- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03261466
BIFI-OBESE : Essai clinique sur l'obésité pédiatrique (BIFI-OBESE)
BIFI-OBESE : Effet des probiotiques Bifidobacterium Breve BR03 et Bifidobacterium Breve B632 sur l'obésité pédiatrique
L'obésité est un problème majeur de santé publique qui touche au moins 400 millions de personnes et est associée à des troubles graves, notamment le diabète et les cancers. Dans le monde, la prévalence du surpoids et de l'obésité combinées chez les enfants, les adolescents et les jeunes, entre 1980 et 2013, a augmenté à 47,1 %, avec des données alarmantes également dans les pays en développement. L'obésité est souvent causée par un déséquilibre entre un apport calorique excessif et une activité physique réduite.
Récemment, les changements microbiens dans l'intestin humain ont été proposés comme une autre cause possible d'obésité et il a été constaté que les microbes intestinaux des échantillons fécaux contenaient 3,3 millions de gènes microbiens non redondants. Cependant, on comprend encore mal comment la dynamique et la composition du microbiote intestinal sont affectées par l'alimentation ou d'autres facteurs liés au mode de vie. De plus, il a été difficile de caractériser la composition du microbiote intestinal humain en raison de grandes variations entre les individus.
Le rôle du microbiote digestif dans le corps humain est encore largement méconnu, mais les bactéries de la flore intestinale apportent des enzymes absentes chez l'homme pour la digestion des aliments. De plus, le lien entre l'obésité et le microbiote est susceptible d'être plus sophistiqué que le simple rapport Bacteroidetes : Firmicutes au niveau de l'embranchement qui a été initialement identifié, et il est susceptible d'impliquer une interaction microbiote-alimentation.
Les sujets obèses et maigres présentaient des niveaux accrus de différentes populations bactériennes. On suppose que le microbiome obèse est configuré pour extraire plus de calories de l'apport quotidien par rapport au microbiome des homologues maigres. De plus, une restriction calorique du régime alimentaire a eu un impact sur la composition du microbiote intestinal chez les personnes obèses/en surpoids et sur la perte de poids.
Chez les sujets maigres on retrouve les Coriobacteriaceae, Lactobacillus, Enterococcus, Faecalibacterium prausnitzii, Prevotella, Clostridium Eubacterium, E. coli et Staphilococcus. En revanche, Bifidobacterium, Methanobrevibacter, Xylanibacter, Bacteroides caractérisent la composition du microbiote intestinal maigre.
Pour cette raison, dans une cohorte de sujets pédiatriques obèses présentant une adiposité viscérale, l'objectif de l'étude est d'évaluer l'efficacité d'une supplémentation en bifidobactéries probiotiques par rapport à un traitement conventionnel sur la perte de poids et l'amélioration des facteurs de risque cardio-métaboliques.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Conception de l'étude : Essai contrôlé randomisé ouvert pilote monocentrique. Population : L'étude comprendra un total de 100 sujets des deux sexes, âgés de 6 à 18 ans, obèses, selon les critères de l'IOTF et présentant une adiposité viscérale, un tour de taille ≥ 90e centile, un stade pubertaire ≥ 2 selon le Tanner stade, HOMA-IR > 2,5 ou insuline > 15 µU/ml, naïf de régime ou avec échec de perte de poids (défini comme -1 kg/m2 IMC en 1 an).
Critères d'inclusion/exclusion (voir Critères d'éligibilité). Intervention : Dans la première partie de l'étude (Etude 1, V0-V1) les patients seront randomisés en ouvert, en deux groupes homogènes pour le nombre et le sexe des sujets. Un groupe recevra une supplémentation en probiotique contenant Bifidobacterium breve B632 et Bifidobacterium breve BR03, 15 gtt/die (3x108 UFC/die) et un groupe recevra un placebo pour un total de 2 mois de traitement. Les deux groupes reçoivent un régime standard selon les soins et la pratique de routine. Pour les patients qui souhaitent poursuivre l'étude, il y aura une étude croisée (étude 2, V2-V3) après un mois de sevrage.
Restriction alimentaire : le régime standard sera distribué avec 55-60 % de glucides (45-50 % de sucres complexes et pas plus de 10 % de sucres raffinés et transformés), 25-30 % de lipides et 15 % de protéines, et sera effectué conformément avec les calories d'une alimentation équilibrée isocalorique calculées selon les directives italiennes LARN pour l'âge et le sexe.
Activité physique : tous les sujets recevront des recommandations générales sur la pratique d'une activité physique. L'exercice sera effectué quotidiennement et consistera en 30 minutes d'activité physique aérobique.
Randomisation : les participants seront répartis au hasard dans un groupe d'intervention 1:1 à probiotique ou dans un groupe placebo.
Calendrier : Les patients seront d'abord évalués au moment de l'inscription (V0) et, à la fin de la première partie de l'étude (Étude 1, V1), les évaluations biochimiques seront terminées. Ensuite, il y aura un mois de sevrage lorsque les patients ne prendront aucun probiotique ou placebo. Dans la seconde partie de l'étude 2, les patients seront évalués à V2 et, après 2 mois de traitement (Etude 2, V3). Les mesures anthropométriques, les évaluations biochimiques et échographiques et les questionnaires suivants seront obtenus :
Mesures anthropométriques :
- hauteur (V0, V1, V2, V3);
- poids (V0, V1, V2, V3);
- indice de masse corporelle (IMC ; Kg/m2) (V0, V1, V2, V3) ;
- les tours de taille et de hanches (V0, V1, V2, V3) pour le calcul des rapports suivants : taille/hanche, taille/taille ;
- Stade Tanner (V0, V1, V2, V3);
- tension artérielle et fréquence cardiaque (V0, V1, V2, V3). Évaluations biochimiques (après un jeûne nocturne de 12 h) : FSC avec formule, facteur de croissance analogue à l'insuline sérique 1 (IGF1, ng/mL), 25-hydroxy (OH) vitamine D (ng/mL), acide urique (mg/ dL), phosphatase alcaline (U/L), ACTH (pg/mL), cortisol (microg/dL), TSH (uuI/mL), fT4 (ng/dL) (V0, V1, V2, V3) ; aspartate aminotransférase (AST, UI/L), alanine aminotransférase (ALT, UI/L); Le rapport AST/ALT sera calculé comme le rapport AST (UI/L) et ALT(UI/L) (V0, V1, V2, V3) ; la concentration de créatinine sérique (mg/dL) sera mesurée avec la méthode enzymatique ; selon les directives NKF-K/DOQI pour l'IRC chez les enfants et les adolescents, le DFGe sera calculé à l'aide de la formule de Schwartz mise à jour : DFGe (mL/min/1,73 m2) = [0,413 x taille du patient (cm)] / créatinine sérique (mg/dL) (V0, V1, V2, V3) ; glucose (mg/dL), insuline (μUI/mL) ; l'insulino-résistance (IR) sera calculée à l'aide de la formule du modèle d'évaluation de l'homéostasie (HOMA)-IR : (insuline [mU/L] x glucose [mmol/lL) / 22,5) (V0, V1, V2, V3) ; profil lipidique : cholestérol total (mg/dL), lipoprotéines de haute densité (HDL)-cholestérol (mg/dL), triglycérides (mg/dL) ; Le cholestérol des lipoprotéines de basse densité (LDL) sera calculé par la formule de Friedwald et le cholestérol non HDL (nHDL) sera également calculé (V0, V1, V2, V3); test de tolérance au glucose par voie orale (OGTT : 1,75 g de solution de glucose par kg, maximum 75 g) et des échantillons seront prélevés pour le dosage du glucose et de l'insuline toutes les 30 minutes. L'aire sous la courbe (AUC) des paramètres après OGTT sera calculée selon la règle trapézoïdale. La sensibilité à l'insuline à jeun et pendant l'OGTT sera calculée selon la formule de l'indice de contrôle quantitatif de la sensibilité à l'insuline (QUICKI) et de l'indice de Matsuda (ISI). Le stimulus de la sécrétion d'insuline dans l'augmentation du glucose plasmatique en tant qu'indice insulinogénique sera calculé comme le rapport des changements de concentration d'insuline et de glucose de 0 à 30 min (InsI). La capacité de compensation des cellules bêta sera évaluée par l'indice de disposition défini comme le produit de l'ISI et de l'InsI (DI) (V0, V1, V2, V3) ; une collecte au repos de l'échantillon d'urine du premier matin. analyse d'urine physique et chimique; l'albumine urinaire (mg/L) sera déterminée par un test immunoturbidimétrique avancé et la créatinine urinaire (mg/dL) sera mesurée à l'aide de la méthode enzymatique. Le rapport albumine urinaire/créatinine (u-ACR - mg/g) sera calculé à l'aide de la formule suivante : [albumine urinaire (mg/dL) / créatinine urinaire (mg/dL)] x 1000. Pour ces calculs, l'albumine et la créatinine seront dans la même unité. Les sujets dont l'urine sera trouvée positive, ils subiront une collecte de deux échantillons supplémentaires et seront considérés comme la valeur moyenne u-ACR de ceux-ci (V0, V1, V2, V3). Un échantillon de matières fécales sera prélevé pour comptage microbien (V0, V1, V2, V3). LPS (V0, V1, V2, V3). Le LPS sera mesuré avec des kits commerciaux (Limulus amoebocyte lysate assay) avec des procédures standard. Les citokines IL1, IL1β, IL6, IL10, TNFα seront évaluées (V0, V1, V2, V3) (kit ELISA).
- Un carnet de santé sera tenu pendant les 2 mois de traitement : chaque patient remplira le carnet avec effets collatéraux ou traitement antibiotique etc.
- Le NGS (Next Generation Sequencing) sera analysé pour l'analyse fécale (V0, V1, V2, V3)
- L'analyse métabolomique sera effectuée avec spectrométrie de masse sur des échantillons fécaux (V0, V1, V2, V3)
- Analyse SCFA sur échantillons fécaux (V0, V1, V2, V3).
Résultats (voir Mesures des résultats). Recherche d'informations : Un formulaire de rapport de cas (CRF) sera rempli pour chaque sujet inclus dans l'étude. Les documents sources seront le dossier de l'hôpital ou du médecin.
Taille de l'échantillon statistique : un échantillon de 16 individus a été estimé suffisant pour démontrer une différence de 10 mg/dl dans la concentration basale de glucose avec une puissance de 90 % et un seuil de signification de 95 % et un taux d'abandon de 10 % à la 8ème semaine de traitement. Un échantillon de 34 individus dans chaque groupe a été estimé suffisant pour démontrer une différence de 1,4 point dans l'indice HOMA-IR avec une puissance de 90% et un niveau de signification de 95% et un taux d'abandon de 10% à la 8e semaine de traitement. La signification statistique sera supposée à P < 0,05. L'analyse statistique sera effectuée avec SPSS pour Windows version 17.0 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA).
Caractéristiques de l'organisation : L'étude sera menée au Service d'endocrinologie pédiatrique de la Division de pédiatrie.
Tous les échantillons de sang seront mesurés évalués à l'aide de méthodes standardisées dans le laboratoire de chimie de l'hôpital, à l'hôpital Maggiore della Carità, à Novara, décrit précédemment. L'analyse fécale sera mesurée au Département des sciences et technologies de l'Université de Bologne, à Bologne.
Bonnes Pratiques Cliniques : Le protocole sera conduit conformément à la déclaration d'Helsinki. Le consentement éclairé sera obtenu de tous les parents avant les évaluations après des explications détaillées à chaque patient.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- Phase 4
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
-
Novara, Italie, 28100
- AOU Maggiore della Carità - Clinica Pediatrica - Ambulatorio di Auxologia ed Endocrinologia Pediatrica
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- les deux sexes
- entre 6 et 18 ans
- obèse, selon les critères de l'IOTF (Cole TJ et al., 2000)
- stade pubertaire ≥ 2 selon le stade de Tanner (Tanner et al., 1961)
- HOMA-IR > 2,5 ou insuline > 15 µU/ml
Critère d'exclusion:
- Réactions indésirables au produit ou à un composant du produit (allergies…)
- Obésité génétique (syndrome de Prader Willi, syndrome de Down), obésité métabolique (syndrome de Laurence-biedl…), obésité endocrinienne (syndrome de Cushinch, hypotiroïdie)
- Maladies chroniques, maladies hépatiques ou gastro-entérologiques
- Traitement médical des maladies chroniques
- Thérapies probiotiques ou prébiotiques et traitement antibiotique
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation croisée
- Masquage: Quadruple
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Comparateur actif: Groupe actif Bifidobacterium breve BR03 et B632
Ce bras recevra une supplémentation en probiotique contenant Bifidobacterium breve B632 et Bifidobacterium breve BR03, 15 gtt/die (3x108 UFC/die) une fois par jour.
|
Autres noms:
|
|
Comparateur placebo: Groupe placebo
Ce bras recevra une supplémentation avec un même produit égal au produit actif mais sans bifidobactérie à l'intérieur.
|
Autres noms:
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Changement du niveau de glucose pendant le test de tolérance au glucose oral (OGTT)
Délai: Changement par rapport à la ligne de base HGPO (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer si après le traitement avec probiotique il y a une réduction des valeurs de glucose pendant l'HGPO au temps 0' e 120' après le test de tolérance au glucose par voie orale.
|
Changement par rapport à la ligne de base HGPO (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
|
Evolution de l'indice HOMA-IR
Délai: Changement par rapport à la ligne de base HOMA-IR (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer si après le traitement avec probiotique il y a une variation de l'indice HOMA-IR.
|
Changement par rapport à la ligne de base HOMA-IR (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Contrôle métabolique : Amélioration des facteurs de risque métaboliques
Délai: Changement par rapport au profil lipidique initial, insuline, leptine, adiponectine, GLP1 (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer toute variation des lipides sériques, de la leptine, de l'adiponectine, du GLP1 et de l'insuline pendant l'OGTT.
|
Changement par rapport au profil lipidique initial, insuline, leptine, adiponectine, GLP1 (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
|
Modification du microbiome fécal
Délai: Changement par rapport au microbiome fécal de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer toute variation du microbiome fécal
|
Changement par rapport au microbiome fécal de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
|
Modification des AGCC (acides gras à chaîne courte) dans les échantillons fécaux
Délai: Changement par rapport à l'AGCC fécal de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer toute variation des acides gras à chaîne courte dans les échantillons fécaux
|
Changement par rapport à l'AGCC fécal de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Modification des cytokines inflammatoires
Délai: Changement par rapport aux cytokines et métabolites de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Évaluer de nouvelles cytokines et métabolites qui régulent le métabolisme hormonal.
|
Changement par rapport aux cytokines et métabolites de base (V0) à 2 mois (V1), 3 mois (V2) et 5 mois (V3)
|
Collaborateurs et enquêteurs
Publications et liens utiles
Publications générales
- Qin J, Li R, Raes J, Arumugam M, Burgdorf KS, Manichanh C, Nielsen T, Pons N, Levenez F, Yamada T, Mende DR, Li J, Xu J, Li S, Li D, Cao J, Wang B, Liang H, Zheng H, Xie Y, Tap J, Lepage P, Bertalan M, Batto JM, Hansen T, Le Paslier D, Linneberg A, Nielsen HB, Pelletier E, Renault P, Sicheritz-Ponten T, Turner K, Zhu H, Yu C, Li S, Jian M, Zhou Y, Li Y, Zhang X, Li S, Qin N, Yang H, Wang J, Brunak S, Dore J, Guarner F, Kristiansen K, Pedersen O, Parkhill J, Weissenbach J; MetaHIT Consortium, Bork P, Ehrlich SD, Wang J. A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature. 2010 Mar 4;464(7285):59-65. doi: 10.1038/nature08821.
- Ley RE, Turnbaugh PJ, Klein S, Gordon JI. Microbial ecology: human gut microbes associated with obesity. Nature. 2006 Dec 21;444(7122):1022-3. doi: 10.1038/4441022a.
- Ng M, Fleming T, Robinson M, Thomson B, Graetz N, Margono C, Mullany EC, Biryukov S, Abbafati C, Abera SF, Abraham JP, Abu-Rmeileh NM, Achoki T, AlBuhairan FS, Alemu ZA, Alfonso R, Ali MK, Ali R, Guzman NA, Ammar W, Anwari P, Banerjee A, Barquera S, Basu S, Bennett DA, Bhutta Z, Blore J, Cabral N, Nonato IC, Chang JC, Chowdhury R, Courville KJ, Criqui MH, Cundiff DK, Dabhadkar KC, Dandona L, Davis A, Dayama A, Dharmaratne SD, Ding EL, Durrani AM, Esteghamati A, Farzadfar F, Fay DF, Feigin VL, Flaxman A, Forouzanfar MH, Goto A, Green MA, Gupta R, Hafezi-Nejad N, Hankey GJ, Harewood HC, Havmoeller R, Hay S, Hernandez L, Husseini A, Idrisov BT, Ikeda N, Islami F, Jahangir E, Jassal SK, Jee SH, Jeffreys M, Jonas JB, Kabagambe EK, Khalifa SE, Kengne AP, Khader YS, Khang YH, Kim D, Kimokoti RW, Kinge JM, Kokubo Y, Kosen S, Kwan G, Lai T, Leinsalu M, Li Y, Liang X, Liu S, Logroscino G, Lotufo PA, Lu Y, Ma J, Mainoo NK, Mensah GA, Merriman TR, Mokdad AH, Moschandreas J, Naghavi M, Naheed A, Nand D, Narayan KM, Nelson EL, Neuhouser ML, Nisar MI, Ohkubo T, Oti SO, Pedroza A, Prabhakaran D, Roy N, Sampson U, Seo H, Sepanlou SG, Shibuya K, Shiri R, Shiue I, Singh GM, Singh JA, Skirbekk V, Stapelberg NJ, Sturua L, Sykes BL, Tobias M, Tran BX, Trasande L, Toyoshima H, van de Vijver S, Vasankari TJ, Veerman JL, Velasquez-Melendez G, Vlassov VV, Vollset SE, Vos T, Wang C, Wang X, Weiderpass E, Werdecker A, Wright JL, Yang YC, Yatsuya H, Yoon J, Yoon SJ, Zhao Y, Zhou M, Zhu S, Lopez AD, Murray CJ, Gakidou E. Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980-2013: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet. 2014 Aug 30;384(9945):766-81. doi: 10.1016/S0140-6736(14)60460-8. Epub 2014 May 29. Erratum In: Lancet. 2014 Aug 30;384(9945):746.
- Cook S, Weitzman M, Auinger P, Nguyen M, Dietz WH. Prevalence of a metabolic syndrome phenotype in adolescents: findings from the third National Health and Nutrition Examination Survey, 1988-1994. Arch Pediatr Adolesc Med. 2003 Aug;157(8):821-7. doi: 10.1001/archpedi.157.8.821.
- de Ferranti SD, Gauvreau K, Ludwig DS, Neufeld EJ, Newburger JW, Rifai N. Prevalence of the metabolic syndrome in American adolescents: findings from the Third National Health and Nutrition Examination Survey. Circulation. 2004 Oct 19;110(16):2494-7. doi: 10.1161/01.CIR.0000145117.40114.C7. Epub 2004 Oct 11.
- Kahn SE, Prigeon RL, McCulloch DK, Boyko EJ, Bergman RN, Schwartz MW, Neifing JL, Ward WK, Beard JC, Palmer JP, et al. Quantification of the relationship between insulin sensitivity and beta-cell function in human subjects. Evidence for a hyperbolic function. Diabetes. 1993 Nov;42(11):1663-72. doi: 10.2337/diab.42.11.1663.
- Turnbaugh PJ, Hamady M, Yatsunenko T, Cantarel BL, Duncan A, Ley RE, Sogin ML, Jones WJ, Roe BA, Affourtit JP, Egholm M, Henrissat B, Heath AC, Knight R, Gordon JI. A core gut microbiome in obese and lean twins. Nature. 2009 Jan 22;457(7228):480-4. doi: 10.1038/nature07540. Epub 2008 Nov 30.
- Cacciari E, Milani S, Balsamo A, Spada E, Bona G, Cavallo L, Cerutti F, Gargantini L, Greggio N, Tonini G, Cicognani A. Italian cross-sectional growth charts for height, weight and BMI (2 to 20 yr). J Endocrinol Invest. 2006 Jul-Aug;29(7):581-93. doi: 10.1007/BF03344156.
- Turnbaugh PJ, Ley RE, Mahowald MA, Magrini V, Mardis ER, Gordon JI. An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest. Nature. 2006 Dec 21;444(7122):1027-31. doi: 10.1038/nature05414.
- Turnbaugh PJ, Ridaura VK, Faith JJ, Rey FE, Knight R, Gordon JI. The effect of diet on the human gut microbiome: a metagenomic analysis in humanized gnotobiotic mice. Sci Transl Med. 2009 Nov 11;1(6):6ra14. doi: 10.1126/scitranslmed.3000322.
- Raoult D. Obesity pandemics and the modification of digestive bacterial flora. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2008 Aug;27(8):631-4. doi: 10.1007/s10096-008-0490-x. Epub 2008 Mar 6.
- Ley RE. Obesity and the human microbiome. Curr Opin Gastroenterol. 2010 Jan;26(1):5-11. doi: 10.1097/MOG.0b013e328333d751.
- Okeke F, Roland BC, Mullin GE. The role of the gut microbiome in the pathogenesis and treatment of obesity. Glob Adv Health Med. 2014 May;3(3):44-57. doi: 10.7453/gahmj.2014.018. No abstract available.
- Ley RE, Backhed F, Turnbaugh P, Lozupone CA, Knight RD, Gordon JI. Obesity alters gut microbial ecology. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Aug 2;102(31):11070-5. doi: 10.1073/pnas.0504978102. Epub 2005 Jul 20.
- Schwiertz A, Taras D, Schafer K, Beijer S, Bos NA, Donus C, Hardt PD. Microbiota and SCFA in lean and overweight healthy subjects. Obesity (Silver Spring). 2010 Jan;18(1):190-5. doi: 10.1038/oby.2009.167. Epub 2009 Jun 4.
- Fukuda S, Ohno H. Gut microbiome and metabolic diseases. Semin Immunopathol. 2014 Jan;36(1):103-14. doi: 10.1007/s00281-013-0399-z. Epub 2013 Nov 6.
- Angelakis E, Armougom F, Million M, Raoult D. The relationship between gut microbiota and weight gain in humans. Future Microbiol. 2012 Jan;7(1):91-109. doi: 10.2217/fmb.11.142.
- Cole TJ, Lobstein T. Extended international (IOTF) body mass index cut-offs for thinness, overweight and obesity. Pediatr Obes. 2012 Aug;7(4):284-94. doi: 10.1111/j.2047-6310.2012.00064.x. Epub 2012 Jun 19.
- Cruz ML, Goran MI. The metabolic syndrome in children and adolescents. Curr Diab Rep. 2004 Feb;4(1):53-62. doi: 10.1007/s11892-004-0012-x.
- Società Italiana di Nutrizione Umana.(2014).Livelli di assunzione raccomandati di energia e nutrienti per la popolazione italiana (LARN). Milan, Italy: S.I.N.U.
- Tanner JM. (1961). Growth at adolescence. 2 edn. Oxford: Blackwell Scientific Publications.
- Prodam F, Ricotti R, Agarla V, Parlamento S, Genoni G, Balossini C, Walker GE, Aimaretti G, Bona G, Bellone S. High-end normal adrenocorticotropic hormone and cortisol levels are associated with specific cardiovascular risk factors in pediatric obesity: a cross-sectional study. BMC Med. 2013 Feb 20;11:44. doi: 10.1186/1741-7015-11-44.
- Prodam F, Savastio S, Genoni G, Babu D, Giordano M, Ricotti R, Aimaretti G, Bona G, Bellone S. Effects of growth hormone (GH) therapy withdrawal on glucose metabolism in not confirmed GH deficient adolescents at final height. PLoS One. 2014 Jan 30;9(1):e87157. doi: 10.1371/journal.pone.0087157. eCollection 2014.
- Prodam F, Zanetta S, Ricotti R, Marolda A, Giglione E, Monzani A, Walker GE, Rampone S, Castagno M, Bellone S, Petri A, Aimaretti G, Bona G. Influence of Ultraviolet Radiation on the Association between 25-Hydroxy Vitamin D Levels and Cardiovascular Risk Factors in Obesity. J Pediatr. 2016 Apr;171:83-9.e1. doi: 10.1016/j.jpeds.2015.12.032. Epub 2016 Jan 12.
- Hogg RJ, Furth S, Lemley KV, Portman R, Schwartz GJ, Coresh J, Balk E, Lau J, Levin A, Kausz AT, Eknoyan G, Levey AS; National Kidney Foundation's Kidney Disease Outcomes Quality Initiative. National Kidney Foundation's Kidney Disease Outcomes Quality Initiative clinical practice guidelines for chronic kidney disease in children and adolescents: evaluation, classification, and stratification. Pediatrics. 2003 Jun;111(6 Pt 1):1416-21. doi: 10.1542/peds.111.6.1416.
- Solito A, Bozzi Cionci N, Calgaro M, Caputo M, Vannini L, Hasballa I, Archero F, Giglione E, Ricotti R, Walker GE, Petri A, Agosti E, Bellomo G, Aimaretti G, Bona G, Bellone S, Amoruso A, Pane M, Di Gioia D, Vitulo N, Prodam F. Supplementation with Bifidobacterium breve BR03 and B632 strains improved insulin sensitivity in children and adolescents with obesity in a cross-over, randomized double-blind placebo-controlled trial. Clin Nutr. 2021 Jul;40(7):4585-4594. doi: 10.1016/j.clnu.2021.06.002. Epub 2021 Jun 11.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- CE 165/13
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
produit fabriqué et exporté des États-Unis.
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .
Essais cliniques sur Placebos
-
SamA Pharmaceutical Co., LtdInconnueBronchite aiguë | Infection aiguë des voies respiratoires supérieuresCorée, République de
-
Heptares Therapeutics LimitedComplétéPharmacocinétique | Des problèmes de sécuritéRoyaume-Uni
-
National Institute on Drug Abuse (NIDA)ComplétéConsommation de cannabisÉtats-Unis
-
AkesoPas encore de recrutementLa dermatite atopiqueChine
-
AstraZenecaParexel; Spandauer Damm 130; 14050; Berlin, GermanyComplétéSujets masculins atteints de diabète de type II (T2DM)Allemagne
-
Shijiazhuang Yiling Pharmaceutical Co. LtdXuanwu Hospital, BeijingComplétéMaladie de ParkinsonChine
-
Chong Kun Dang PharmaceuticalInconnueHypertension | DyslipidémiesCorée, République de
-
CellmedisMedical Network Sp. z o.o.Pas encore de recrutement
-
Texas A&M UniversityNutraboltComplétéRéponse du glucose et de l'insuline