인플루엔자 A VIRus 및 죽상경화성 경동맥 플라크의 불안정화 (VIRAL)

다음 데이터는 의료 기록에서 익명으로 수집됩니다.

• 개인 정보(연령, 성별)
• 동반 질환(심혈관 위험 인자의 존재: 동맥 고혈압, 흡연, 이상지질혈증, 허혈성 심장 질환, COPD, 당뇨병, 만성 신부전, 뇌혈관 허혈 사건의 병력);
• 독감 예방접종 이력;
• 임상적(체중, 키); 임상 실습에 따라 환자는 경동맥 내막 절제술 수술을 받게 됩니다. 수술실에 들어갈 때 환자는 연구와 상관없이 수술 절차를 위해 이미 배치된 말초 정맥 통로에서 특정 항응고제(EDTA)가 포함된 4개의 튜브에 담긴 4ml의 혈액을 채취하게 됩니다. 이러한 혈액 샘플은 개별 분석을 위해 적절하게 보관 및 처리됩니다.

수술 중 제거된 죽상동맥경화반 샘플도 후속 조사를 위해 적절하게 보관됩니다.

수집된 데이터는 전용 e-CRF에 입력되어 적절하게 분석됩니다.

혈액 샘플의 사용 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)는 Percoll 구배를 사용하여 정맥혈 샘플에서 분리 및 분리됩니다. 이들 세포는 특정 상용 키트를 사용하여 인플루엔자 A 바이러스 항원으로 적절하게 자극됩니다. 이 과정을 통해 취약한 경동맥 플라크가 있는 환자 그룹(그룹 A)과 취약하지 않은 플라크가 있는 환자 그룹(그룹 B) 모두에서 바이러스에 대한 면역 반응성을 평가할 수 있습니다. 동일한 샘플의 혈청에서 염증 및 죽상경화증 과정과 관련된 일부 사이토카인/케모카인(IL-6, IL-1β, TNF-α, IFN-γ, MCP-1)의 정량적 발현을 ELISA를 사용하여 평가합니다. 방법).

급성 IV A 감염을 테스트하기 위해 적절한 항체 평가도 수행됩니다.

혈관 샘플의 사용 죽상경화반 샘플에 대해 조직학 조사를 수행하여 두 그룹의 환자(A, 취약한 플라크; B, 비취약한 플라크)를 정의하는 방식으로 플라크의 취약성 또는 기타 여부를 결정할 수 있습니다. )을 분석합니다. 그리고 비교해 보세요.

일부 분자(V-CAM, I-CAM, E-Selectins)와 청소부 대식세포(CD36 및 Lectins)를 식별하는 수용체의 정량적 및 정성적 발현을 평가하기 위해 동일한 샘플에 대해 Western-Blot 분석 및 면역조직화학적 분석도 수행됩니다. Ox-LDL-수용체 1과 같습니다.

마지막으로, RT-PCR을 통해 혈액 샘플에서 평가된 동일한 사이토카인/케모카인의 정량적 연구를 위해 동일한 샘플을 ELISA 분석합니다. 바이러스 RNA의 존재 가능성은 1단계 RT-PCR을 통해 죽상동맥경화반에 대해 평가될 뿐만 아니라 동일한 상용 키트로 자극될 적절한 세포 배양 준비 후 IV A 바이러스에 대한 T 특이적 세포 반응성을 평가합니다. Keller 등이 설명한 방법에 따라 말초 혈액의 PMBC를 자극하는 데 사용됩니다. 추가적으로, 플라크에 바이러스 또는 박테리아 DNA가 존재할 가능성이 있는지 확인합니다. 특히, 인간 폴리오마바이러스와 인간 헤르페스바이러스(단순포진 바이러스 7, 2, 수두대상포진 바이러스, 엡스타인-바 바이러스, 인간 사이토메갈로바이러스, 인간 헤르페스바이러스 6)와 클라미디아의 DNA 유무를 Real Time PCR을 통해 분석하게 됩니다.

바이러스 IV A에 대한 특정 T 세포 반응성 평가 Keller 등이 설명한 방법을 참조하여 혈액 샘플과 죽상동맥경화반 모두에 대한 자극 지수(SI)를 분당 평균 수로 평가합니다( cpm) 바이러스가 있는 배양액을 바이러스가 없는 병렬 배양액의 평균 cpm으로 나눕니다.

그 후, 각 환자의 플라크 T 세포의 SI와 말초 혈액 T 세포의 SI 간의 비율을 기준으로 반응성을 계산하여 비율이 > 2인 경우 반응 환자를 정의합니다(T 세포 T의 SI가 있는 환자). 플라크의 비율이 말초 혈액의 T 세포보다 상당히 높음), 비율이 < 2이면 반응하지 않습니다(후자의 경우 말초 혈액 T 세포의 SI가 플라크의 T 세포보다 높거나 SI가 T 세포 플라크 T는 말초 혈액의 플라크 T보다 유의하게 높지 않습니다.