Esta página foi traduzida automaticamente e a precisão da tradução não é garantida. Por favor, consulte o versão em inglês para um texto fonte.

Terapia gênica lentiviral para imunodeficiência combinada grave ligada ao cromossomo X

Estudo de fase I/II da transferência de genes lentivirais para SCID-X1 com bussulfano direcionado de baixa dose

O distúrbio de imunodeficiência combinada grave (SCID) é um grupo heterogêneo de distúrbios hereditários caracterizados por uma profunda redução ou ausência da função dos linfócitos T, resultando na falta de imunidade celular e humoral. A SCID surge de uma variedade de defeitos moleculares que afetam o desenvolvimento e a função dos linfócitos. A forma mais comum de SCID é uma forma ligada ao X (SCID-X1), que representa 30-50% de todos os casos. A SCID-X1 é causada por defeitos na cadeia gama comum do receptor de citocinas, que foi originalmente identificada como um componente do receptor de interleucina-2 de alta afinidade (IL2RG).

O transplante alogênico de células-tronco hematopoiéticas (TCTH), que substitui a medula óssea do paciente pela de um doador saudável, é o único tratamento que restaura definitivamente a função normal da medula óssea. O TCTH é a primeira escolha de tratamento para pacientes com sinais de falência da medula óssea e um doador aparentado totalmente compatível. No entanto, pacientes sem um doador totalmente compatível apresentam resultados gerais muito piores do TCTH.

Este estudo investigará se pacientes com SCID-X1 sem um doador aparentado totalmente compatível podem se beneficiar da terapia genética. Para fazer isso, os pesquisadores propõem realizar um ensaio clínico de fase I/II para avaliar a segurança e eficácia (efeito) da terapia genética para pacientes com SCID-X1 usando um sistema de entrega de lentivírus contendo o gene IL2RG. Até 5 pacientes elegíveis com SCID-X1 serão submetidos à mobilização e colheita de suas células precursoras hematopoiéticas (HPSCs). No laboratório, o lentivírus desativado será usado para inserir um gene IL2RG humano normal nas HPSCs coletadas do paciente. Os pacientes receberão condicionamento quimioterápico antes da infusão celular, a fim de potencializar a enxertia. As células-tronco geneticamente corrigidas serão então reinfundidas no paciente. Os pacientes serão acompanhados por 2 anos. Este estudo determinará se a terapia genética para SCID-X1 usando um vetor lentiviral é segura, viável e eficaz

Visão geral do estudo

Tipo de estudo

Intervencional

Inscrição (Estimado)

5

Estágio

  • Fase 1

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Contato de estudo

  • Nome: Claire Booth, Dr
  • Número de telefone: 0207 905 2198
  • E-mail: c.booth@ucl.ac.uk

Estude backup de contato

Locais de estudo

    • Greater London
      • London, Greater London, Reino Unido, WC1N 3JH
        • Recrutamento
        • Great Ormond Street Hospital For Children NHS Foundation Trust
        • Contato:
        • Investigador principal:
          • Claire Booth, MBBS, MRCPCH, MSc, PhD
        • Contato:

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

1 mês a 5 anos (Filho)

Aceita Voluntários Saudáveis

Não

Descrição

Critério de inclusão:

  1. Diagnóstico de SCID-X1 com base no imunofenótipo e falta de função das células T (proliferação para PHA <10% do limite inferior do normal para o laboratório) E confirmado por uma mutação em IL2RG
  2. Falta de um doador aparentado HLA idêntico (A, B, C, DR, DQ)
  3. Idade <5 anos
  4. Consentimento informado assinado
  5. Documentação de vontade de acompanhamento por 15 anos após a infusão
  6. Se o paciente já foi submetido a transplante alogênico ou terapia genética, a insuficiência do enxerto de células T derivadas do enxerto deve ser documentada.
  7. Idade de pelo menos 8 semanas de idade no momento da administração de busulfan

Critério de exclusão:

  1. Pacientes com uma infecção ativa e resistente à terapia. Infecções conhecidas por serem altamente mórbidas em pacientes com SCID serão consideradas ativas e resistentes à terapia se o agente infeccioso for repetidamente isolado apesar de um mínimo de 2 semanas de terapia apropriada e estiver associado a disfunção orgânica significativa (incluindo, entre outras, anormalidades listadas abaixo).

    1. Ventilação mecânica incluindo pressão positiva contínua nas vias aéreas
    2. Função hepática anormal definida por AST e ALT >10 vezes a faixa superior do normal OU Bilirrubina >2 mg/dL
    3. Fração de encurtamento no ecocardiograma <25% ou fração de ejeção <50%
    4. Insuficiência renal definida como taxa de filtração glomerular <30 ml/min/1,73 dependência de m2 ou diálise
  2. Distúrbio convulsivo descontrolado
  3. Encefalopatia
  4. Coexistência documentada de qualquer distúrbio conhecido por afetar o reparo do DNA
  5. Diagnóstico de doença maligna ativa que não seja doença linfoproliferativa associada ao EBV
  6. Pacientes com evidência de infecção pelo HIV-1
  7. Transplante alogênico prévio com quimioterapia citorredutora
  8. Anomalias congênitas graves (com risco de vida). Exemplos de "grandes anomalias congênitas (com risco de vida)" incluem, mas não estão limitados a: doença cardíaca cianótica não corrigida, pulmões hipoplásicos, anencefalia ou outras malformações importantes do sistema nervoso central, outras malformações graves não reparáveis ​​dos tratos gastrointestinal ou geniturinário que prejudicar significativamente a função dos órgãos.
  9. Outras condições que na opinião do P.I. ou Co-investigadores, contra-indicam a coleta e/ou infusão de células transduzidas ou indicam a incapacidade do paciente em seguir o protocolo. Estes podem incluir, por exemplo, inelegibilidade clínica para receber anestesia, deterioração grave da condição clínica do paciente após a coleta da medula óssea, mas antes da infusão de células transduzidas, ou recusa documentada ou incapacidade da família em retornar para consultas agendadas. Pode haver outros imprevistos raros que resultariam na exclusão do paciente, como perda repentina da tutela legal.

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

  • Finalidade Principal: Tratamento
  • Alocação: N / D
  • Modelo Intervencional: Atribuição de grupo único
  • Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)

Armas e Intervenções

Grupo de Participantes / Braço
Intervenção / Tratamento
Experimental: Células CD34+ transduzidas com vetor lentiviral
Coorte não randomizada de braço único de até 5 pacientes com imunodeficiência combinada grave ligada ao cromossomo X. As células CD34+ serão coletadas por meio de colheita de medula óssea ou leucaferese. As células coletadas serão então purificadas, cultivadas e transduzidas com o vetor lentiviral G2SCID. As células transduzidas serão congeladas. É necessário um mínimo de 2,5 x 106/kg de células CD34+ após a transdução com uma eficiência de transdução mínima de 0,7 cópias/célula para perfusão no paciente. O paciente receberá condicionamento não mieloablativo com bussulfano intravenoso dois ou três dias antes da infusão celular. As células congeladas serão descongeladas no dia da infusão e as células administradas de acordo com os procedimentos hospitalares. O paciente permanecerá no hospital até que o sistema imunológico do paciente esteja suficientemente coberto
A terapia gênica para imunodeficiência combinada grave ligada ao cromossomo X será realizada pela introdução de uma cópia normal do gene IL2RG nas células-tronco formadoras de sangue (células CD34+) da medula óssea do paciente, usando um tipo de sistema de entrega de genes (neste estudo chamado de vetor lentiviral). As células corrigidas pelo gene são então transplantadas de volta para o paciente.
Outros nomes:
  • Células CD34+ transduzidas por vetor lentiviral G2SCID

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Medir a sobrevida livre de eventos após 1 ano após a transferência do gene
Prazo: 1 ano
Sobrevida livre de eventos 1 ano após a infusão. Os eventos incluirão morte, infusão de produto de backup não manipulado para falha na recuperação hematopoiética e transplante alogênico realizado para reconstituição imunológica deficiente
1 ano
Medir a reconstituição imune de células T: contagem de células T CD3+
Prazo: 1 ano
Reconstituição de células T 1 ano após a infusão: contagem de células T CD3+ ≥300 células/microlitro no sangue periférico
1 ano
Medir a reconstituição imune das células T; marcação genética
Prazo: 1 ano
Reconstituição de células T 1 ano após a infusão: Marcação genética ≥0,1 cópias/célula em células T CD3+ classificadas
1 ano

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Medir a sobrevida geral
Prazo: 2 anos
Medir a sobrevida global 2 anos após a infusão
2 anos
Medir a sobrevida livre de eventos
Prazo: 2 anos
Medir a sobrevida livre de eventos 2 anos após a infusão
2 anos
Incidência de eventos adversos relacionados à terapia gênica
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Incidência de eventos adversos relacionados à terapia gênica
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Enumeração da contagem absoluta de linfócitos determinada por reconstituição completa de rotina
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Enumeração da contagem absoluta de linfócitos determinada por hemograma completo de rotina (CBC)
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Recuperação hematopoiética após o recebimento de busulfan
Prazo: até 6 semanas após a infusão de terapia gênica
A recuperação hematopoiética é definida como contagem absoluta de neutrófilos acima de 0,5 x10^9 /l por três dias consecutivos, alcançada em 6 semanas após a infusão.
até 6 semanas após a infusão de terapia gênica
Medir números absolutos de linfócitos T, B e NK
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Números absolutos de linfócitos T, B e NK
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Calcular a porcentagem de subconjuntos de células T virgens e de memória
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Porcentagem de subconjuntos de células T virgens e de memória
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir os resultados laboratoriais que se correlacionam com a reconstituição imunológica eficaz
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Porcentagem de subconjuntos de células B virgens e de memória
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Determinar ausência de substituição de imunoglobulina por pelo menos 9 meses
Prazo: 2 anos após a infusão de terapia gênica
Livre de substituição de imunoglobulina por pelo menos 9 meses
2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir a reconstituição dos níveis séricos de imunoglobulina
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Níveis séricos de imunoglobulina
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir a proliferação de linfócitos para fitohemaglutinina determinada pela reconstituição da incorporação titulada de timidina
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Proliferação de linfócitos para fitohemaglutinina determinada pela incorporação titulada de timidina
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir os títulos de anticorpos específicos do antígeno para a reconstituição do toxóide tetânico
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir os títulos de anticorpos específicos do antígeno para o toxóide tetânico
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Meça os círculos de excisão do receptor de células T (TREC)
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Meça os círculos de excisão do receptor de células T (TREC)
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir o uso da família Vb do receptor de células T
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir o uso da família Vb do receptor de células T
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Avaliar a eficácia da transdução/enxerto de células-tronco medindo a frequência da marcação de genes em células sanguíneas periféricas
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Marcação gênica em linhagens específicas de células sanguíneas periféricas. O DNA genômico isolado de cada população será testado para VCN por PCR quantitativo (qPCR). Os resultados serão agregados para determinar a eficácia da marcação de genes nas células sanguíneas periféricas.
até 2 anos após a infusão de terapia gênica
Medir a diversidade clonal de integrantes do vetor
Prazo: até 2 anos após a infusão de terapia gênica
A diversidade clonal será quantificada e usada para estimar o número de células-tronco hematopoiéticas transduzidas que foram enxertadas nos indivíduos. Número de leituras de sequência e locais de integração únicos serão avaliados para quantificar a diversidade de clones populacionais, distribuição de locais de integração e abundância relativa.
até 2 anos após a infusão de terapia gênica

Outras medidas de resultado

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Correlação de potenciais biomarcadores de reconstituição imune humoral com ausência de substituição de imunoglobulina intravenosa e resposta de anticorpos ao tétano 2 anos após a infusão, incluindo: Marcação de genes em células B e fenótipo de células B.
Prazo: aos 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Correlação de potenciais biomarcadores de reconstituição imune humoral em 6 meses, 1 ano, 2 anos após a infusão com ausência de substituição de imunoglobulina intravenosa e resposta de anticorpos ao tétano em 2 anos após a infusão, incluindo: Marcação de genes em células B e fenótipo de células B.
aos 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Correlação das medições da área sob a curva do busulfan antes da infusão com ausência de substituição de imunoglobulina intravenosa e resposta de anticorpos ao tétano 2 anos após a infusão e outros marcadores de reconstituição imune humoral
Prazo: 2 anos após a infusão de terapia gênica
Correlação das medições da área sob a curva do busulfan antes da infusão com ausência de substituição de imunoglobulina intravenosa e resposta de anticorpos ao tétano 2 anos após a infusão e outros marcadores de reconstituição imune humoral
2 anos após a infusão de terapia gênica
Evidência de compartilhamento do local de inserção entre 2 ou mais linhagens em 1 ano e 2 anos após a infusão
Prazo: 1 ano e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Evidência de compartilhamento do local de inserção entre 2 ou mais linhagens em 1 ano e 2 anos após a infusão
1 ano e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Correlação da marcação gênica e compartilhamento do local de inserção em células CD34+ de sangue periférico expandido com amostras de células maduras de sangue periférico em 1 ano e 2 anos após a infusão
Prazo: 1 ano e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Correlação da marcação gênica e compartilhamento do local de inserção em células CD34+ de sangue periférico expandido com amostras de células maduras de sangue periférico em 1 ano e 2 anos após a infusão
1 ano e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Descrição do repertório de receptores de células T e receptores de células B antes e depois da infusão
Prazo: Pré-colheita, 3 meses, 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Descrição do repertório de receptores de células T e receptores de células B antes e depois da infusão
Pré-colheita, 3 meses, 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Descrição da função e fenótipo das células NK antes e após a infusão
Prazo: Pré-colheita, 3 meses, 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica
Descrição da função e fenótipo das células NK antes e após a infusão
Pré-colheita, 3 meses, 6 meses, 12 meses e 2 anos após a infusão da terapia gênica

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Investigadores

  • Investigador principal: Claire Booth, Dr, UCL Great Ormond Street Institute of Child Health
  • Investigador principal: Adrian Thrasher, Prof, UCL Great Ormond Street Institute of Child Health

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (Real)

21 de dezembro de 2018

Conclusão Primária (Estimado)

1 de agosto de 2026

Conclusão do estudo (Estimado)

1 de agosto de 2026

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

22 de fevereiro de 2018

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

17 de julho de 2018

Primeira postagem (Real)

26 de julho de 2018

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (Real)

12 de outubro de 2023

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

11 de outubro de 2023

Última verificação

1 de outubro de 2023

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Plano para dados de participantes individuais (IPD)

Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?

NÃO

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

Ensaios clínicos em Imunodeficiência Combinada Grave, Ligada ao X

Ensaios clínicos em Células CD34+ transduzidas por vetor lentiviral

3
Se inscrever