- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT06940973
Studio di embrioni fecondati anormalmente (SAFE)
Studio osservazionale prospettico della morfocinetica e della ploidia delle blastocisti con fecondazione anormale (1pn, 2.1pn e 3pn) per identificare l'origine delle alterazioni della fecondazione
L'obiettivo di questo studio osservazionale è determinare il tasso di diploidia degli embrioni aploidi e triploidi dai cicli di fecondazione in vitro (IVF). Le domande principali a cui mira a rispondere sono:
- È possibile utilizzare un controllo di fecondazione genetica molecolare di embrioni fecondati anormalmente per espandere le opportunità per le coppie sottoposte a trattamento di riproduzione assistito?
- La perdita o il guadagno cromosomico presente negli embrioni anormalmente fecondati di origine prevalentemente materna?
A tale scopo, valuteremo la morfocinetica e la ploidia di circa 300 embrioni con diversi tipi di modelli pronucleari anormali (1pn, 2,1 pn e 3pn) che raggiungono lo stadio di blastocisti. Quando possibile, verranno anche valutati embrioni con un complemento cromosomico non diploide per determinare l'origine (materna o paterna) dell'insieme cromosomico che è stato perso o guadagnato.
Le materie dello studio seguiranno il trattamento IVF/ICSI precedentemente pianificato e non saranno necessarie ulteriori visite/interventi per la partecipazione.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
I cromosomi sono strutture cellulari contenenti la maggior parte delle informazioni genetiche di un organismo vivente. I gameti (ovociti e spermatozoi) contengono solo un singolo set di 23 cromosomi all'interno di strutture note come pronuclei (PN). Dopo la fecondazione, i 23 cromosomi dall'ovocita e i 23 cromosomi dallo sperma si combinano per formare uno zigote da 2 pn, che contiene un totale di 46 cromosomi.
Nei laboratori di riproduzione assistita (ART), gli embriologi possono determinare attraverso la valutazione morfologica se il processo di fertilizzazione era normale (2pn) o anormale (0pn, 1pn o> 2pn). Per un trattamento artistico, solo un ovocita fertilizzato con successo (2PN) che si sviluppa nella fase di blastocisti può essere adatto per il trasferimento di embrioni. Tuttavia, studi precedenti hanno dimostrato che alcuni embrioni di ovociti con fecondazione anormale possono possedere un normale contenuto cromosomico e potrebbero essere usati nelle arti quando gli embrioni della normale fecondazione non sono disponibili.
Esistono tecniche di analisi genetica per determinare non solo se un embrione è euploide (contiene un numero normale di cromosomi) ma anche per valutare se è aploide, diploide o triploide (1pn, 2,1pn e 3pn rispettivamente). Queste tecniche possono essere applicate agli embrioni di "salvataggio" con fecondazione anormale che sono attualmente in fase di scarto. Questo approccio potrebbe essere benefico per i pazienti con fecondazione in vitro con un numero limitato di embrioni vitali disponibili (diminuiti casi di riserva ovarica, età materna avanzata, scarsa risposta alla stimolazione ovarica, ecc.).
L'attuale studio prospettico e osservazionale è stato approvato dal comitato etico della ricerca competente e ogni potenziale partecipante verrà chiesto di firmare il consenso informato dello studio.
I 300 embrioni che faranno parte dello studio saranno reclutati nel laboratorio del Centro collaboratore il giorno della fecondazione dopo aver eseguito le procedure convenzionali di fecondazione in vitro. Seguendo queste stesse procedure di routine, verranno anche conservati campioni biologici di entrambi i genitori per eseguire l'analisi genetica per determinare l'origine delle anomalie cromosomiche. Una biopsia verrà presa dagli embrioni selezionati quando raggiungono lo stadio di blastocisti per l'analisi genetica che consentirà di rilevare se esiste davvero un'anomalia cromosomica. Tutti gli embrioni non confermati come cromosomicamente normali saranno scongelati, lavati e coltivati per una seconda biopsia per confermare la loro diagnosi precedente e l'origine delle anomalie cromosomiche. Per questa nuova analisi, oltre alle biopsie, verranno raccolti e conservati campioni individuali dei mezzi di coltura delle blastocisti scongelate. I campioni verranno spediti a Igenomix per la ricerca genetica e un'ulteriore analisi dei dati.
La durata prevista dello studio è di 18 mesi. Gli embrioni saranno inclusi nel centro partecipante per un periodo stimato di 13 mesi. Il coinvolgimento dei partecipanti nello studio è appena legato al momento della firma del modulo di consenso. Eccezionalmente, embrioni di fecondazione anormale che sono stati informati come cromosomicamente normali dopo che la prima biopsia può essere considerata trasferimento per il trasferimento a condizione che non vi siano altri embrioni disponibili. Se il paziente decide di procedere con il trasferimento, il suo follow-up clinico farà parte dello studio fino a raggiungere la gravidanza in corso (12 settimane gestazionali). Successivamente, la sua partecipazione allo studio finirà ma il suo medico continuerà a monitorare la gravidanza fino al parto, se applicabile, in conformità con la pratica clinica standard.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Carlos A Gomez De La Cruz, BSc MSc
- Numero di telefono: +34963905310
- Email: carlos.gomez@igenomix.com
Luoghi di studio
-
-
Comunidad Valenciana
-
Valencia, Comunidad Valenciana, Spagna, 46015
- Equipo Médico Crespo Valencia
-
Contatto:
- Jose Teruel López, BSc MSc
- Numero di telefono: +34 961 042 557
- Email: jteruel@juanacrespo.es
-
Contatto:
- María Escribá Suarez, BSc MSc
-
Contatto:
- Marina Benavent Martínez, BSc MSc
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criteri di inclusione:
- Pazienti artistici che firmano il consenso informato dello studio.
- Età: ovociti di donne ≤ 49 anni e seme da uomini ≤ 60 anni. È consentita una donazione di gameti.
- ≥1 blastocisti di ovociti con un modello pronucleare anormale (1pn, 2,1 pn e/o 3pn) e con la presenza di 2 corpi polari (PB), coltivati in un incubatore time-lapse.
Criteri di esclusione:
- Non sono stati considerati criteri di esclusione per questo studio.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
Blastocisti da ovociti fecondati anormalmente durante la riproduzione assistita
Durante le procedure convenzionali ICSI/IVF in laboratorio, l'embriologo che osserva la fecondazione identificherà gli embrioni con un modello pronucleare anormale e li preselezionerà per lo studio. Questi embrioni saranno coltivati in un incubatore time-lapse seguendo la pratica standard del laboratorio. Tutti i parametri morfocinetici registrati, insieme alle immagini corrispondenti, saranno documentati. Ogni embrione verrà monitorato, la sua qualità di sviluppo valutata e registrata per determinare se raggiunge la fase di blastocisti. In tal caso, i ricercatori contatteranno il paziente per chiedere il consenso a questi embrioni di essere incluso nello studio. Gli embrioni con un modello pronucleare anormale che non riescono a raggiungere la fase di blastocisti a causa del blocco dello sviluppo saranno scartati. Non verranno utilizzati farmaci o dispositivi medici. |
Alla fecondazione, seguendo la procedura ICSI/IVF convenzionale, verranno recuperati campioni di cellule di cumulus (ottenute durante il processo di denudazione degli ovociti di routine) e le cellule di sperma in eccesso presenti nel plasma seminale. Questi campioni saranno conservati congelati a -20 ° C fino a quando non verranno inviati a Igenomix. Lì saranno utilizzati per eseguire l'analisi genetica richiesta per raggiungere gli obiettivi dello studio, a condizione che il paziente acconsenta a partecipare. Se il paziente alla fine sceglie di non partecipare, questi campioni verranno distrutti. Ai genitori può essere chiesto di fornire un campione di saliva per lo stesso scopo nei casi in cui non era possibile ottenere i campioni durante la fecondazione o se i campioni raccolti non erano adatti per l'elaborazione in laboratorio. Il campione di saliva può essere raccolto presso la clinica durante una delle visite programmate per il trattamento riproduttivo o, in alternativa, dai genitori di casa usando un kit fornito dalla clinica.
Il giorno 3 dello sviluppo, verrà eseguita la cova assistita per facilitare la biopsia nella fase di blastocisti.
Ogni embrione verrà biopsato in laboratorio utilizzando tecniche di biopsia Trofectoderm (TE) convenzionali il giorno +5, +6 o +7 di sviluppo, a seconda di quando raggiungono la fase di blastocisti appropriata.
Dopo la biopsia, la blastocisti verrà vetrificata seguendo il protocollo di routine clinico e memorizzerà fino a quando non saranno disponibili i risultati genetici.
I campioni di biopsia verranno posizionati in un tubo PCR etichettato con il corrispondente codice specifico dello studio e conservati in un rack a freddo a 4 ° C prima di essere trasferiti su un congelatore a -20 ° C.
Infine, i campioni verranno inviati a Igenomix per test genetici preimpianto per l'aneuploidia.
Dopo aver ottenuto i risultati di PGT-A, qualsiasi embrione non geneticamente confermato come euploide e senza anomalie di ploidia verrà scongelato, lavato e colto per la ribiopsia. Verrà eseguita un'analisi complementare che utilizza tecniche di sequenziamento di nuova generazione (NGS) per confermare la diagnosi e determinare l'origine delle anomalie. Per questa ulteriore analisi, oltre alle nuove biopsie, il mezzo di coltura individuale di ciascun embrione sarà aspirato dopo un periodo di incubazione da 8 a 24 ore. Il mezzo raccolto verrà collocato in tubi PCR e conservato in un congelatore a -20 ° C prima di essere inviato in laboratorio. Indipendentemente dal risultato di queste analisi complementari, nessuna blastocisti ribellata sarà considerata per scopi clinici. |
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Tasso di diploidia negli embrioni aploidi da IVF/ICSI
Lasso di tempo: 3 mesi
|
Numero di blastocisti da 2 pn da ovociti anormalmente fecondati (1pn)
|
3 mesi
|
|
Tasso di diploidia negli embrioni triploidi da IVF/ICSI
Lasso di tempo: 3 mesi
|
Numero di blastocisti da 2 pn da ovociti anormalmente fecondati (2.1pn e 3pn)
|
3 mesi
|
Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Origine delle anomalie cromosomiche negli embrioni con un contenuto cromosomico non diploide
Lasso di tempo: 6 mesi
|
Per determinare l'origine (materna o paterna) dell'insieme cromosomico che è stato perso o guadagnato.
|
6 mesi
|
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Tasso di gravidanza di embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: 2 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
Numero di pazienti con livello sierico positivo di gonadotropina corionica β-umana (βHCG> 25 miu/mL) per trasferimento di embrioni.
Beta-HCG verrà misurato al giorno 12 ± 2 dopo il trasferimento dell'embrione.
|
2 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
|
Tasso di impianto di embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: Fino a 4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
Numero di sacche gestazionali osservate da ultrasuoni vaginali divisi per il numero di embrioni trasferiti.
|
Fino a 4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
|
Tasso di gravidanza biochimica di embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: 4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione con embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
|
Numero di gravidanze diagnosticate solo mediante rilevamento β-HCG senza un sacco gestazionale visualizzato da ecografia vaginale, per numero di gravidanze.
|
4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione con embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
|
|
Tasso di gravidanza ectopica di embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: 4-5 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
Numero di gravidanze al di fuori della cavità uterina, diagnosticata da ultrasuoni, visualizzazione chirurgica o istopatologia, per numero di gravidanze.
|
4-5 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
|
Tasso di aborto clinico degli embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane gestazionali
|
Numero di perdite di gravidanza spontanea prima della settimana 12, in cui era stato precedentemente osservato un SAC/s gestazionale, per numero di gravidanze.
|
Fino a 12 settimane gestazionali
|
|
Tasso di gravidanza in corso di embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: Oltre 12 settimane gestazionali
|
Numero di gravidanze fino a 12 settimane gestazionali (almeno un feto con un battito cardiaco riconoscibile) ottenuto per ogni trasferimento di embrioni.
|
Oltre 12 settimane gestazionali
|
|
Termina di terminazione volontaria degli embrioni euploidi dalla fecondazione anormale
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane gestazionali
|
Numero di terminazioni volontarie prima della settimana 12 per numero di gravidanze.
|
Fino a 12 settimane gestazionali
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Pere Mir Pardo, PhD, Igenomix
- Investigatore principale: Carmen Rubio Lluesa, PhD, Igenomix
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Stimato)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- EJC-SAFE-24-02
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
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