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새로운 발병형 1형 당뇨병이 있는 피험자의 면역 프로파일

2018년 10월 4일 업데이트: GlaxoSmithKline

새로운 발병 T1 당뇨병(NOT1D)이 있는 피험자의 말초 면역 체계 탐색

새로운 발병형 1형 진성 당뇨병(NOT1D) 피험자의 면역 체계의 초기 변화는 서혜부 림프절(iLN)의 면역 세포에서 감지될 수 있으며, 이는 말초 혈액 유래 면역 세포에서 관찰되는 변화와 구별될 것이라고 가정합니다. 따라서 이 연구는 베타 세포 파괴로 이어질 수 있는 면역학적 과정을 이해하기 위해 건강한 피험자와 NOT1D 피험자의 iLN에서 파생된 세포의 분자 면역 프로필을 평가하고 비교할 것입니다. 다기관, 비약물 치료 연구입니다. 각 그룹에서 최대 15명의 피험자, 즉 건강한 피험자와 NOT1D 피험자가 연구에서 평가됩니다. 최대 5명의 건강한 피험자를 모집한 후 흡인 또는 코어 생검 또는 말초 혈액에서 추출한 세포의 품질과 양이 충족하기 위해 연구를 계속하기에 충분한지 여부를 결정하기 위해 데이터 조회가 수행됩니다. 그것의 주요 목표. 평가 가능한 건강한 피험자 5명과 평가 가능한 NOT1D 피험자 5명을 모집한 후 중간 분석을 수행합니다. 이 중간 분석의 주요 목적은 잠재적인 후속 개입 연구를 위한 의사 결정 및 연구 설계를 용이하게 하는 것입니다.

연구 개요

연구 유형

중재적

등록 (실제)

22

단계

  • 해당 없음

연락처 및 위치

이 섹션에서는 연구를 수행하는 사람들의 연락처 정보와 이 연구가 수행되는 장소에 대한 정보를 제공합니다.

연구 장소

      • Cambridge, 영국, CB2 0QQ
        • GSK Investigational Site
      • Cardiff, 영국, CF14 4XN
        • GSK Investigational Site

참여기준

연구원은 적격성 기준이라는 특정 설명에 맞는 사람을 찾습니다. 이러한 기준의 몇 가지 예는 개인의 일반적인 건강 상태 또는 이전 치료입니다.

자격 기준

공부할 수 있는 나이

18년 (성인)

건강한 자원 봉사자를 받아들입니다

연구 대상 성별

모두

설명

포함 기준:

  • 정보에 입각한 동의서에 서명할 당시 18세에서 40세 사이입니다.
  • 건강한 피험자는 병력, 신체 검사 및 실험실 테스트를 포함한 의료 평가를 기반으로 조사자 또는 의학적으로 자격을 갖춘 피지명인이 결정합니다.
  • 피험자는 공복 혈당, 당화혈색소(HbA1c), 국제 표준화 비율(INR), 활성화 부분 트롬보플라스틴 시간(APTT), 혈소판 수, 적혈구 및 총 림프구 수와 같은 매개변수 값이 정상 범위 내에 있는 경우 건강한 것으로 간주됩니다. 심사 범위.
  • 미국 당뇨병 협회(ADA) 및 세계 보건 기구(WHO) 기준에 따라 진성 당뇨병 진단이 문서화되고 1a형(자가면역) 진성 당뇨병과 일치하는 NOT1D 피험자, 초기 진단과 1일 사이에 최대 8주의 간격 연구(1일 = "iLN 생검"일).
  • 현재 1형 당뇨병(T1D)에 대한 인슐린 치료가 필요하고 스크리닝 전 최소 7일 동안 인슐린 치료를 받은 NOT1D 피험자.
  • T1D와 관련된 적어도 하나의 자가항체에 대해 스크리닝 시 양성인 NOT1D 피험자: 항-글루탐산 데카르복실라제(GAD), 항-섬 항원 2(IA-2), 항-섬 세포 항체(ICA), 항-인돌 3 아세트산 산(IAA), 항아연 수송체 8(ZnT8).
  • 공복 C-펩티드 수준 >=0.15 나노몰/리터(nmol/L)로 측정된 바와 같이 스크리닝 시 잔여 기능 베타 세포의 증거가 있는 NOT1D 피험자.
  • 다음 매개변수에 대한 값을 갖는 NOT1D 피험자: 스크리닝 시 정상 범위 내의 INR, APTT, 혈소판 수, 적혈구 및 총 림프구 수.
  • 남성 또는 여성 피험자 모두 본 연구에 참여할 자격이 있습니다. 여성 피험자는 임신하지 않았거나[음성 소변 인간 융모막 성선 자극 호르몬(hCG) 검사로 확인됨], 스크리닝 및 연구 방문(들)에서 수유 중이 아니거나, 가임 가능성이 없다는 문서화된 증거가 있는 경우에만 참여 자격이 있습니다. .
  • 연구 요구 사항 및 연구 제한 사항 준수를 포함하는 서명된 사전 동의를 제공할 수 있습니다.
  • 포함 또는 제외 기준에 구체적으로 나열되지 않은 임상적 이상 또는 실험실 매개변수가 있는 피험자는 조사자가 다음과 같은 경우 의료 모니터와 상의하여 포함할 수 있습니다. 결과가 추가 위험 요소를 도입할 가능성이 없으며 연구 절차를 방해하지 않을 것임을 요구하고 동의하고 문서화합니다.

제외 기준:

  • T1D의 가족력이 있는 건강한 피험자(즉, 직계 가족이 T1D로 진단됨)
  • 항-GAD, 항-IA2, 항-ICA, 항-IAA, 항-ZnT8, 항갑상샘 퍼옥시다제 항체, 항조직 트랜스글루타미나제 항체 및 항핵 항체와 같은 혈청 자가항체 중 하나 이상이 존재하는 건강한 피험자 .
  • T1D 이외의 자가면역 질환 병력이 있는 NOT1D 피험자
  • 항 갑상선 과산화효소 항체, 항조직 트랜스글루타미나아제 항체 또는 항핵 항체 중 하나 이상의 혈청 자가항체가 존재하는 NOT1D 피험자
  • 국소 마취제에 대한 알레르기 또는 편협
  • 다음을 포함하되 이에 국한되지 않는 생검 절차를 금하는 국부 사타구니 상태: 예정된 천자 부위의 활동성 감염/염증, 이전 수술/반흔 또는 의료 모니터와 상의하여 조사자가 절차와 관련이 있다고 간주하는 기타 해부학적 이상 필요한 경우.
  • 출혈 장애의 병력, 항응고제(와파린, 리바록사반을 포함하되 이에 국한되지 않음) 및 항혈소판제(비스테로이드성 항염증제[NSAIDS], 클로피도그렐 등을 포함하되 이에 국한되지 않음)의 현재 또는 향후 지속적인 사용
  • 활동성 또는 미해결 세균 감염, 바이러스 감염, 진균 감염이 1일 전 4주 이내.
  • 1일 전 4주 이내에 섭씨 38도 이상의 알려진 발열 에피소드.
  • 활성 장기 기능 장애 또는 이전 장기 동종이식.
  • 악성 병력(피부의 절제된 기저 암종 또는 자궁경부 상피내 암종 제외).
  • 스크리닝 전 30일 이내에 주요 수술을 받았고/또는 연구 기간 동안(즉, 스크리닝부터 마지막 ​​후속 전화 통화까지) 그러한 수술을 받을 계획입니다.
  • 세포 고갈 요법 또는 면역 조절제 또는 억제제(예: 경구용 스테로이드)를 사용한 현재 또는 이전 치료, 예를 들어 Interleukin(IL)-2, alemtuzumab, (CD) 4, 항-CD5, 항-CD3, 항-CD19, 항-CD20.
  • 백신 접종 = 연구 1일 전 < 28일 또는 연구 기간 동안 계획됨
  • 중재 임상 시험에 현재 참여하고 있습니다. 이전에 중재적 임상시험에 참여한 피험자는 본 연구에 참여하기 전에 이전 중재적 임상시험을 완료한 후 3개월을 기다려야 합니다.
  • 조사자 및/또는 의료 모니터가 안전 문제 또는 조사자의 판단에 따라 피험자를 할 수 없거나 포함할 수 있는 상황으로 인해 피험자를 포함할 수 없다고 간주하는 모든 병력 또는 임상적으로 관련된 이상 연구 절차에 참여하거나 모든 예정된 평가를 완료하기를 꺼립니다.
  • 양성 사전 연구 약물/알코올 선별 검사(처방 약물로 인해 양성이 아닌 경우). 검사 대상 약물의 최소 목록에는 암페타민, 바르비튜레이트, 코카인, 아편류, 카나비노이드 및 벤조디아제핀이 포함됩니다.
  • 조사자가 판단한 대로 생검 절차를 수행하기 위해 사타구니 부위에 접근할 수 없음.

공부 계획

이 섹션에서는 연구 설계 방법과 연구가 측정하는 내용을 포함하여 연구 계획에 대한 세부 정보를 제공합니다.

연구는 어떻게 설계됩니까?

디자인 세부사항

  • 주 목적: 기초_과학
  • 할당: NON_RANDOMIZED
  • 중재 모델: 평행한
  • 마스킹: 없음

무기와 개입

참가자 그룹 / 팔
개입 / 치료
실험적: 건강한 과목
건강한 피험자로부터 최대 30mL의 혈액 샘플을 채취합니다. 사타구니 림프절 미세 바늘 흡인 생검 및 코어 생검이 수행됩니다. 백혈구 하위 집합 표현형 분석은 다음 항원(이에 제한되지는 않음)의 발현을 평가하여 iLN 유래 세포에서 수행됩니다: CD3, CD4, CD8, CD11c, CD14, CD16, CD19, CD24, CD25, CD38, CD45RA, CD56, 인간 백혈구 항원 D 관련(HLA-DR) 및 스커핀(FOXP3)이라고도 하는 포크헤드 박스 P3 단백질.
사타구니 림프절은 초음파로 국소화되고 주사기로 1mL 흡입을 적용하면서 이리저리 바늘 움직임을 사용하여 21 게이지 바늘과 5mL 주사기로 샘플링합니다. 면역 세포를 유도하기 위해 최대 2개의 미세 바늘 흡인 계대가 얻어질 것입니다.
사타구니 림프절은 초음파로 국소화되고 세침 흡인 후 절개가 이루어집니다. 면역 세포를 추출하기 위해 최대 5개의 코어 생검을 얻을 것입니다.
면역 세포를 추출하기 위해 혈액 샘플(30mL)을 수집합니다.
모든 피험자는 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대한 설문지를 작성해야 합니다.
실험적: NOT1D가 있는 피험자
NOT1D 대상자로부터 최대 30mL의 혈액 샘플을 수집합니다. 사타구니 림프절 미세 바늘 흡인 생검 및 코어 생검이 수행됩니다. 백혈구 하위 집합 표현형 분석은 다음 항원(이에 제한되지는 않음)의 발현을 평가하여 iLN 유래 세포에서 수행됩니다: CD3, CD4, CD8, CD11c, CD14, CD16, CD19, CD24, CD25, CD38, CD45RA, CD56, HLA-DR 및 FOXP3.
사타구니 림프절은 초음파로 국소화되고 주사기로 1mL 흡입을 적용하면서 이리저리 바늘 움직임을 사용하여 21 게이지 바늘과 5mL 주사기로 샘플링합니다. 면역 세포를 유도하기 위해 최대 2개의 미세 바늘 흡인 계대가 얻어질 것입니다.
사타구니 림프절은 초음파로 국소화되고 세침 흡인 후 절개가 이루어집니다. 면역 세포를 추출하기 위해 최대 5개의 코어 생검을 얻을 것입니다.
면역 세포를 추출하기 위해 혈액 샘플(30mL)을 수집합니다.
모든 피험자는 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대한 설문지를 작성해야 합니다.

연구는 무엇을 측정합니까?

주요 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
혈액 내 B 림프구, 고전적 B 림프구, 이중 음성 B 림프구, 나이브 B 림프구, 형질모세포 및 이행 B 림프구를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 분석은 연구 평가를 완료한 모든 참가자로 구성된 안전 인구를 기반으로 했습니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 B 림프구, 고전 B 림프구, 이중 음성 B 림프구, 나이브 B 림프구, 형질모세포 및 이행 B 림프구를 포함한 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
B 세포, 분화 클러스터 56 양성(CD56+) CD16+, CD56bright 자연 살해(NK) 세포, CD56lo CD16+, CD56lo CD16 음성(CD56lo CD16-), 수지상 세포, 혈중 NK 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 B-세포, CD56+ CD16+, CD56bright NK 세포, CD56lo CD16+, CD56lo CD16-, 수지상 세포, NK 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
혈액 내 CD56+CD16+, CD56bright NK 세포, CD56lo CD16+ 및 CD56lo CD16-를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD56+CD16+, CD56밝은 NK 세포 CD56lo CD16+ 및 CD56lo CD16-를 포함하는 백혈구 부분집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
혈액 내 골수 수지상 세포 및 형질세포 수지상 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 골수 수지상 세포 및 형질세포 수지상 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA였습니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석되었습니다(대표 카테고리 제목에서 n=x로).
1일 생검 세션
혈액 내 CD14+ CD16+ 단핵구, CD14+ 단핵구 및 CD16+ 단핵구를 포함하는 백혈구 하위세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD14+ CD16+ 단핵구, CD14+ 단핵구 및 CD16+ 단핵구를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
혈액 내 CD45RA+ 이펙터 메모리 CD8, 중앙 메모리 CD8, 이펙터 메모리 CD8, 나이브 CD8 및 줄기 세포 메모리 유사 CD8 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD45RA+ 이펙터 메모리 CD8, 중앙 메모리 CD8, 이펙터 메모리 CD8, 나이브 CD8 및 줄기 세포 메모리 유사 CD8 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 생검 세션
혈액 내 PD-1(Programmed Death 1) + ICOS(Inducible Costimulator) + TFH(Follicular Helper T) 세포 유사 조절(Reg) T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
말초 혈액 샘플은 T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 수집하도록 계획되었습니다. 본 분석에서는 모델의 수렴성이나 모델의 신뢰성이 부족하여 데이터를 수집하지 못하여 결과를 제시하지 못함
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 PD-1+ ICOS+ TFH 세포 유사 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
혈액 내 PD-1+ ICOS+ TFH 세포를 포함하는 백혈구 하위세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 PD-1+ ICOS+ TFH 세포를 포함하는 백혈구 하위세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 생검 세션
혈액 내 중앙 기억 기존(Conv) T 세포, 효과기 기억 Conv T 세포, Naive Conv T 세포 및 줄기 세포 기억 유사 Conv T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 중앙 기억 전환 T 세포, 이펙터 기억 전환 T 세포, 나이브 전환 T 세포 및 줄기 세포 기억 유사 전환 T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 생검 세션
혈액 내 TFH 세포, PD-1+ ICOS+ TFH 세포, 유형 17 T 헬퍼(TH17) 세포, TH1 세포, TH1 TH17 세포, TH1 TH17 TH2 T 세포, TH1 TH2 세포, TH2 세포 및 TH22 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 TFH 세포, PD-1+ ICOS+ TFH 세포, 유형 17 T 헬퍼(TH17) 세포, TH1 세포, TH1 TH17 세포, TH1 TH17 TH2 T 세포, TH1 TH2 세포, TH2 세포 및 TH22 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
혈액 내 TFH 세포, PD-1+ ICOS+ TFH 세포, TH1 세포, TH1 TH17 세포, TH1 TH17 TH2 세포, TH1 TH2 세포, TH17 세포, TH2 세포 및 TH22 세포 유사 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 TFH 세포, PD-1+ ICOS+ TFH 세포, TH1 세포, TH1 TH17 세포, TH1 TH17 TH2 세포, TH1 TH2 세포, TH17 세포, TH2 세포 및 TH22 세포 유사 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
혈액 내 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 부분집합의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 부분집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 생검 세션
혈액 내 CD69+ CD8 및 항원 Ki67(Ki67)+ CD8을 포함하는 백혈구 하위세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD69+ CD8 및 항원 Ki67(Ki67)+ CD8을 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
혈액 내 CD15s+ Reg T 세포, CD69+ Reg T 세포, Helios+ Reg T 세포, Ki67+ T Reg 세포, 기억 Reg T 세포 및 휴식 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD15s+ Reg T 세포, CD69+ Reg T 세포, Helios+ Reg T 세포, Ki67+ T Reg 세포, 기억 Reg T 세포 및 휴식 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
혈액 내 CD15s+ Conv T 세포, CD69+ Conv T 세포, Helios+ Conv T 세포 및 Ki67+ Conv T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD15s+ Conv T 세포, CD69+ Conv T 세포, Helios+ Conv T 세포 및 Ki67+ Conv T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
혈액 내 CD15s+ 기억 전환 T 세포, CD69+ 기억 전환 T 세포, Helios+ 기억 전환 T 세포 및 Ki67+ 기억 전환 T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 차 생검 전 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 표시된 시점에서 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 말초 혈액 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다.
1일 차 생검 전 세션
ILN에서 CD15s+ 기억 전환 T 세포, CD69+ 기억 전환 T 세포, Helios+ 기억 전환 T 세포 및 Ki67+ 기억 전환 T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션

2차 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 B 림프구, 고전적 B 림프구, 이중 음성 B 림프구, 나이브 B 림프구, 원형질모세포 및 이행 B 림프구를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 핵심 생검 및 iLN FNA에서 B-세포, CD56+ CD16+, CD56bright NK 세포, CD56lo CD16+, CD56lo CD16, 수지상 세포, NK 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD56+CD16+, CD56br NK 세포 CD56lo CD16+ 및 CD56lo CD16-를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 골수 수지상 세포 및 형질세포 수지상 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD14+ CD16+ 단핵구, CD14+ 단핵구 및 CD16+ 단핵구를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
단핵구 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD45RA+ 이펙터 메모리 CD8, 중앙 메모리 CD8, 이펙터 메모리 CD8, 나이브 CD8 및 줄기 세포 메모리 유사 CD8을 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 PD-1+ ICOS+ TFH 세포 유사 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 PD-1+ ICOS+ TFH 세포를 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 중앙 기억 전환 T 세포, 이펙터 기억 전환 T 세포, 나이브 전환 T 세포 및 줄기 세포 기억 유사 전환 T 세포를 포함한 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 TFH 세포, PD-1+ ICOS+ TFH 세포, TH17 세포, TH1 세포, TH1 TH17 세포, TH1 TH17 TH2 T 세포, TH1 TH2 세포, TH2 세포 및 TH22 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA
기간: 1일 생검 세션
T 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨). NA는 데이터를 사용할 수 없음을 나타냅니다.
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD69+ CD8 및 항원 Ki67(Ki67)+ CD8을 포함하는 백혈구 서브세트의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD15s+ Reg T 세포, CD69+ Reg T 세포, Helios+ Reg T 세포, Ki67+ T Reg 세포, 기억 Reg T 세포 및 휴식 Reg T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD15s+ 전환 T 세포, CD69+ 전환 T 세포, Helios+ 전환 T 세포 및 Ki67+ 전환 T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
ILN 코어 생검 및 iLN FNA에서 CD15s+ 기억 전환 T 세포, CD69+ 기억 전환 T 세포, Helios+ 기억 전환 T 세포 및 Ki67+ 기억 전환 T 세포를 포함하는 백혈구 하위 집합의 백분율
기간: 1일 생검 세션
T Reg 세포 패널의 백혈구 하위 집합 분석을 위해 건강한 참가자와 NOT1D 참가자 모두로부터 표시된 시점에서 iLN의 최대 2개의 FNA 계대 및 iLN의 최대 5개의 코어 생검을 포함하여 샘플을 수집했습니다. 세포의 위치 및/또는 질병 상태와 관련된 후보 바이오마커는 유세포 분석 기술을 사용하여 확인되었습니다. 비교를 위한 추정치를 제공하기 위해 일반화된 선형 혼합 모델을 사용하여 각각의 유동 세포 계측법 세포 유형에 대해 개별적으로 데이터를 분석했습니다. 고정 범주는 그룹, 샘플 유형 및 그룹과 샘플 유형의 상호 작용이었습니다. 여기서 그룹은 HV 또는 NOT1D이고 샘플 유형은 말초 혈액, 코어 생검 또는 FNA입니다. 특정 시점에서 데이터를 사용할 수 있는 참가자만 분석했습니다(범주 제목에서 n=x로 표시됨).
1일 생검 세션
심각한 부작용(SAE) 및 비SAE가 있는 참가자 수
기간: 14일까지
AE는 연구 치료제와 관련된 것으로 간주되는지 여부에 관계없이 연구 치료제의 사용과 일시적으로 관련된 임상 연구 참여자에게서 발생하는 뜻밖의 의학적 사건입니다. SAE는 모든 용량에서 사망을 초래하거나, 생명을 위협하거나, 입원 또는 기존 입원의 연장이 필요하거나, 장애/무능을 초래하거나, 선천적 기형/선천적 결함 또는 기타 상황인 예기치 않은 의료 사건으로 정의됩니다.
14일까지
국소 마취하에 시술을 받는 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 전 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 국소 마취하에 시술을 받은 참가자의 수가 제시되었습니다.
4일차까지
국소 마취하에 iLN 생검을 받는 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 전 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 국소 마취하에 iLN 생검을 받은 참가자의 수가 제시되었습니다.
4일차까지
연구 참여 이유가 다른 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 전 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 다른 이유는 다음과 같이 나열되었습니다. 당뇨병(DM)을 가진 친구가 있거나 지식을 향상시키기 위해, 의약품 개발을 개선하기 위해, 사례금을 위해 연구에 참여하는 경우, 위에 나열되지 않은 다른 이유는 "기타"로 분류되었으며 참가자는 위의 세 가지 이유를 모두 포함하여 참여했습니다. 연구에서 "모든 이유" 범주에 포함되었습니다.
4일차까지
림프절 생검에 대한 극심한 불안을 가진 참여자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 전 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 절차에 대해 극도의 불안을 가진 참가자의 수가 제시되었습니다.
4일차까지
절차를 기대하는 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 전 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 절차를 받기를 기대하는 참가자의 수가 제시되었습니다.
4일차까지
림프절 생검 절차에 대해 더 잘 설명된 측면이 있는 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 후 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 더 잘 설명된 측면은 다음과 같습니다. 그 자체, 마취 절차, 애프터 케어, 없음 및 위에 나열되지 않은 다른 절차는 "기타"로 분류되었습니다.
4일차까지
림프절 생검 절차를 다시 받을 것을 고려한 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 후 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 다음 시술을 고려한 참가자의 수를 제시했습니다.
4일차까지
ILN 생검을 위한 연구에 포함하도록 권장된 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 후 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. iLN 생검 연구에 참여하도록 권장된 참가자가 발표되었습니다.
4일차까지
연구 피드백을 받은 것에 감사한 참가자 수
기간: 4일차까지
참가자들은 FNA 생검 후 코어 바늘 생검 절차를 거치는 것에 대한 기대/경험에 대해 생검 후 림프절 설문지를 작성하도록 요청받았습니다. 연구 피드백을 받는 것에 감사한 참가자들이 발표되었습니다.
4일차까지

공동 작업자 및 조사자

여기에서 이 연구와 관련된 사람과 조직을 찾을 수 있습니다.

스폰서

연구 기록 날짜

이 날짜는 ClinicalTrials.gov에 대한 연구 기록 및 요약 결과 제출의 진행 상황을 추적합니다. 연구 기록 및 보고된 결과는 공개 웹사이트에 게시되기 전에 특정 품질 관리 기준을 충족하는지 확인하기 위해 국립 의학 도서관(NLM)에서 검토합니다.

연구 주요 날짜

연구 시작 (실제)

2016년 7월 25일

기본 완료 (실제)

2017년 12월 21일

연구 완료 (실제)

2017년 12월 21일

연구 등록 날짜

최초 제출

2016년 6월 13일

QC 기준을 충족하는 최초 제출

2016년 6월 13일

처음 게시됨 (추정)

2016년 6월 16일

연구 기록 업데이트

마지막 업데이트 게시됨 (실제)

2019년 2월 27일

QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출

2018년 10월 4일

마지막으로 확인됨

2018년 7월 1일

추가 정보

이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .

제1형 당뇨병에 대한 임상 시험

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