- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT03416400
Confronto dell'effetto della vetrificazione prima o dopo la maturazione in vitro
Caratterizzazione di un metodo di conservazione della fertilità per i pazienti con diagnosi di cancro
La crioconservazione di ovociti umani viene abitualmente utilizzata per preservare la fertilità delle donne che saranno esposte all'effetto gonadotossico del trattamento del cancro. Dopo la stimolazione ovarica, gli ovociti maturi vengono vetrificati. Tuttavia, questa strategia non può sempre essere utilizzata, in particolare per il cancro sensibile agli ormoni o quando la stimolazione ovarica non è possibile. In questi casi si potrebbe prendere in considerazione un approccio che includa ovociti immaturi e maturazione in vitro (IVM). Mentre alcune analisi qualitative degli ovociti vitrificati prima o dopo l'IVM suggeriscono che la vetrificazione dovrebbe essere eseguita dopo l'IVM, si sa poco sugli effetti della vetrificazione sul citoscheletro di actina e tubulina e sulla cinetica della maturazione degli ovociti umani.
Per rispondere a questa domanda, Investigator ha eseguito analisi quantitative confrontando gli ovociti maturi di tre diversi gruppi: vitrificati prima dell'IVM o dopo l'IVM e ovociti non vetrificati. Come controllo sono stati usati ovociti maturi non vetrificati. Diversi parametri sono stati analizzati durante la maturazione e negli ovociti maturi.
Panoramica dello studio
Stato
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Tipo di studio
Iscrizione (Anticipato)
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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-
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Clermont-Ferrand, Francia, 63003
- Reclutamento
- Chu Clermont-Ferrand
-
Sub-investigatore:
- Aïcha METCHAT
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- - Trattamento ICSI
- Ovociti immaturi
- < 37 anni
Criteri di esclusione:
- - Sindrome dell'ovaio polickistico
- Endometriosi
- Malattia ovulatoria
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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Ovociti immaturi vetrificati prima della maturazione in vitro
Gli ovociti immaturi sono stati vetrificati mediante vetrificazione a sistema chiuso.
Dopo il riscaldamento, sono stati coltivati per 36 ore in terreno IVM e fissati per l'analisi cellulare
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Sono stati raccolti ovociti immaturi da pazienti (≤37 anni, senza endometriosi, sindrome policistica o altra malattia ovulatoria) sottoposte a ICSI.
Inoltre, in questo studio saranno inclusi ovociti immaturi raccolti da pazienti con diagnosi di cancro.
Gli ovociti sono stati maturati in vitro con terreno IVM e vetrificati in sistema chiuso (Vitrolife).
La cinetica della maturazione è stata analizzata mediante Primovision (Vitrolife) e actina, mentre l'organizzazione del fuso è stata studiata mediante microscopia, tecniche di immunocolorazione e analisi quantitativa.
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Ovociti immaturi coltivati in vitro prima della vetrificazione
Gli ovociti immaturi sono stati coltivati in vitro in terreno IVM per 36 ore.
Dopo IVM, sono stati vetrificati.
Dopo il riscaldamento, sono stati fissati per l'analisi cellulare.
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Sono stati raccolti ovociti immaturi da pazienti (≤37 anni, senza endometriosi, sindrome policistica o altra malattia ovulatoria) sottoposte a ICSI.
Inoltre, in questo studio saranno inclusi ovociti immaturi raccolti da pazienti con diagnosi di cancro.
Gli ovociti sono stati maturati in vitro con terreno IVM e vetrificati in sistema chiuso (Vitrolife).
La cinetica della maturazione è stata analizzata mediante Primovision (Vitrolife) e actina, mentre l'organizzazione del fuso è stata studiata mediante microscopia, tecniche di immunocolorazione e analisi quantitativa.
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Ovociti freschi
Gli ovociti immaturi sono stati coltivati in vitro in terreno IVM per 36 ore e successivamente fissati per l'analisi cellulare.
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Sono stati raccolti ovociti immaturi da pazienti (≤37 anni, senza endometriosi, sindrome policistica o altra malattia ovulatoria) sottoposte a ICSI.
Inoltre, in questo studio saranno inclusi ovociti immaturi raccolti da pazienti con diagnosi di cancro.
Gli ovociti sono stati maturati in vitro con terreno IVM e vetrificati in sistema chiuso (Vitrolife).
La cinetica della maturazione è stata analizzata mediante Primovision (Vitrolife) e actina, mentre l'organizzazione del fuso è stata studiata mediante microscopia, tecniche di immunocolorazione e analisi quantitativa.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Analisi della cinetica di maturazione degli ovociti vetrificati allo stadio di Profase-I rispetto agli ovociti freschi
Lasso di tempo: al giorno 1
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Dopo il prelievo degli ovociti, gli ovociti immaturi saranno vetrificati (Rapid Vit Ovocyte®, Vitrolife) in un sistema chiuso (Rapid-I®, Vitrolife) e scongelati per la maturazione in vitro pochi giorni dopo.
Il processo meiotico sarà analizzato mediante tecnologia time lapse (Primovision®, Vitrolife).
Questo permetterà di segnare il tempo di maturazione dalla ripresa all'estrusione del corpo polare degli ovociti.
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al giorno 1
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Analisi del citoscheletro di actina e tubulina allo stadio di metafase II
Lasso di tempo: al giorno 1
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Gli ovociti in fase metafase-II di entrambi i protocolli saranno utilizzati per esperimenti di immunofluorescenza per colorare actina, tubulina e cromosomi.
Gli ovociti saranno sottoposti a imaging utilizzando un microscopio confocale per eseguire imaging ad alta risoluzione e analisi quantitativa dell'immagine.
La lunghezza, la posizione e l'orientamento del secondo fuso meiotico saranno quantificati.
La rete di actina ei cromosomi saranno analizzati quantitativamente.
Tutte le misurazioni saranno confrontate con ovociti freschi in Metafase II usati come gruppo di controllo.
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al giorno 1
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Analisi della segregazione cromosomica durante la prima divisione meiotica.
Lasso di tempo: al giorno 1
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La prima divisione asimmetrica è altamente soggetta a errori.
Per verificare se i cromosomi sono segregati accuratamente dopo la vitrificazione, eseguiremo l'ibridazione in situ fluorescente per dipingere ciascun cromosoma dopo la diffusione del cromosoma dagli ovociti della fase di metafase-II da entrambe le condizioni
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al giorno 1
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Analisi della distribuzione dei granuli corticali negli ovociti di stadio Metafase-II.
Lasso di tempo: al giorno 1
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Verrà utilizzata una colorazione con lectina per marcare i granuli corticali degli ovociti maturati da entrambi i protocolli per osservare se la vitrificazione modifica la loro distribuzione spaziale.
Per analizzare questa colorazione, utilizzeremo il metodo di analisi quantitativa dell'immagine.
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al giorno 1
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Analisi delle stabilità del fattore materno.
Lasso di tempo: al giorno 1
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I fattori materni immagazzinati nel citoplasma dell'ovocita durante l'oogenesi come proteine e trascritti sono essenziali per lo sviluppo embrionale precoce.
Per sapere se lo stock di fattori materni è diminuito dalla procedura di vitrificazione, eseguiremo la Reverse Transcription combinata con Real Time PCR per quantificare le quantità di trascritto dei geni candidati selezionati dai database di ovociti umani.
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al giorno 1
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Collaboratori e investigatori
Collaboratori
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Effettivo)
Completamento dello studio (Anticipato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Altri numeri di identificazione dello studio
- CHU-372
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
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Prove cliniche su Ovociti vetrificati allo stadio di profase-I
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