito ou verificação da maturação); apenas ovócitos maduros serão inseminados.
  • A verificação da fertilização será realizada sob um microscópio invertido 16-18 horas após a inseminação. A avaliação do embrião será realizada 68 ±1 horas após a fertilização usando o consenso de Istambul. Protocolo padrão de vitrificação de embriões usado. Os embriões serão vitrificados conforme protocolo de estimulação obtido (grupo 1 AREG-TRIGGER ou grupo 2 - CONTROL-TRIGGER).
  • Transferência de embriões congelados: A paciente será randomizada para receber embriões aleatoriamente de AREG-TRIGGER ou CONTROL-TRIGGER. Quando nenhum embrião do grupo randomizado estava disponível, o(s) embrião(es) do outro grupo foram transferidos.
  • O primeiro teste de gravidez foi realizado 14 dias após a transferência do embrião; um teste de gravidez positivo foi definido como beta hCG sérico > 5 mIU/mL
  • Gravidez clínica foi definida como pelo menos um saco gestacional na ultrassonografia na 7ª semana de gestação com a detecção da atividade do batimento cardíaco.
  • Gravidez em andamento foi definida como gravidez com frequência cardíaca detectável em ≥12 semanas de gestação após a conclusão da primeira transferência.
  • Nascido vivo foi definido como o nascimento de pelo menos um recém-nascido após 24 semanas de gestação exibindo qualquer sinal de vida (gêmeos eram uma única contagem).
  • Após um primeiro ciclo IVM sem sucesso: Os dados e resultados clínicos e embriológicos relacionados ao primeiro ciclo IVM (ciclos cumulativos de embriões frescos e congelados) serão discutidos, para estabelecer uma abordagem mais personalizada para um eventual segundo ciclo IVM. A abordagem personalizada para o paciente no segundo ciclo IVM pode consistir na modificação do gerenciamento da fase folicular.

Tipo de estudo

Intervencional

Inscrição (Real)

30

Estágio

  • Não aplicável

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Locais de estudo

      • Ho Chi Minh City, Vietnã
        • My Duc Hospital

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

18 anos a 37 anos (ADULTO)

Aceita Voluntários Saudáveis

Não

Gêneros Elegíveis para o Estudo

Fêmea

Descrição

Critério de inclusão:

  • Com morfologia ovariana policística: pelo menos 24 folículos em ambos os ovários e/ou volume ovariano aumentado (>10ml) (é suficiente que 1 ovário se enquadre nestes critérios)
  • Passando por ≤ 2 tentativas anteriores de IVM ou FIV
  • Concordar em ter ≤ 2 embriões transferidos

Critério de exclusão:

  • Endometriose de alto grau
  • Doação de ovócitos e ciclos de diagnóstico genético pré-implantação
  • Casos com qualidade de esperma extremamente pobre.

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

  • Finalidade Principal: TRATAMENTO
  • Alocação: NON_RANDOMIZED
  • Modelo Intervencional: PARALELO
  • Mascaramento: NENHUM

Armas e Intervenções

Grupo de Participantes / Braço
Intervenção / Tratamento
ACTIVE_COMPARATOR: AREG-TRIGGER

Por caixa (6mL) 5940 µL "Meio Basal"

  • 60 µL "IVM MIX" Não é necessário filtrar o meio.

Oócitos em meio AREG-TRIGGER serão maturados em meio AREG + FSH + HSA + Insulina + Estradiol.

Por caixa (6mL) 5940 µL "Meio Basal"

  • 60 µL "IVM MIX" Não é necessário filtrar o meio.
Outros nomes:
  • Meio IVM de Capacitação
ACTIVE_COMPARATOR: CONTROLE-GATILHO
Por caso (5 mL) 4,3 ml IVM Medicult Medium (frasco 2) 0,5 ml HSA (da solução padrão a 10%) 50µl FSH (do estoque 7,5 UI/ml) 5µl hCG (do estoque 100 UI/ml) 75 µl GH (do estoque estoque 0,66mg/ml)

Oócitos em meio CONTROL-TRIGGER serão maturados em meio FSH + hCG + GH + HSA.

Por caso (5 mL) 4,3 ml IVM Medicult Medium (frasco 2) 0,5 ml HSA (da solução padrão a 10%) 50µl FSH (do estoque 7,5 UI/ml) 5µl hCG (do estoque 100 UI/ml) 75 µl GH (do estoque estoque 0,66mg/ml)

Outros nomes:
  • Meio de Controle CAPA

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Eficiência da maturação meiótica
Prazo: Dois dias após a coleta dos ovócitos
Porcentagem de PB, GVBD, GV pelos dois tipos de gatilho. O oócito PB (ou MII) exibe o primeiro PB no PVS. Os oócitos GVBD não têm GV nem PBI visíveis. O oócito GV apresenta um núcleo intracitoplasmático denominado 'vesícula germinativa'.
Dois dias após a coleta dos ovócitos
Número de embriões de 3º dia transferíveis
Prazo: Cinco dias após a coleta dos ovócitos
Número de embriões de dia 3 transferíveis obtidos pelos dois tipos de gatilho meiótico
Cinco dias após a coleta dos ovócitos

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Taxa de gravidez em curso
Prazo: No mínimo 12 semanas desde o início do último ciclo menstrual (cada ciclo tem 4 semanas) até o momento do parto
Gravidez com frequência cardíaca detectável na 12ª semana de gestação até o momento do parto
No mínimo 12 semanas desde o início do último ciclo menstrual (cada ciclo tem 4 semanas) até o momento do parto
Taxa de nascidos vivos
Prazo: Pelo menos 24 semanas de gestação até o momento do parto
Nascido vivo é definido como o nascimento de pelo menos um recém-nascido após 24 semanas de gestação que exiba qualquer sinal de vida (sendo gêmeo será considerado único). Para o momento em que isso ocorre, a gravidez em andamento será usada, ou seja, a gravidez em andamento com 12 semanas será usada nos cálculos, condicionada ao fato de que essa gravidez em andamento resulta em nascido vivo.
Pelo menos 24 semanas de gestação até o momento do parto
Análise genética e epigenética do sangue do cordão umbilical de recém-nascidos (Será feito em um estudo separado)
Prazo: 1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)
O material do recém-nascido (sangue do cordão umbilical) será coletado para análise genética (cariótipo) e epigenética.
1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)
Análise genética e epigenética de células de esfregaços bucais de recém-nascidos (Será feito em um estudo separado)
Prazo: 1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)
O material do recém-nascido (células de esfregaços bucais) será coletado para análise genética (cariotipagem) e epigenética.
1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)
Análise genética e epigenética da placenta de recém-nascidos (Será feito em um estudo separado)
Prazo: 1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)
O material do recém-nascido (placenta) será coletado para análise genética (cariotipagem) e epigenética.
1 dia (Antes do início da FIV/IVM) e 1 dia (no momento do parto)

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Patrocinador

Investigadores

  • Investigador principal: Tuong M Ho, MD,MCE, Hope Research Center

Publicações e links úteis

A pessoa responsável por inserir informações sobre o estudo fornece voluntariamente essas publicações. Estes podem ser sobre qualquer coisa relacionada ao estudo.

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (REAL)

17 de abril de 2019

Conclusão Primária (REAL)

12 de dezembro de 2019

Conclusão do estudo (REAL)

31 de janeiro de 2020

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

3 de abril de 2019

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

11 de abril de 2019

Primeira postagem (REAL)

16 de abril de 2019

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (REAL)

16 de junho de 2021

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

11 de junho de 2021

Última verificação

1 de junho de 2021

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Outros números de identificação do estudo

  • CS/BVMD/19/03

Plano para dados de participantes individuais (IPD)

Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?

NÃO

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

Ensaios clínicos em SOP

Ensaios clínicos em AREG-TRIGGER

3
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