- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT03601286
Terapia genica lentivirale per immunodeficienza combinata grave legata all'X
Studio di fase I/II sul trasferimento genico lentivirale per SCID-X1 con busulfano mirato a basso dosaggio
La malattia da immunodeficienza combinata grave (SCID) è un gruppo eterogeneo di malattie ereditarie caratterizzate da una profonda riduzione o assenza della funzione dei linfociti T, con conseguente mancanza di immunità sia cellulare che umorale. SCID deriva da una varietà di difetti molecolari che influenzano lo sviluppo e la funzione dei linfociti. La forma più comune di SCID è una forma legata all'X (SCID-X1), che rappresenta il 30-50% di tutti i casi. La SCID-X1 è causata da difetti nella catena gamma del recettore comune delle citochine, originariamente identificata come componente del recettore dell'interleuchina-2 ad alta affinità (IL2RG).
Il trapianto allogenico di cellule staminali ematopoietiche (HSCT), che sostituisce il midollo osseo del paziente con quello di un donatore sano, è l'unico trattamento che ripristina definitivamente la normale funzione del midollo osseo. L'HSCT è la prima scelta di trattamento per i pazienti con segni di insufficienza del midollo osseo e un donatore correlato completamente compatibile. Tuttavia, i pazienti senza un donatore correlato completamente compatibile hanno esiti complessivi molto peggiori dall'HSCT.
Questo studio esaminerà se i pazienti con SCID-X1 senza un donatore correlato completamente compatibile possano trarre beneficio dalla terapia genica. Per fare ciò, i ricercatori propongono di eseguire uno studio clinico di fase I/II per valutare la sicurezza e l'efficacia (effetto) della terapia genica per i pazienti con SCID-X1 utilizzando un sistema di rilascio di lentivirus contenente il gene IL2RG. Fino a 5 pazienti SCID-X1 idonei saranno sottoposti a mobilizzazione e raccolta delle loro cellule precursori staminali ematopoietiche (HPSC). In laboratorio il lentivirus disabilitato verrà utilizzato per inserire un normale gene IL2RG umano nelle HPSC raccolte dal paziente. I pazienti riceveranno il condizionamento della chemioterapia prima dell'infusione cellulare, al fine di migliorare l'innesto. Le cellule staminali geneticamente corrette verranno quindi reinfuse nel paziente. I pazienti saranno seguiti per 2 anni. Questo studio determinerà se la terapia genica per SCID-X1 utilizzando un vettore lentivirale è sicura, fattibile ed efficace
Panoramica dello studio
Stato
Intervento / Trattamento
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Fase 1
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Claire Booth, Dr
- Numero di telefono: 0207 905 2198
- Email: c.booth@ucl.ac.uk
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Karen Oprych, Dr
- Email: k.gladwin@ucl.ac.uk
Luoghi di studio
-
-
Greater London
-
London, Greater London, Regno Unito, WC1N 3JH
- Reclutamento
- Great Ormond Street Hospital for Children NHS Foundation Trust
-
Contatto:
- Claire Booth, MBBS, MRCPCH, MSc, PhD
- Email: c.booth@ucl.ac.uk
-
Investigatore principale:
- Claire Booth, MBBS, MRCPCH, MSc, PhD
-
Contatto:
- Karen Oprych, PhD
- Email: k.gladwin@ucl.ac.uk
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Diagnosi di SCID-X1 basata su immunofenotipo e mancanza di funzione delle cellule T (proliferazione a PHA <10% del limite inferiore della norma per il laboratorio) E confermata da una mutazione in IL2RG
- Mancanza di un donatore HLA identico (A, B, C, DR, DQ).
- Età <5 anni
- Consenso informato firmato
- Documentazione della disponibilità al follow-up per 15 anni dopo l'infusione
- Se il paziente è stato precedentemente sottoposto a trapianto allogenico o terapia genica, deve essere documentata l'insufficienza dell'attecchimento di cellule T derivate da trapianto.
- Età di almeno 8 settimane al momento della somministrazione di busulfan
Criteri di esclusione:
Pazienti con un'infezione attiva resistente alla terapia. Le infezioni che sono note per essere altamente morbose nei pazienti con SCID saranno considerate attive e resistenti alla terapia se l'agente infettivo viene isolato ripetutamente nonostante un minimo di 2 settimane di terapia appropriata ed è associato a disfunzione organica significativa (incluse ma non limitate alle anomalie elencate sotto).
- Ventilazione meccanica inclusa la pressione positiva continua delle vie aeree
- Funzionalità epatica anomala definita da AST e ALT >10 volte il range superiore del normale OPPURE Bilirubina >2 mg/dL
- Frazione di accorciamento all'ecocardiogramma <25% o frazione di eiezione <50%
- Insufficienza renale definita come velocità di filtrazione glomerulare <30 ml/min/1,73 m2 o dipendenza dalla dialisi
- Disturbo convulsivo incontrollato
- Encefalopatia
- Coesistenza documentata di qualsiasi disturbo noto per influenzare la riparazione del DNA
- Diagnosi di malattia maligna attiva diversa dalla malattia linfoproliferativa associata a EBV
- Pazienti con evidenza di infezione da HIV-1
- Pregresso trapianto allogenico con chemioterapia citoriduttiva
- Anomalie congenite maggiori (pericolose per la vita). Esempi di "anomalie congenite gravi (pericolose per la vita)" includono, ma non sono limitati a: cardiopatia cianotica non riparata, ipoplasia polmonare, anencefalia o altre malformazioni maggiori del sistema nervoso centrale, altre gravi malformazioni non riparabili del tratto gastrointestinale o genito-urinario che compromettere significativamente la funzione degli organi.
- Altre condizioni che a giudizio del P.I. o Co-sperimentatori, controindicare la raccolta e/o l'infusione di cellule trasdotte o indicare l'incapacità del paziente di seguire il protocollo. Questi possono includere, ad esempio, l'impossibilità clinica di ricevere l'anestesia, il grave deterioramento delle condizioni cliniche del paziente dopo il prelievo del midollo osseo ma prima dell'infusione delle cellule trasdotte, o il rifiuto documentato o l'impossibilità della famiglia di tornare per le visite programmate. Potrebbero verificarsi altre rare circostanze impreviste che potrebbero comportare l'esclusione del paziente, come la perdita improvvisa della tutela legale.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: N / A
- Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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Sperimentale: Cellule CD34+ trasdotte dal vettore lentivirale
Coorte non randomizzata a braccio singolo composta da un massimo di 5 pazienti con immunodeficienza combinata grave legata all'X.
Le cellule CD34+ verranno raccolte tramite prelievo di midollo osseo o leucaferesi.
Le cellule raccolte verranno poi purificate, coltivate e trasdotte con il vettore lentivirale G2SCID.
Le cellule trasdotte verranno congelate.
Per l'infusione nel paziente è necessario un minimo di 2,5 x 106/kg di cellule CD34+ dopo la trasduzione con un'efficienza di trasduzione minima di 0,7 copie/cellula.
Il paziente riceverà un condizionamento non mieloablativo con busulfan per via endovenosa due o tre giorni prima dell'infusione cellulare.
Le cellule congelate verranno scongelate il giorno dell'infusione e le cellule somministrate secondo le procedure ospedaliere.
Il paziente rimarrà in ospedale fino alla copertura sufficiente del sistema immunitario del paziente
|
La terapia genica per l'immunodeficienza combinata grave legata all'X verrà eseguita introducendo una copia normale del gene IL2RG nelle cellule staminali emopoietiche (cellule CD34+) del midollo osseo del paziente utilizzando un tipo di sistema di rilascio genico (in questo studio chiamato vettore lentivirale).
Le cellule geneticamente corrette vengono quindi trapiantate nuovamente nel paziente.
Altri nomi:
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Misurare la sopravvivenza libera da eventi dopo 1 anno dal trasferimento genico
Lasso di tempo: 1 anno
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Sopravvivenza libera da eventi a 1 anno dopo l'infusione.
Gli eventi includeranno morte, infusione di prodotto di riserva non manipolato per fallimento del recupero emopoietico e trapianto allogenico eseguito per scarsa ricostituzione immunitaria
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1 anno
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Misurare la ricostituzione immunitaria delle cellule T: conta delle cellule T CD3+
Lasso di tempo: 1 anno
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Ricostituzione delle cellule T a 1 anno dall'infusione: conta delle cellule T CD3+ ≥300 cellule/microlitro nel sangue periferico
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1 anno
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Misurare la ricostituzione immunitaria delle cellule T; marcatura genica
Lasso di tempo: 1 anno
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Ricostituzione delle cellule T a 1 anno dall'infusione: marcatura genica ≥0,1 copie/cellula nelle cellule T CD3+ selezionate
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1 anno
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Misurare la sopravvivenza globale
Lasso di tempo: 2 anni
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Misurare la sopravvivenza globale a 2 anni dopo l'infusione
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2 anni
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Misura la sopravvivenza libera da eventi
Lasso di tempo: 2 anni
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Misurare la sopravvivenza libera da eventi a 2 anni dopo l'infusione
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2 anni
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Incidenza di eventi avversi correlati alla terapia genica
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Incidenza di eventi avversi correlati alla terapia genica
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Conteggio della conta assoluta dei linfociti determinata dalla ricostituzione completa di routine
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Enumerazione della conta assoluta dei linfociti determinata dalla conta ematica completa (CBC) di routine
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Recupero ematopoietico dopo ricevimento di busulfan
Lasso di tempo: fino a 6 settimane dopo l'infusione della terapia genica
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Il recupero ematopoietico è definito come una conta assoluta dei neutrofili superiore a 0,5 x 10^9 /l per tre giorni consecutivi, raggiunta entro 6 settimane dall'infusione.
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fino a 6 settimane dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare il numero assoluto di linfociti T, B e NK
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Numeri assoluti di linfociti T, B e NK
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Calcolare la percentuale di sottoinsiemi di cellule T naïve e di memoria
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Percentuale di sottoinsiemi di cellule T naïve e di memoria
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare i risultati di laboratorio correlati a un'efficace ricostituzione immunitaria
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Percentuale di sottoinsiemi di cellule B naïve e di memoria
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Determinare la libertà dalla sostituzione delle immunoglobuline per almeno 9 mesi
Lasso di tempo: 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Libertà dalla sostituzione delle immunoglobuline per almeno 9 mesi
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2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare la ricostituzione dei livelli sierici di immunoglobuline
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Livelli sierici di immunoglobuline
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare la proliferazione dei linfociti a fitoemoagglutinina determinata mediante ricostituzione dell'incorporazione di timidina titolata
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Proliferazione dei linfociti a fitoemoagglutinina determinata mediante incorporazione titolata di timidina
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare i titoli anticorpali antigene specifici per la ricostituzione del tossoide tetanico
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare i titoli anticorpali antigene specifici contro il tossoide tetanico
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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|
Misurare i cerchi di escissione del recettore delle cellule T (TREC)
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare i cerchi di escissione del recettore delle cellule T (TREC)
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare l'utilizzo della famiglia Vb del recettore delle cellule T
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
|
Misurare l'utilizzo della famiglia Vb del recettore delle cellule T
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Valutare l'efficacia della trasduzione/innesto di cellule staminali misurando la frequenza della marcatura genica nelle cellule del sangue periferico
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Marcatura genica in specifici lignaggi di cellule del sangue periferico.
Il DNA genomico isolato da ciascuna popolazione sarà analizzato per VCN mediante PCR quantitativa (qPCR).
I risultati saranno aggregati per determinare l'efficacia della marcatura genica nelle cellule del sangue periferico.
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Misurare la diversità clonale degli integrali vettoriali
Lasso di tempo: fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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La diversità clonale sarà quantificata e utilizzata per stimare il numero di cellule staminali emopoietiche trasdotte che si sono innestate nei soggetti.
Il numero di letture di sequenze e siti di integrazione univoci sarà valutato per quantificare la diversità dei cloni di popolazione, la distribuzione dei siti di integrazione e l'abbondanza relativa.
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fino a 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Altre misure di risultato
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Correlazione di potenziali biomarcatori di ricostituzione immunitaria umorale con libertà dalla sostituzione immunoglobulinica per via endovenosa e risposta anticorpale al tetano a 2 anni dopo l'infusione, tra cui: marcatura genica nelle cellule B e fenotipo delle cellule B.
Lasso di tempo: a 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Correlazione di potenziali biomarcatori di ricostituzione immunitaria umorale a 6 mesi, 1 anno, 2 anni dopo l'infusione con assenza di sostituzione immunoglobulinica per via endovenosa e risposta anticorpale al tetano a 2 anni dopo l'infusione, tra cui: marcatura genica nelle cellule B e fenotipo delle cellule B.
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a 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Correlazione delle misurazioni dell'area sotto la curva di busulfan prima dell'infusione con assenza di sostituzione immunoglobulinica per via endovenosa e risposta anticorpale al tetano a 2 anni dopo l'infusione e altri marcatori di ricostituzione immunitaria umorale
Lasso di tempo: 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Correlazione delle misurazioni dell'area sotto la curva di busulfan prima dell'infusione con assenza di sostituzione immunoglobulinica per via endovenosa e risposta anticorpale al tetano a 2 anni dopo l'infusione e altri marcatori di ricostituzione immunitaria umorale
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2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Evidenza della condivisione del sito di inserimento tra 2 o più linee a 1 anno e 2 anni dopo l'infusione
Lasso di tempo: 1 anno e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Evidenza della condivisione del sito di inserimento tra 2 o più linee a 1 anno e 2 anni dopo l'infusione
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1 anno e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Correlazione della marcatura genica e condivisione del sito di inserimento nelle cellule CD34+ espanse del sangue periferico con campioni di cellule mature del sangue periferico a 1 anno e 2 anni dopo l'infusione
Lasso di tempo: 1 anno e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Correlazione della marcatura genica e condivisione del sito di inserimento nelle cellule CD34+ espanse del sangue periferico con campioni di cellule mature del sangue periferico a 1 anno e 2 anni dopo l'infusione
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1 anno e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Descrizione del repertorio dei recettori delle cellule T e dei recettori delle cellule B prima e dopo l'infusione
Lasso di tempo: Pre-raccolta, 3 mesi, 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Descrizione del repertorio dei recettori delle cellule T e dei recettori delle cellule B prima e dopo l'infusione
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Pre-raccolta, 3 mesi, 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Descrizione della funzione e del fenotipo delle cellule NK prima e dopo l'infusione
Lasso di tempo: Pre-raccolta, 3 mesi, 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Descrizione della funzione e del fenotipo delle cellule NK prima e dopo l'infusione
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Pre-raccolta, 3 mesi, 6 mesi, 12 mesi e 2 anni dopo l'infusione della terapia genica
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Collaboratori e investigatori
Investigatori
- Investigatore principale: Claire Booth, Dr, UCL Great Ormond Street Institute of Child Health
- Investigatore principale: Adrian Thrasher, Prof, UCL Great Ormond Street Institute of Child Health
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
- Malattie metaboliche
- Malattie del sistema immunitario
- Infante, neonato, malattie
- Malattie genetiche, congenite
- Malattie genetiche, legate all'X
- Disturbi da carenza di riparazione del DNA
- Malattie da immunodeficienza primaria
- Sindromi da deficit immunologico
- Immunodeficienza combinata grave
- Malattie da immunodeficienza combinata legata all'X
Altri numeri di identificazione dello studio
- 16IC17
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
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