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Culture d'embryons sous une concentration constante de 5 % par rapport à un gradient de 8 %, 5 %, 2 % d'oxygène

5 juin 2025 mis à jour par: Borut Kovačič, University Medical Centre Maribor

L'effet d'une concentration d'oxygène constante de 5 % par rapport à un gradient de 8 %, 5 %, 2 % sur le développement d'embryons humains frères et sœurs in vitro

Le but de cette étude est d'étudier le développement d'embryons humains in vitro sous deux concentrations d'oxygène différentes ; un 5% statique pendant les cinq jours de culture ou sous gradient d'oxygène, en commençant par 8% du jour-0 au jour-3, en continuant avec 5% au jour-3 et en suivant avec 2% d'oxygène à partir de la fin du jour- 3 à jour-5.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

Plusieurs études ont montré que les paramètres morphologiques embryonnaires s'amélioraient lorsque la concentration en oxygène dans la culture d'embryons était réduite de 20 % à 5 %. Les premiers embryons de mammifères se sont développés plus rapidement, avaient des cycles cellulaires plus courts, un taux de formation de blastocystes plus élevé et une meilleure intégrité de la masse cellulaire interne (ICM) par rapport aux embryons cultivés à une concentration d'oxygène de 20 %.

Des études récentes ont montré que la concentration d'oxygène dans l'appareil reproducteur féminin n'est pas statique. Dans les trompes de Fallope des mammifères supérieurs, elle est d'environ 8 %, alors que dans l'utérus, au moment de l'implantation de l'embryon, la concentration en oxygène est quasiment anoxique (2 %).

L'objectif de la technologie de reproduction assistée (ART) est d'imiter de telles conditions physiologiques qui reflètent mieux l'environnement in vivo dans l'appareil reproducteur humain.

Le but de cette étude est d'évaluer si le changement de 5% d'oxygène statique pendant cinq jours de culture d'embryons in vitro au gradient d'oxygène, en commençant par 8% du jour 0 au jour 3, en continuant avec 5% le jour 3 et ensuite avec 2% d'oxygène de la fin du jour 3 au jour 5, reflète mieux les conditions trouvées dans l'appareil reproducteur humain et améliore les caractéristiques de développement de l'embryon.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Réel)

44

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

      • Maribor, Slovénie, 2000
        • University Medical Centre Maribor

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

  • Adulte

Accepte les volontaires sains

Oui

La description

Critère d'intégration:

  • Age des femmes entre 18 et 35 ans.
  • Indice de masse corporelle (IMC) entre 18 et 30 kg/m².
  • Seuls les patients avec procédure ICSI (facteur masculin d'infertilité, à l'exclusion de l'azoospermie) et culture de blastocystes.
  • Patients de la première et de la deuxième tentative de cycle ICSI.
  • Cycles antagonistes de l'hormone de libération de l'hormone gonadotrophine (GnRH).

Critère d'exclusion:

  • Présence d'endométriose.
  • Intervention clinique antérieure sur les ovaires.
  • Maladies endocriniennes ou métaboliques connexes.
  • Présence d'un syndrome des ovaires polykystiques.

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Autre
  • Répartition: Randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation parallèle
  • Masquage: Seul

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: 8-5-2 % de concentration en gradient d'oxygène dans l'incubateur
Un gradient de concentration physiologique en oxygène dans l'incubateur (8-5-2% O2).
Après le prélèvement d'ovocytes et l'insémination, la moitié des embryons d'une patiente donnée seront répartis au hasard dans un incubateur réglé à un gradient de tension d'oxygène (8-5-2%). Les embryons resteront dans l'incubateur jusqu'à leurs évaluations de développement au jour 5.
Aucune intervention: Contrôle (pas d'intervention)
Conditions de culture arbitraires (statique 5% 02).

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Proportion d'ovocytes inséminés développés aux blastocystes morphologiquement optimaux le jour 5
Délai: Les embryons seront annotés le jour 5, l'insémination du poste (à 8h00).
La principale mesure des résultats sera la proportion d'ovocytes qui se développeront aux blastocystes du jour 5 morphologiquement optimaux, marqués 4-5AA selon les critères de Gardner. Selon le système de notation de Gardner, les paramètres de morphologie des blastocystes tels que le degré d'expansion des blastocoels (1-5), l'apparence morphologique de la masse cellulaire interne (ICM) (A, B, C) et la cohésivité du trophectoderme (TE) (A, B, C) seront mesurées.
Les embryons seront annotés le jour 5, l'insémination du poste (à 8h00).

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Les temps mesurés de l'insémination à différents stades embryonnaires atteignent
Délai: Les délais morphokinétiques ont été enregistrés en continu (toutes les 5 minutes) tout au long de la culture des embryons, jusqu'à 124 heures (jour 5) après l'insémination.

À l'aide d'un logiciel Time-lapse, les vidéos de développement d'embryons ont été examinées en faisant progresser manuellement les images caréties par image. Les délais morphokinétiques ont été enregistrés en continu (toutes les 5 minutes) tout au long de la culture des embryons, jusqu'à 124 heures (jour 5) après l'insémination. Les jalons de développement suivants ont été enregistrés pour chaque embryon utilisé cliniquement qui a atteint le stade blastocyste (cryoconservé ou transféré):

TPNA - Apparence de pronuclei individuel

T2 - Temps à la scène à 2 cellules

T3 - Temps à 3 cellules Stage

T4 - Temps à 4 cellules.

T5 - Temps à 5 cellules Stage

T6 - Temps à 6 cellules Stage

T7 - Temps à 7 cellules Stage

T8 - Temps à 8 cellules Stage

TSC - Première preuve de compactage

TM - Achèvement du processus de compactage (stade Morula)

TSB - Initiation de la blastulation

TB - Blastocyste complet (dernier cadre avant que Zona Pellucida ne commence à s'arrêter)

TEB - Initiation de l'expansion des blastocystes (premier cadre montrant une amincissement de la zona)

Les délais morphokinétiques ont été enregistrés en continu (toutes les 5 minutes) tout au long de la culture des embryons, jusqu'à 124 heures (jour 5) après l'insémination.
Blastocyste et masse intérieure de la masse des cellules (ICM) Mesure de surface le jour 5
Délai: Correction du temps (116 heures) après l'insémination
Les mesures de surface des blastocystes et de la masse des cellules intérieures (ICM) seront enregistrées sur des photos en accéléré à 116 heures après l'insémination. Les surfaces seront mesurées en micromètres carrés à l'aide de l'outil de mesure du logiciel Primo Vision. Une ellipse sera générée autour du bord extérieur du trophectoderme ou de la masse cellulaire intérieure. Ces mesures excluront la zona pellucida. Les mesures seront prises au plan de mise au point avec la plus grande surface.
Correction du temps (116 heures) après l'insémination
Nombre de cellules trophectodermes le jour 5
Délai: Correction du temps (116 heures) après l'insémination.
À 116 heures après l'insémination, le nombre de cellules troptodermes sera compté à l'aide de photos en accéléré. Les images seront axées sur le bord le plus externe du trophectoderme pour mieux déterminer les limites de chaque cellule individuelle.
Correction du temps (116 heures) après l'insémination.
Incidence des clivages d'embryons atypiques
Délai: En continu (une photo sera prise toutes les 5 minutes) pendant 5 jours de culture d'embryons.
Les vidéos en accéléré pour chaque embryon seront examinées pour les fonctionnalités de clivage atypique, telles que; Pseudofurrows, clivage direct, clivage inverse, multinucléation, division chaotique irrégulière, exclusion cellulaire et effondrement des blastocystes, en utilisant le logiciel Primo Vision en transmettant manuellement les images cadre par image. La fréquence des modèles de clivage anormales sera enregistrée.
En continu (une photo sera prise toutes les 5 minutes) pendant 5 jours de culture d'embryons.

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

1 janvier 2022

Achèvement primaire (Réel)

1 janvier 2023

Achèvement de l'étude (Réel)

1 janvier 2023

Dates d'inscription aux études

Première soumission

26 avril 2023

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

9 juin 2023

Première publication (Réel)

12 juin 2023

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

8 juin 2025

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

5 juin 2025

Dernière vérification

1 juin 2025

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Autres numéros d'identification d'étude

  • 0120-405/2021/4
  • P3-0327 (Autre subvention/numéro de financement: Slovenian Research Agency)

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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