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Estudio piloto de células asesinas naturales similares a la memoria (ML NK) después de un trasplante haploidéntico agotado de células T TCRαβ en la leucemia mieloide aguda (ABCD-NK)

29 de marzo de 2024 actualizado por: Washington University School of Medicine

Un estudio piloto de fase I/II de células NK similares a la memoria para consolidar el trasplante haploidéntico empobrecido de células T TCRαβ en la leucemia mieloide aguda de alto riesgo

Este estudio piloto de fase I/II tiene como objetivo mejorar la eficacia del trasplante de células madre para niños y adultos jóvenes con leucemia mieloide aguda (LMA) de alto riesgo. Los pacientes se someterán a un trasplante de células madre de un donante familiar medio compatible. Una semana después, los pacientes recibirán una infusión adicional de células inmunitarias y un fármaco llamado interleucina-2.

Para mitigar las posibles complicaciones asociadas con la enfermedad de injerto contra huésped, el producto de células madre donado se somete a un proceso que elimina un tipo específico de célula inmune. Después del trasplante, a los receptores se les administran células inmunes adicionales conocidas como células asesinas naturales similares a la memoria (ML NK). Estas células se obtienen mediante la conversión de células asesinas naturales convencionales obtenidas del donante.

La infusión de un producto de células madre modificadas, junto con la administración de células NK ML, puede ayudar a prevenir el desarrollo de GvHD y al mismo tiempo mejorar la eficacia del tratamiento.

Descripción general del estudio

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Estimado)

48

Fase

  • Fase 2
  • Fase 1

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Estudio Contacto

  • Nombre: Jeffrey Bednarski, M.D., Ph.D.
  • Número de teléfono: 314-286-2825
  • Correo electrónico: bednarski_j@wustl.edu

Copia de seguridad de contactos de estudio

  • Nombre: Thomas M Pfeiffer, M.D.
  • Número de teléfono: 314-273-2070
  • Correo electrónico: pthomas@wustl.edu

Ubicaciones de estudio

    • Missouri
      • Saint Louis, Missouri, Estados Unidos, 63110
        • Washington University School of Medicine
        • Sub-Investigador:
          • Jeffrey Bednarski, M.D., Ph.D.
        • Contacto:
          • Jeffrey Bednarski, M.D., Ph.D.
          • Número de teléfono: 314-286-2825
          • Correo electrónico: bednarski_j@wustl.edu
        • Sub-Investigador:
          • Rachel Langley, PharmD
        • Sub-Investigador:
          • Melissa Mavers, M.D., Ph.D.
        • Sub-Investigador:
          • Feng Gao, Ph.D.
        • Sub-Investigador:
          • Amanda Cashen, M.D.
        • Sub-Investigador:
          • Todd Fehniger, M.D., Ph.D.
        • Sub-Investigador:
          • Shalini Shenoy, M.D.
        • Sub-Investigador:
          • Robert Hayashi, M.D.
        • Contacto:
          • Thomas M Pfeiffer, M.D.
          • Número de teléfono: 314-273-2070
          • Correo electrónico: pthomas@wustl.edu
        • Investigador principal:
          • Thomas M Pfeiffer, M.D.

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

  • Niño
  • Adulto
  • Adulto Mayor

Acepta Voluntarios Saludables

No

Descripción

Criterios de inclusión de pacientes:

  1. Leucemia mieloide aguda (AML) de alto riesgo en:

    1. Remisión completa (RC) definida por < 5 % de blastos en la médula por morfología en el contexto de la recuperación hematológica (RAN ≥ 0,5 × 10 ^ 9/L, recuento de plaquetas ≥ 50 × 10 ^ 9/L).
    2. Estado libre de leucemia morfológica (MLFS), definido por la falta de recuperación hematológica, <5% de blastos de médula por morfología con al menos 200 células nucleadas presentes en el aspirado de médula ósea.
  2. Los pacientes deben cumplir además uno de los siguientes para su inclusión en el estudio:

    1. AML de novo en CR1 con cualquiera de las siguientes características de alto riesgo:

      • MRD ≥ 1% después del primer ciclo de inducción
      • MRD ≥ 0,1% después del segundo ciclo de inducción
      • RPN1-MECOM
      • RUNX1-MECOM
      • NPM1-MLF1
      • DEK-NUP214
      • KAT6A-CREBBP (si ≥ 90 días en el momento del diagnóstico)
      • FUS-ERG
      • KMT2A-AFF1
      • KMT2A-AFDN
      • KMT2A-ABI1
      • KMT2A-MLLT1
      • Reordenamiento 11p15 (NUP98 - cualquier gen asociado)
      • Reordenamiento 12p13.2 (ETV6 - cualquier gen asociado)
      • Eliminación de 12p para incluir 12p13.2 (pérdida de ETV6)
      • Monosomía 5/Del(5q) para incluir 5q31 (pérdida de EGR1)
      • Monosomía 7
      • Reordenamiento 10p12.3 (MLLT10b - cualquier gen asociado)
      • FLT3/ITD con relación alélica > 0,1%, sin bZIP CEBPA o NPM1
      • Fenotipo RAM evidenciado por citometría de flujo
      • Otras características de alto riesgo que no se indican explícitamente aquí, después de la discusión/aprobación con el IP del protocolo.
    2. LMA de novo en ≥ CR2
    3. AML relacionada con la terapia en CR1
    4. AML que evoluciona a partir del síndrome mielodisplásico (MDS)
  3. Se permite el trasplante previo de células hematopoyéticas, siempre que se cumplan los criterios de remisión definidos anteriormente.
  4. No más de 30 años de edad.
  5. Estado funcional de Lansky (<16 años) o Karnofsky (≥16 años) >60%.
  6. Función adecuada de los órganos como se define a continuación:

    1. Bilirrubina total ≤ 3 x IULN para la edad
    2. AST(SGOT)/ALT(SGPT) ≤ 5 x IULN para la edad
    3. TFG ≥ 60 ml/min/1,73 m2 según lo estimado por (1) fórmula de Schwartz actualizada para edades de 1 a 17 años o fórmula de Cockcroft-Gault para edades ≥ 18 años, (2) aclaramiento de creatinina de 24 horas o (3) gammagrafía renal. Si la TFG es anormal para la edad según la fórmula actualizada de Schwartz o Cockcroft-Gault, se debe obtener una medición precisa mediante el aclaramiento de creatinina de 24 horas o una gammagrafía renal.
    4. La función renal también puede estimarse mediante la creatinina sérica según la edad y el sexo. Se requiere una creatinina sérica <2 x IULN para edad/sexo para su inclusión en este protocolo.
  7. Función cardíaca adecuada, definida por la fracción de eyección del ventrículo izquierdo (FEVI) en reposo ≥50% o fracción de acortamiento (FS) ≥27% (mediante ecocardiograma o MUGA).
  8. Función pulmonar adecuada, definida por:

    1. FEV1, FVC y DLCO ≥50% de lo previsto.
    2. Saturación de O2 ≥ 92% en aire ambiente mediante oximetría de pulso y sin O2 suplementario en reposo para niños <8 años de edad o aquellos que no pueden realizar pruebas de función pulmonar (PFT). Para los niños que no pueden realizar PFT, se debe obtener una TC de tórax de alta resolución.
  9. Se desconocen los efectos de estos tratamientos sobre el feto humano en desarrollo. Por esta razón, las mujeres en edad fértil y los hombres deben aceptar utilizar un método anticonceptivo adecuado (método anticonceptivo hormonal o de barrera, abstinencia) antes del ingreso al estudio, durante la duración de la participación en el estudio y durante los 24 meses posteriores al trasplante. Si una mujer queda embarazada o sospecha que está embarazada mientras participa en este estudio, debe informar a su médico tratante de inmediato.
  10. Capacidad para comprender y disposición para firmar un documento de consentimiento informado por escrito aprobado por el IRB, o el paciente tiene un tutor que tiene la capacidad de comprender y disposición para firmar un documento de consentimiento informado por escrito aprobado por el IRB.
  11. Disponible donante familiar haploidéntico. El donante de HCT debe estar disponible y dispuesto a someterse a 2 procedimientos de leucoféresis: (I) una colección movilizada para el injerto de HPC y (II) una colección de leucoféresis no movilizada para la fabricación de células NK ML.
  12. El donante y el receptor deben ser idénticos en al menos un alelo de cada uno de los siguientes loci genéticos: HLA-A, HLA-B, HLA-Cw, HLA-DRB1 y HLA-DQB1. Se requiere una coincidencia mínima de 5/10 y se considerará prueba suficiente de que el donante y el receptor comparten un haplotipo HLA.

Criterios de exclusión de pacientes:

  1. GvHD activo. Si el paciente tuvo GvHD previa, el paciente debe estar sin inmunosupresión durante al menos 3 meses antes de comenzar el tratamiento del estudio.
  2. Neoplasia maligna no hematológica activa. Se aceptan antecedentes de otras neoplasias malignas siempre que se haya completado el tratamiento y no haya evidencia actual de enfermedad.
  3. Actualmente recibiendo otros agentes en investigación.
  4. SNC activo o enfermedad extramedular. Se aceptan antecedentes de enfermedad del SNC o extramedular actualmente en remisión.
  5. Un historial de reacciones alérgicas atribuidas a compuestos de composición química o biológica similar a los agentes utilizados en el estudio.
  6. Incapacidad para suspender medicamentos que probablemente interfieran con la actividad de las células NK de ML, es decir, glucocorticoides y otros inmunosupresores.
  7. Presencia de anticuerpos HLA anti-donante significativos según los estándares institucionales. HLA anti-donante: la prueba de anticuerpos se define como una prueba cruzada positiva de cualquier título (mediante citotoxicidad dependiente del complemento o prueba de citometría de flujo) o la intensidad de fluorescencia media (MFI) de cualquier anticuerpo HLA anti-donante mediante inmunoensayo en fase sólida > 3000.
  8. Presencia de un segundo trastorno importante considerado una contraindicación para el TCH.
  9. Pacientes con Anemia de Fanconi o Síndrome de Down.
  10. Enfermedad intercurrente no controlada que incluye, entre otras, infección activa o en curso (bacteriana, viral con inestabilidad clínica o fúngica), insuficiencia cardíaca congestiva sintomática o arritmia cardíaca inestable.
  11. Embarazadas y/o lactantes. Las mujeres en edad fértil deben tener una prueba de embarazo negativa dentro de los 14 días posteriores al inicio del acondicionamiento.

Criterios de elegibilidad de los donantes

  1. El donante debe tener al menos 18 años de edad.
  2. El donante debe ser HLA haploidéntico (≥ 5/10 y ≤ 9/10 coincidencia de alelos en los loci -A, -B, -C, DRB1 y DQ) mediante tipificación de alta resolución y estar relacionado con el paciente.
  3. El donante debe cumplir con los criterios de selección definidos por la Fundación para la Acreditación de la Terapia Celular Hematopoyética (FACT).
  4. El donante debe estar disponible y dispuesto a someterse a un procedimiento de leucoféresis movilizado y otro no movilizado.
  5. La donante no puede estar embarazada y/o amamantando. Las mujeres en edad fértil deben tener una prueba de embarazo negativa dentro de los 30 días anteriores a la aféresis.
  6. El donante debe poder comprender y estar dispuesto a firmar un documento de consentimiento informado por escrito aprobado por el IRB.

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Tratamiento
  • Asignación: No aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación paralela
  • Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: Receptor, Acondicionamiento mieloablativo (MAC)
Los pacientes se someterán a un acondicionamiento mieloablativo (MAC) que consiste en globulina antitimocítica de conejo (rATG), busulfán, fludarabina y tiotepa. Todos los agentes se administran por vía intravenosa. rATG se administra desde los días -9 a -7, seguido de busulfano y fludarabina desde los días -6 a -3, y tiotepa el día -2. El día 0, los pacientes se someterán a una infusión del injerto de HPC haploidéntico empobrecido en TCRαβ/CD19+ ex vivo. El día +7, los pacientes se someterán a una infusión de células NK de memoria (ML NK), seguidas de IL-2 por vía subcutánea 4 horas después de la infusión de ML NK. IL-2 continuará cada dos días hasta el día +19 por un máximo de 7 dosis.
rATG se administra por vía intravenosa durante 6 a 18 horas para un total de 2 a 3 dosis. La dosis diaria se basa en el peso corporal y el recuento de linfocitos.
Otros nombres:
  • RATG
El busulfano se administra por vía intravenosa cada 6 horas o cada 24 horas, con un AUC objetivo recomendado de busulfano de 70-90 mg*h/L.
La fludarabina se administra por vía intravenosa a una dosis de 40 mg/m^2/dosis una vez al día durante 4 días.
La tiotepa se administra por vía intravenosa a una dosis de 5 mg/kg/dosis cada 12 horas durante 2 dosis.
El producto HPC obtenido de un donante haploidéntico se someterá a un agotamiento ex vivo de TCR alfa beta y CD19+, y se infundirá fresco el día 0. No existe un límite máximo para la dosis de CD34+. No se debe exceder una dosis máxima de 1 x 10^5/kg de peso del receptor de células TCRαβ en el producto HPC final.
Otros nombres:
  • Injerto de HPC haploidéntico empobrecido con TCRab/CD19+
Las células NK ML (dosis: máxima limitada a 20 x 10^6/kg de peso del receptor, la dosis mínima permitida es 0,5 x 10^6/kg de peso del receptor) se infundirán el día +7.
Otros nombres:
  • Células NK ML
La IL-2 se administra por vía subcutánea a una dosis de 1 millón de unidades/m^2 los días +7, +9, +11, +13, +15, +17 y +19 (7 dosis en total).
Después de recolectar las células madre mediante leucoféresis, para crear el producto HPC, las células madre se lavarán para eliminar las plaquetas y la concentración celular se ajustará según las recomendaciones del laboratorio y de la tecnología CliniMACS. Luego, las células se marcan utilizando el kit CliniMACS TCRαβ Biotin y microperlas inmunomagnéticas CD19+. Después del etiquetado, las células se lavan para eliminar las microperlas no unidas. El producto parcialmente procesado se carga en el dispositivo CliniMACS donde se agotan las células marcadas y la fracción negativa se eluye del dispositivo. La fracción negativa se centrifuga y se reconstituye el volumen para obtener el producto final.
Experimental: Destinatario, Acondicionamiento de Intensidad Reducida (RIC)
Los pacientes se someterán a un acondicionamiento de intensidad reducida (RIC) que consiste en globulina antitimocítica de conejo (rATG), fludarabina, melfalán y tiotepa. Todos los agentes se administran por vía intravenosa. rATG se administra desde los días -9 a -7. La fludarabina se administra del día -8 al día -5, seguida de tiotepa el día -4 y melfalán los días -3 y -2. El día 0, los pacientes se someterán a una infusión del injerto de HPC haploidéntico empobrecido en TCRαβ/CD19+ ex vivo. El día +7, los pacientes se someterán a una infusión de células NK similares a la memoria (ML NK), seguidas de IL-2 por vía subcutánea a partir de 4 horas después de la infusión de ML NK. IL-2 continuará cada dos días hasta el día +19 por un máximo de 7 dosis.
rATG se administra por vía intravenosa durante 6 a 18 horas para un total de 2 a 3 dosis. La dosis diaria se basa en el peso corporal y el recuento de linfocitos.
Otros nombres:
  • RATG
La fludarabina se administra por vía intravenosa a una dosis de 40 mg/m^2/dosis una vez al día durante 4 días.
La tiotepa se administra por vía intravenosa a una dosis de 5 mg/kg/dosis cada 12 horas durante 2 dosis.
El producto HPC obtenido de un donante haploidéntico se someterá a un agotamiento ex vivo de TCR alfa beta y CD19+, y se infundirá fresco el día 0. No existe un límite máximo para la dosis de CD34+. No se debe exceder una dosis máxima de 1 x 10^5/kg de peso del receptor de células TCRαβ en el producto HPC final.
Otros nombres:
  • Injerto de HPC haploidéntico empobrecido con TCRab/CD19+
Las células NK ML (dosis: máxima limitada a 20 x 10^6/kg de peso del receptor, la dosis mínima permitida es 0,5 x 10^6/kg de peso del receptor) se infundirán el día +7.
Otros nombres:
  • Células NK ML
La IL-2 se administra por vía subcutánea a una dosis de 1 millón de unidades/m^2 los días +7, +9, +11, +13, +15, +17 y +19 (7 dosis en total).
Después de recolectar las células madre mediante leucoféresis, para crear el producto HPC, las células madre se lavarán para eliminar las plaquetas y la concentración celular se ajustará según las recomendaciones del laboratorio y de la tecnología CliniMACS. Luego, las células se marcan utilizando el kit CliniMACS TCRαβ Biotin y microperlas inmunomagnéticas CD19+. Después del etiquetado, las células se lavan para eliminar las microperlas no unidas. El producto parcialmente procesado se carga en el dispositivo CliniMACS donde se agotan las células marcadas y la fracción negativa se eluye del dispositivo. La fracción negativa se centrifuga y se reconstituye el volumen para obtener el producto final.
Melfalán se administra por vía intravenosa a una dosis de 70 mg/m^2/dosis una vez al día durante 2 días.
Otros nombres:
  • Alkeran
  • Evolema
Otro: Donante
Los donantes se someterán a 2 recolecciones de leucoféresis. Primero, los pacientes serán movilizados utilizando G-CSF durante 5 días seguido de leucoféresis el día anterior al trasplante de células madre planificado. La segunda recolección se realizará el día +6 después del trasplante de células madre y no se movilizará.
Si se prevé una recolección subóptima de células madre, se puede administrar plerixafor a una dosis de 0,24 mg/kg en inyección subcutánea una vez (máximo 40 mg/dosis). Para pacientes con insuficiencia renal, plerixafor se administrará a una dosis de 0,16 mg/kg en inyección subcutánea (máximo 27 mg/día).
El G-CSF se administrará a una dosis de 10 mcg/kg/día durante 5 días, o 6 días si se necesitan dos días de recolección.
Otros nombres:
  • G-CSF

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Seguridad de los pacientes a los que se les administran células NK ML derivadas de un donante después de un trasplante de células haploidénticas empobrecidas en TCR alfa beta
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el día +100
La seguridad estará determinada por los eventos que ocurran después del trasplante. Se considerarán eventos la mortalidad sin recaída, el fracaso del injerto y el desarrollo de GvHD grave.
Desde el trasplante hasta el día +100
Viabilidad de fabricar y administrar células NK ML derivadas de donantes después de un trasplante de células haploidénticas empobrecidas en TCR alfa beta
Periodo de tiempo: Durante el tiempo de infusión de células NK ML (alrededor del día +7)
La viabilidad se define por el fallo de fabricación del producto, es decir, la incapacidad de infundir células NK ML debido a la contaminación del producto o a una dosis celular insuficiente (<0,5x10^6/kg de peso del receptor).
Durante el tiempo de infusión de células NK ML (alrededor del día +7)

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Supervivencia libre de recaídas (RFS)
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el mes 12
Definido como el tiempo entre la fecha del trasplante y la fecha del último seguimiento, recaída o muerte por cualquier causa.
Desde el trasplante hasta el mes 12
Supervivencia general (SG)
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el mes 12
Definida como muerte por cualquier causa después de un trasplante.
Desde el trasplante hasta el mes 12
Desarrollo de la enfermedad de injerto contra huésped aguda (aGvHD)
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el día +100
Incidencia de EICH aguda de grado II, III o IV clasificada según los criterios de consenso de los NIH. La aGvHD grave (grados III-IV) se considera un evento.
Desde el trasplante hasta el día +100
Desarrollo de la enfermedad de injerto contra huésped crónica (cGvHD)
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el día +180
Incidencia de GvHD crónica clasificada según los criterios de consenso de los NIH. La cGvHD grave se considera un evento.
Desde el trasplante hasta el día +180
Desarrollo de la enfermedad de injerto contra huésped crónica (cGvHD)
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el día +365
Incidencia y gravedad de la EICH crónica clasificadas según los criterios de consenso de los NIH. La cGvHD grave se considera un evento.
Desde el trasplante hasta el día +365
Desarrollo de infecciones.
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el día +180
Las infecciones importantes incluyen, entre otras, sepsis bacteriana o fúngica, reactivación viral con o sin enfermedad clínica, otras infecciones virales e infecciones adquiridas en la comunidad.
Desde el trasplante hasta el día +180
Análisis de la reconstitución inmune.
Periodo de tiempo: Desde el trasplante hasta el mes 24
La reconstitución inmune se define como la recuperación de la función de las células inmunogénicas derivadas del donante y se mide mediante la recuperación de compartimentos celulares individuales.
Desde el trasplante hasta el mes 24

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Thomas M Pfeiffer, M.D., Washington University School of Medicine

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Estimado)

30 de abril de 2024

Finalización primaria (Estimado)

15 de agosto de 2028

Finalización del estudio (Estimado)

30 de abril de 2030

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

27 de noviembre de 2023

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

27 de noviembre de 2023

Publicado por primera vez (Actual)

6 de diciembre de 2023

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

2 de abril de 2024

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

29 de marzo de 2024

Última verificación

1 de marzo de 2024

Más información

Términos relacionados con este estudio

Plan de datos de participantes individuales (IPD)

¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?

NO

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

producto fabricado y exportado desde los EE. UU.

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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