- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06144268
Lebendgeburtenrate nach Spermienselektion mit dem ZyMōt Multi (850µL)-Gerät zur intrauterinen Insemination (FERTINSEM)
Bewertung der Lebendgeburtenrate nach Spermienauswahl mithilfe der Mikrofluidiktechnologie (ZyMōt Multi (850 µL) Spermientrenngerät) für die intrauterine Insemination.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Die intrauterine Insemination ist eine häufig verwendete Methode zur medizinisch unterstützten Fortpflanzung bei Patienten mit leichter männlicher Unfruchtbarkeit, Anovulation, Endometriose und ungeklärter Unfruchtbarkeit. Auch bei lesbischen Paaren oder alleinstehenden Frauen ist es das Verfahren der Wahl, bei dem Spendersamen zum Einsatz kommen.
Beim IUI-Verfahren wird die Spermiensuspension mit einem Inseminationskatheter, der 0,4 ml Spermien enthält, durch den Gebärmutterhalskanal in die Gebärmutter eingeführt. Bevor Sperma bei der IUI verwendet werden kann, muss es zunächst verarbeitet werden. Ziel der Samenvorbereitung ist die Auswahl der besten Spermienpopulation (hochbewegliche, morphologisch normale Spermien mit minimaler DNA-Schädigung) mit dem höchsten Befruchtungspotenzial.
Eine der am häufigsten verwendeten Techniken zur Spermienvorbereitung ist die DGC. Diese Technik ermöglicht die Trennung von Spermien anhand ihrer Dichte. Morphologisch normale und abnormale Spermien haben unterschiedliche Dichten. Ein reifes, morphologisch normales Spermatozoon hat eine etwas höhere Dichte, während ein unreifes und morphologisch abnormales Spermatozoon eine geringere Dichte aufweist. Bei diesem Verfahren wird die rohe Samenprobe auf zwei Gradienten gegeben: eine untere Phase (80 %) und eine obere Phase (40 %), gefolgt von einer Zentrifugation. Die Zusammensetzung der Gradienten umfasst eine kolloidale Suspension von Siliciumdioxidpartikeln. Am Ende der Zentrifugation befindet sich jedes Spermatozoen auf dem seiner Dichte entsprechenden Gradientenniveau. Die hoch beweglichen, morphologisch normalen, lebensfähigen Spermien bilden ein Pellet am Boden des Röhrchens. Dieses Verfahren ist relativ einfach durchzuführen, es wird jedoch davon ausgegangen, dass sowohl die Zentrifugationsschritte als auch die Silicapartikel einen negativen Einfluss auf die DNA-Integrität haben.
Kürzlich wurde die Mikrofluidik-Technologie als Alternative zu den herkömmlichen Techniken zur Spermiensortierung eingeführt. Da für dieses Verfahren keine Samenaufbereitung erforderlich ist, verkürzt es die Vorbereitungszeit der Spermien und eliminiert Verfahren, die die DNA der Spermien schädigen (z. B. durch Zentrifugation). Bei dieser Technologie handelt es sich um eine chemiefreie Methode zur Sortierung gesunder normaler Spermien mithilfe eines sterilen Einweg-Spermientrenngeräts ZyMōt Multi (850 µL). Mit diesem Gerät ausgewählte Spermien zeigten im Vergleich zum DGC-Verfahren eine bessere Beweglichkeit und weniger DNA-Schäden. In jüngerer Zeit wurde berichtet, dass die Wirksamkeit dieses Geräts im Vergleich zu DGC in IUI-Zyklen die Rate laufender Schwangerschaften deutlich steigert. Es fehlen jedoch große, korrekte Studien, die die Lebendgeburtenrate untersuchen.
Ziel der vorliegenden Studie ist es festzustellen, ob die Verwendung des ZyMōt Multi (850 µL)-Geräts zur Spermienauswahl die Lebendgeburtenrate bei IUI-Patienten im Vergleich zum Standard-DGC-Verfahren verbessert. Paare, die sich einem IUI-Eingriff unterziehen, werden in die Studie einbezogen, wenn bei ihnen eine IUI mit frischem autologem Ejakulat geplant ist.
Patienten, die die Einschlusskriterien erfüllen, werden nach dem Zufallsprinzip einer der beiden Spermienauswahlmethoden zugeteilt: DGC (Standard) oder ZyMōt Multi (850 µL) Gerätegruppe (Behandlung). Die Randomisierung erfolgt anhand einer elektronisch generierten Liste. Die Teilnahme eines Patienten an der Studie ist auf 3 aufeinanderfolgende IUI-Versuche (innerhalb eines Zeitraums von 6 Monaten) beschränkt. Das gleiche Samenvorbereitungsprotokoll wie beim ersten IUI-Versuch [ZyMōt Multi (850 µL) oder DGC] wird in den nächsten 2 aufeinanderfolgenden IUIs verwendet. Nach dem IUI-Verfahren (wobei die Spermien mit einer der beiden Methoden ausgewählt werden) werden die Patientinnen auf Schwangerschaft, klinische Schwangerschaft und neonatales Ergebnis überwacht.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Elsie Nulens
- Telefonnummer: 0032 2 4742676
- E-Mail: elsie.nulens@uzbrussel.be
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Ileana Mateizel, PhD
- Telefonnummer: 0032 24749119
- E-Mail: ileana.mateizel@uzbrussel.be
Studienorte
-
-
-
Brussels, Belgien, 1090
- Rekrutierung
- UZ Brussel CRG
-
Kontakt:
- Ileana G Mateizel, PhD
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Frisches autologes Ejakulat
- Alter der Hündin: <37 zu Beginn der ersten Besamung
- 1. IUI überhaupt hier, maximal 3 aufeinanderfolgende IUIs während maximal 6 Monaten
- BMI <35
- Alle natürlichen Zyklen, Ovulationsinduktion erlaubt
- Vorhandensein von 1 oder 2 Follikeln beim letzten Ultraschall
- Regelmäßige Menstruation (26–35 Tage)
- >1 Million Gesamtzahl der progressiven beweglichen Spermien (TPMC) nach vorheriger routinemäßiger Kapazitation mit DGC
- Vorhandensein von mindestens 1 potenten Röhrchen nach Hyfosy
Ausschlusskriterien:
- Vorhandensein einer intrakavitären Pathologie im Ultraschall
- Hinweise auf eine fortgeschrittene Endometriose (Grad 3 und 4)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Vervierfachen
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Aktiver Komparator: Dichtegradientenzentrifugation (DGC)
Bei diesem Verfahren wird die rohe Samenprobe auf zwei Gradienten gegeben: eine untere Phase (80 %) und eine obere Phase (40 %), gefolgt von einer Zentrifugation.
Die Zusammensetzung der Gradienten umfasst eine kolloidale Suspension von Siliciumdioxidpartikeln.
Am Ende der Zentrifugation befindet sich jedes Spermatozoen auf dem seiner Dichte entsprechenden Gradientenniveau.
Die hoch beweglichen, morphologisch normalen, lebensfähigen Spermien bilden ein Pellet am Boden des Röhrchens.
|
Die Gradientensäulen werden vorbereitet, indem 1 ml 80 %-Gradientenmedium in ein Zentrifugenröhrchen gegeben und zusätzlich 1 ml 40 %-Gradientenmedium darüber geschichtet wird. Die rohe Samenprobe wird auf den Gradienten (1 ml Samen/Gradientenröhrchen) gegeben und 20 Minuten lang bei 300 xg zentrifugiert. Das Spermienpellet wird gesammelt und zweimal 5 Minuten lang bei 800 x g in Sage Quinn's AdvantageTM Medium mit Hepes + 5 % HSA-Lösung gewaschen. Das resultierende Pellet wird in der Waschlösung in einem Volumen resuspendiert, das mindestens 1x106 vorwärtsbewegliche Spermien in 400 µl liefert, da diese Menge für das IUI-Verfahren erforderlich ist. |
Experimental: ZyMōt Multi (850µL)
ZyMōt Multi (850 µL) ist ein strömungsfreies Einweggerät mit zwei Kammern.
Die erste Kammer enthält einen Probeneinlass und einen Flüssigkeitskanal, der durch eine mikroporöse 8-μm-Membran von der zweiten Sammelkammer getrennt ist.
Die Kanalabmessungen und die Membranporosität sind darauf ausgelegt, die Sortierung und Sammlung der beweglichsten Spermien zu optimieren.
Die Sortierung erfolgt durch den Durchgang der Spermien durch die Mikroporen der Membran.
Dieses Verfahren erfordert keine vorherige Samenaufbereitung, alle Zentrifugationsschritte entfallen.
|
Mit Hilfe einer sterilen Insulinspritze wird eine Menge von 850 µl unbehandelter Samenprobe in die Einlasskammer geladen.
Ein Volumen von 750 µl Sage Quinn's AdvantageTM Medium mit Hepes + 5 % HSA-Lösungsmedium wird auf die Membran (Auslasskammer) gegeben.
Nach 30-minütiger Inkubation in einem befeuchteten Inkubator (37 °C) werden 500 µl Medium, das die ausgewählten Spermien enthält, von der Oberseite der Membran (Entnahmekammer) entnommen.
Für das IUI-Verfahren ist eine Menge von 400 µl erforderlich.
Andere Namen:
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Kumulative Lebendgeburtenrate nach 3 aufeinanderfolgenden IUIs
Zeitfenster: 9 Monate nach IUI
|
Anzahl der Lebendgeburten pro Anzahl der Besamungen
|
9 Monate nach IUI
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Schwangerschaftsrate
Zeitfenster: 14 Tage nach IUI
|
Anzahl der Schwangerschaften (positives hCG) pro Anzahl der Befruchtungen
|
14 Tage nach IUI
|
Fehlgeburtenrate
Zeitfenster: 12 Wochen nach IUI
|
Anzahl der Fehlgeburten pro Anzahl der Befruchtungen
|
12 Wochen nach IUI
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Shari Mackens, MD, PhD, Universitair Ziekenhuis Brussel
Publikationen und hilfreiche Links
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Schlüsselwörter
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- EC-2023-257
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
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Beschreibung des IPD-Plans
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
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