Микробиологическая оценка эффективности воды для очистки внутренних канюль трахеостомии

Трахеостомический уход за больными:

Уход за трахеостомой у всех пациентов, включенных в исследование, будет таким же, как и у любого другого пациента с трахеостомой в больнице, в соответствии с политикой ухода за трахеостомой. Перед процедурой исследования необходимо проверить внутреннюю канюлю, чтобы убедиться, что она не забита секретом, любой секрет должен быть удален отсасыванием.

Методы обеззараживания:

Пациенты могут попасть в группу А или группу В в зависимости от случайного распределения.

Пациенты в группе обеззараживания A: Моющее средство

Предварительное обеззараживание:

• Уход за внутренней канюлей будет удален с соблюдением асептических мер предосторожности.
• 10 мл физиологического раствора будут равномерно промыты вдоль внутренней поверхности в течение 30 секунд. Внутреннюю канюлю осторожно поворачивают, чтобы убедиться, что вся внутренняя поверхность промыта физиологическим раствором.
• Раствор будет собран в стерильную бутылку и отправлен на лабораторный анализ количества колоний.
• Небольшая часть проб перед обеззараживанием будет случайным образом отобрана для типирования и присвоения названий организмам.

Обеззараживание:

• Внутреннюю канюлю очищают имеющейся в продаже жидкостью/порошком для чистки трахеостомии (пример: Trachoe – Kapitex Health, Великобритания).
• Очистка производится в соответствии с рекомендациями производителя.

После обеззараживания:

• Используя асептическую технику, 10 мл физиологического раствора будут равномерно промыты вдоль внутренней поверхности в течение 30 секунд. Внутреннюю канюлю осторожно поворачивают, чтобы убедиться, что вся внутренняя поверхность промыта физиологическим раствором.
• Раствор будет собран в стерильную бутылку и отправлен на лабораторный анализ количества колоний.

Пациенты группы обеззараживания B: Вода

Предварительное обеззараживание:

• Уход за внутренней канюлей будет удален с соблюдением асептических мер предосторожности.
• 10 мл физиологического раствора будут равномерно промыты вдоль внутренней поверхности в течение 30 секунд. Внутреннюю канюлю осторожно поворачивают, чтобы убедиться, что вся внутренняя поверхность промыта физиологическим раствором.
• Раствор будет собран в стерильную бутылку и отправлен на лабораторный анализ количества колоний.
• Небольшая часть проб перед обеззараживанием будет случайным образом отобрана для типирования и присвоения названий организмам.

Обеззараживание:

• Внутренняя канюля очищается в соответствии с текущими рекомендациями по уходу за трахеостомой, как указано в Правилах ухода за трахеостомами в больнице общего профиля Чанги. В соответствии с политикой рекомендуется использовать только стерильную воду.

После обеззараживания:

• Используя асептическую технику, 10 мл физиологического раствора будут равномерно промыты вдоль внутренней поверхности в течение 30 секунд. Внутреннюю канюлю осторожно поворачивают, чтобы убедиться, что вся внутренняя поверхность промыта физиологическим раствором.
• Раствор будет собран в стерильную бутылку и отправлен на лабораторный анализ количества колоний.

Пересечение пациентов:

Чтобы избежать влияния смешанных ковариат, мы предлагаем провести перекрестное исследование. Перекрестный пациент будет действовать как его собственный контроль. Выбранные пациенты будут случайным образом распределены по последовательности AB или BA в соотношении 1:1 с использованием переставленных блоков с разными размерами блоков. Субъекты и операторы лаборатории будут ослеплены размером блока и рандомизацией.

Смена последовательности A > B и B > A произойдет только по прошествии не менее 24 часов после завершения первой части последовательности. Критерии исключения будут по-прежнему применяться после завершения одной части последовательности. Небольшая часть проб перед обеззараживанием будет случайным образом отобрана для типирования и присвоения названий организмам.

Лабораторный метод подсчета колоний:

Из промывочного раствора 100 мкл и последующие последовательные разведения 1:10 (в физиологическом растворе) культивируют непосредственно на чашках с кровяным агаром. После 72-часовой аэробной инкубации при 35°C все чашки исследуют и подсчитывают рост от 10 до 100 колоний на чашку. Общий бактериальный рост будет выражен в виде колониеобразующих единиц (КОЕ)/мл.

Небольшая часть проб перед обеззараживанием будет случайным образом отобрана для типирования и присвоения названий организмам.