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Lebendgeburtenrate nach Spermienselektion mit dem ZyMōt Multi (850µL)-Gerät zur intrauterinen Insemination (FERTINSEM)

29. Januar 2024 aktualisiert von: Universitair Ziekenhuis Brussel

Bewertung der Lebendgeburtenrate nach Spermienauswahl mithilfe der Mikrofluidiktechnologie (ZyMōt Multi (850 µL) Spermientrenngerät) für die intrauterine Insemination.

In dieser randomisierten Kontrollstudie mit einem einzigen Zentrum sollen zwei Methoden der Spermienvorbereitung für Paare verglichen werden, die für das Verfahren der intrauterinen Insemination (IUI) überwiesen werden. Paare werden nach dem Zufallsprinzip einer der beiden Spermienauswahlmethoden zugeteilt: Dichtegradientenzentrifugation (DGC, Standard) oder ZyMōt Multi (850 µL) Gerätegruppe (Behandlung). In der Studie wird die Lebendgeburtenrate (Anzahl der Lebendgeburten pro Anzahl der IUI-Eingriffe) zwischen der Behandlungs- und der Standardgruppe verglichen.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Die intrauterine Insemination ist eine häufig verwendete Methode zur medizinisch unterstützten Fortpflanzung bei Patienten mit leichter männlicher Unfruchtbarkeit, Anovulation, Endometriose und ungeklärter Unfruchtbarkeit. Auch bei lesbischen Paaren oder alleinstehenden Frauen ist es das Verfahren der Wahl, bei dem Spendersamen zum Einsatz kommen.

Beim IUI-Verfahren wird die Spermiensuspension mit einem Inseminationskatheter, der 0,4 ml Spermien enthält, durch den Gebärmutterhalskanal in die Gebärmutter eingeführt. Bevor Sperma bei der IUI verwendet werden kann, muss es zunächst verarbeitet werden. Ziel der Samenvorbereitung ist die Auswahl der besten Spermienpopulation (hochbewegliche, morphologisch normale Spermien mit minimaler DNA-Schädigung) mit dem höchsten Befruchtungspotenzial.

Eine der am häufigsten verwendeten Techniken zur Spermienvorbereitung ist die DGC. Diese Technik ermöglicht die Trennung von Spermien anhand ihrer Dichte. Morphologisch normale und abnormale Spermien haben unterschiedliche Dichten. Ein reifes, morphologisch normales Spermatozoon hat eine etwas höhere Dichte, während ein unreifes und morphologisch abnormales Spermatozoon eine geringere Dichte aufweist. Bei diesem Verfahren wird die rohe Samenprobe auf zwei Gradienten gegeben: eine untere Phase (80 %) und eine obere Phase (40 %), gefolgt von einer Zentrifugation. Die Zusammensetzung der Gradienten umfasst eine kolloidale Suspension von Siliciumdioxidpartikeln. Am Ende der Zentrifugation befindet sich jedes Spermatozoen auf dem seiner Dichte entsprechenden Gradientenniveau. Die hoch beweglichen, morphologisch normalen, lebensfähigen Spermien bilden ein Pellet am Boden des Röhrchens. Dieses Verfahren ist relativ einfach durchzuführen, es wird jedoch davon ausgegangen, dass sowohl die Zentrifugationsschritte als auch die Silicapartikel einen negativen Einfluss auf die DNA-Integrität haben.

Kürzlich wurde die Mikrofluidik-Technologie als Alternative zu den herkömmlichen Techniken zur Spermiensortierung eingeführt. Da für dieses Verfahren keine Samenaufbereitung erforderlich ist, verkürzt es die Vorbereitungszeit der Spermien und eliminiert Verfahren, die die DNA der Spermien schädigen (z. B. durch Zentrifugation). Bei dieser Technologie handelt es sich um eine chemiefreie Methode zur Sortierung gesunder normaler Spermien mithilfe eines sterilen Einweg-Spermientrenngeräts ZyMōt Multi (850 µL). Mit diesem Gerät ausgewählte Spermien zeigten im Vergleich zum DGC-Verfahren eine bessere Beweglichkeit und weniger DNA-Schäden. In jüngerer Zeit wurde berichtet, dass die Wirksamkeit dieses Geräts im Vergleich zu DGC in IUI-Zyklen die Rate laufender Schwangerschaften deutlich steigert. Es fehlen jedoch große, korrekte Studien, die die Lebendgeburtenrate untersuchen.

Ziel der vorliegenden Studie ist es festzustellen, ob die Verwendung des ZyMōt Multi (850 µL)-Geräts zur Spermienauswahl die Lebendgeburtenrate bei IUI-Patienten im Vergleich zum Standard-DGC-Verfahren verbessert. Paare, die sich einem IUI-Eingriff unterziehen, werden in die Studie einbezogen, wenn bei ihnen eine IUI mit frischem autologem Ejakulat geplant ist.

Patienten, die die Einschlusskriterien erfüllen, werden nach dem Zufallsprinzip einer der beiden Spermienauswahlmethoden zugeteilt: DGC (Standard) oder ZyMōt Multi (850 µL) Gerätegruppe (Behandlung). Die Randomisierung erfolgt anhand einer elektronisch generierten Liste. Die Teilnahme eines Patienten an der Studie ist auf 3 aufeinanderfolgende IUI-Versuche (innerhalb eines Zeitraums von 6 Monaten) beschränkt. Das gleiche Samenvorbereitungsprotokoll wie beim ersten IUI-Versuch [ZyMōt Multi (850 µL) oder DGC] wird in den nächsten 2 aufeinanderfolgenden IUIs verwendet. Nach dem IUI-Verfahren (wobei die Spermien mit einer der beiden Methoden ausgewählt werden) werden die Patientinnen auf Schwangerschaft, klinische Schwangerschaft und neonatales Ergebnis überwacht.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Geschätzt)

240

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studieren Sie die Kontaktsicherung

Studienorte

      • Brussels, Belgien, 1090
        • Rekrutierung
        • UZ Brussel CRG
        • Kontakt:
          • Ileana G Mateizel, PhD

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Erwachsene

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Ja

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • Frisches autologes Ejakulat
  • Alter der Hündin: <37 zu Beginn der ersten Besamung
  • 1. IUI überhaupt hier, maximal 3 aufeinanderfolgende IUIs während maximal 6 Monaten
  • BMI <35
  • Alle natürlichen Zyklen, Ovulationsinduktion erlaubt
  • Vorhandensein von 1 oder 2 Follikeln beim letzten Ultraschall
  • Regelmäßige Menstruation (26–35 Tage)
  • >1 Million Gesamtzahl der progressiven beweglichen Spermien (TPMC) nach vorheriger routinemäßiger Kapazitation mit DGC
  • Vorhandensein von mindestens 1 potenten Röhrchen nach Hyfosy

Ausschlusskriterien:

  • Vorhandensein einer intrakavitären Pathologie im Ultraschall
  • Hinweise auf eine fortgeschrittene Endometriose (Grad 3 und 4)

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Behandlung
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Vervierfachen

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Aktiver Komparator: Dichtegradientenzentrifugation (DGC)
Bei diesem Verfahren wird die rohe Samenprobe auf zwei Gradienten gegeben: eine untere Phase (80 %) und eine obere Phase (40 %), gefolgt von einer Zentrifugation. Die Zusammensetzung der Gradienten umfasst eine kolloidale Suspension von Siliciumdioxidpartikeln. Am Ende der Zentrifugation befindet sich jedes Spermatozoen auf dem seiner Dichte entsprechenden Gradientenniveau. Die hoch beweglichen, morphologisch normalen, lebensfähigen Spermien bilden ein Pellet am Boden des Röhrchens.

Die Gradientensäulen werden vorbereitet, indem 1 ml 80 %-Gradientenmedium in ein Zentrifugenröhrchen gegeben und zusätzlich 1 ml 40 %-Gradientenmedium darüber geschichtet wird.

Die rohe Samenprobe wird auf den Gradienten (1 ml Samen/Gradientenröhrchen) gegeben und 20 Minuten lang bei 300 xg zentrifugiert. Das Spermienpellet wird gesammelt und zweimal 5 Minuten lang bei 800 x g in Sage Quinn's AdvantageTM Medium mit Hepes + 5 % HSA-Lösung gewaschen.

Das resultierende Pellet wird in der Waschlösung in einem Volumen resuspendiert, das mindestens 1x106 vorwärtsbewegliche Spermien in 400 µl liefert, da diese Menge für das IUI-Verfahren erforderlich ist.

Experimental: ZyMōt Multi (850µL)
ZyMōt Multi (850 µL) ist ein strömungsfreies Einweggerät mit zwei Kammern. Die erste Kammer enthält einen Probeneinlass und einen Flüssigkeitskanal, der durch eine mikroporöse 8-μm-Membran von der zweiten Sammelkammer getrennt ist. Die Kanalabmessungen und die Membranporosität sind darauf ausgelegt, die Sortierung und Sammlung der beweglichsten Spermien zu optimieren. Die Sortierung erfolgt durch den Durchgang der Spermien durch die Mikroporen der Membran. Dieses Verfahren erfordert keine vorherige Samenaufbereitung, alle Zentrifugationsschritte entfallen.
Mit Hilfe einer sterilen Insulinspritze wird eine Menge von 850 µl unbehandelter Samenprobe in die Einlasskammer geladen. Ein Volumen von 750 µl Sage Quinn's AdvantageTM Medium mit Hepes + 5 % HSA-Lösungsmedium wird auf die Membran (Auslasskammer) gegeben. Nach 30-minütiger Inkubation in einem befeuchteten Inkubator (37 °C) werden 500 µl Medium, das die ausgewählten Spermien enthält, von der Oberseite der Membran (Entnahmekammer) entnommen. Für das IUI-Verfahren ist eine Menge von 400 µl erforderlich.
Andere Namen:
  • FERTILE Plus® Gerät (KOEK EU GmbH, Biotechnologie)

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Kumulative Lebendgeburtenrate nach 3 aufeinanderfolgenden IUIs
Zeitfenster: 9 Monate nach IUI
Anzahl der Lebendgeburten pro Anzahl der Besamungen
9 Monate nach IUI

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Schwangerschaftsrate
Zeitfenster: 14 Tage nach IUI
Anzahl der Schwangerschaften (positives hCG) pro Anzahl der Befruchtungen
14 Tage nach IUI
Fehlgeburtenrate
Zeitfenster: 12 Wochen nach IUI
Anzahl der Fehlgeburten pro Anzahl der Befruchtungen
12 Wochen nach IUI

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Shari Mackens, MD, PhD, Universitair Ziekenhuis Brussel

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

10. Januar 2024

Primärer Abschluss (Geschätzt)

1. Dezember 2026

Studienabschluss (Geschätzt)

1. Dezember 2027

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

16. November 2023

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

16. November 2023

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

22. November 2023

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

30. Januar 2024

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

29. Januar 2024

Zuletzt verifiziert

1. Oktober 2023

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • EC-2023-257

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Beschreibung des IPD-Plans

Die Ergebnisse der Studie werden nach Einreichung in peer-reviewten wissenschaftlichen Fachzeitschriften öffentlich verbreitet.

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur Dichtegradientenzentrifugation

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