- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT02870426
Sammlung und Charakterisierung menschlicher Riechzellen
Unser Ziel ist es, Riechkolben (OBs) von geeigneten menschlichen Spendern zu entnehmen. Wir haben zwei Gruppen definiert, die sich qualifizieren:
Gruppe 1 – Verstorbene Spender:
1A: Spender nach Hirnstammtod (DBDs), die sich einer Organspende unterziehen
1B: Spender nach Hirnstammtod (DBDs), die als ungeeignet für eine Organspende gelten
Gruppe 2 – Lebendspender:
Neurochirurgische Patienten, die sich einer vorderen Schädeloperation unterziehen, bei der der Riechnerv (ON) im Rahmen des chirurgischen Eingriffs durchtrennt wird. Die Geburtshilfe des gleichzeitig abgetrennten ON würde gespendet.
Unser Ziel ist es, die OB-Sammlung sowie die Kultur und Lagerung olfaktorischer umhüllender Zellen (OEC) zu optimieren. Wir werden die Auswirkungen der Patientendiagnose, des Alters, der Todesursache (falls zutreffend), der Komorbiditäten und der warmen ischämischen Zeit auf das Zellüberleben und die regenerative Funktion untersuchen.
In zukünftigen Studien wollen wir OECs in einer GMP-Einrichtung lagern und OECs in Patienten mit Rückenmarksverletzungen transplantieren.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Eine Rückenmarksverletzung (SCI) ist eine verheerende Erkrankung. Bisher gibt es keine Behandlung, die das Ergebnis verbessert. Die Regenerationsfähigkeit des Zentralnervensystems (ZNS) ist begrenzt, so dass beschädigte Neuronen und abgetrennte Axone nicht ersetzt werden.
Zahlreiche Belege deuten darauf hin, dass aus Riechkolben (OBs) gewonnene Riechzellen (olfaktorische Hüllenzellen, OECs) die neuronale Regeneration bei Nagetieren und Menschen mit Querschnittlähmung erleichtern. Tatsächlich verbesserte die Transplantation autologer OECs von einem Geburtshelfer in die Verletzungsstelle das neurologische Ergebnis bei einem Patienten mit Querschnittlähmung.
Die Ernte autologer OBs zur Kultivierung von OECs hat mehrere Nachteile:
- Wenn die OECs in vitro nicht wachsen, wird die Transplantation abgebrochen;
- Der Bergungsvorgang setzt einen gelähmten Patienten den Risiken einer Kraniotomie aus;
- Die Entfernung eines OB kann den Geruchssinn beeinträchtigen; Und
- Die Anzahl der erhaltenen OECs ist auf einen OB begrenzt.
Die Forscher werden menschliche OECs von geeigneten Spendern sammeln, die wir in zwei Gruppen definiert haben. Bei den Patienten der Gruppe 1 handelt es sich um hirntote Spender, die vom Neuro-Intensivpflegeteam als potenzielle Kandidaten für eine Organspende identifiziert wurden. Die OBs werden so nah wie möglich an den Tod geborgen. Bei den Patienten der Gruppe 2 handelt es sich um Lebendspender, die sich einer elektiven Neurochirurgie unterziehen, bei der im Rahmen dieses Eingriffs der Riechnerv geopfert wird.
An der vorderen Schädelbasis befinden sich zwei OBs, die für die Übertragung des Geruchsempfindens von der Nase zum Gehirn verantwortlich sind. Um OECs zu erhalten, ist eine Kraniotomie (Öffnung des Schädels) erforderlich, um die OBs zu entfernen.
PHASE 1 wird in 2 Phasen unterteilt. In Stufe 1 werden wir OECs kultivieren und im Zentrallabor charakterisieren. Unser Ziel ist es zu bestimmen, wie die Ausbeute an OECs und ihre regenerativen Eigenschaften durch Gefrier-Tau-Wechsel, die Verweildauer bei Raumtemperatur und die Verweildauer bei 40 °C vor der Kultur sowie das Alter des Patienten beeinflusst werden. Jede entnommene Probe wird zur weiteren Verarbeitung an das Labor übergeben. Die Verarbeitung umfasst unter anderem die histologische Fixierung, das Schneiden und Färben, die Zellkultur und die Lagerung. Einige OECs werden in flüssigem Stickstoff eingefroren, um festzustellen, ob sie tatsächlich gelagert werden können. In Stufe 2 werden wir OECs außerhalb von St. George's in eine GMP-Einrichtung überführen (noch festzulegen). In der GMP-Anlage werden die OECs gemäß den von uns ermittelten optimierten Bedingungen verarbeitet und gelagert.
In PHASE 2 werden die OECs in Patienten mit SCI transplantiert.
Studientyp
Einschreibung (Voraussichtlich)
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Marios Papadopoulos, FRCS (SN)
- Telefonnummer: 02087254179
- E-Mail: mpapadop@sgul.ac.uk
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Florence Hogg, MBChB
- E-Mail: fhogg@sgul.ac.uk
Studienorte
-
-
Tooting
-
London, Tooting, Vereinigtes Königreich, SW17 0QT
- Rekrutierung
- St George's Hospital
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Beschreibung
Einschlusskriterien:
Gruppe 1 – Verstorbene Spender 1A
- Diagnose von Hirnstammtod UND
- Einwilligung der nächsten Angehörigen (NoK) zur Organspende
- Zustimmung von NoK zur Entfernung von Riechkolben (OBs)
- Zustimmung des Gerichtsmediziners zur Entfernung von OBs (bei Bedarf).
1B
- Diagnose von Hirnstammtod UND
- Kontraindikationen für eine Organspende
- Zustimmung von NoK zur Entfernung von OBs
- Gerichtsmediziner stimmen der Entfernung von OBs zu (bei Bedarf)
Gruppe 2 – Lebende Spender
- Patienten, die sich einer vorderen Schädeloperation unterziehen, bei der das ON im Rahmen des Eingriffs durchtrennt oder entfernt werden kann.
- Zustimmung des operierenden Chirurgen zur Entfernung des OB des entsprechenden ON für den Fall, dass dieser während der Operation durchtrennt wird
- Zustimmung des Patienten zur Entfernung des OB des entsprechenden ON für den Fall, dass dieser während der Operation durchtrennt wird
Ausschlusskriterien:
- Kinder (<18 Jahre)
- Schäden an der vorderen Schädelbasis einschließlich OBs
- Meningitis
Und gilt nur für Gruppe 2:
Patienten, die einer Operation nicht zustimmen können
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Beobachtungsmodelle: Sonstiges
- Zeitperspektiven: Sonstiges
Kohorten und Interventionen
Gruppe / Kohorte |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
|
Gruppe 1A:
Spender nach Hirnstammtod (DBDs), die sich einer Organspende unterziehen
|
Bei Gruppe 1A erfolgt die Kraniotomie während der Organentnahme zur Transplantation unter aseptischer Technik.
Für Gruppe 1B würde es als separater chirurgischer Eingriff vor der Linderung unter vollständiger Asepsis erfolgen.
|
|
Gruppe 1B:
Spender nach Hirnstammtod (DBDs) gelten als ungeeignet für eine Organspende
|
Bei Gruppe 1A erfolgt die Kraniotomie während der Organentnahme zur Transplantation unter aseptischer Technik.
Für Gruppe 1B würde es als separater chirurgischer Eingriff vor der Linderung unter vollständiger Asepsis erfolgen.
|
|
Gruppe 2:
Neurochirurgische Patienten, die sich einer vorderen Schädeloperation unterziehen, bei der der Riechnerv (ON) im Rahmen des chirurgischen Eingriffs durchtrennt wird.
Die Geburtshilfe des gleichzeitig abgetrennten ON würde gespendet.
|
Gruppe 2: Die routinemäßige vordere Schädeloperation des Patienten würde wie geplant ohne Änderung des chirurgischen Eingriffs verlaufen.
Für den Fall, dass der ON für eine Operation geopfert werden müsste, würde der OB des begleitenden Nervs geborgen werden.
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Fähigkeit, olfaktorische Hüllenzellen von menschlichen Spendern zu kultivieren
Zeitfenster: 10-15 Tage
|
Anzahl der olfaktorischen Hüllzellen, die pro Riechkolben an den Tagen 10–15 in vitro kultiviert wurden.
|
10-15 Tage
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Auswirkung der Todesursache für Spender der Gruppe 1
Zeitfenster: 10-15 Tage
|
Diagramm der Todesursache im Vergleich zur Anzahl der pro Riechkolben an den Tagen 10–15 in vitro kultivierten Riechhüllenzellen.
|
10-15 Tage
|
|
Einfluss des Patientenalters
Zeitfenster: 10-15 Tage
|
Diagramm des Patientenalters im Vergleich zur Anzahl der pro Riechkolben an den Tagen 10–15 in vitro kultivierten Riechzellen.
|
10-15 Tage
|
|
Auswirkung von Gefrier-/Tauzyklen
Zeitfenster: 10-15 Tage
|
Diagramm der Anzahl der Einfrier-/Auftauzyklen im Vergleich zur Anzahl der olfaktorischen Hüllzellen, die an den Tagen 10–15 in vitro kultiviert wurden.
|
10-15 Tage
|
|
Auswirkung der Lagerung in flüssigem Stickstoff
Zeitfenster: bis zu 1 Monat
|
Diagramm der Anzahl der olfaktorischen Hüllzellen, die an den Tagen 10–15 in vitro kultiviert wurden, wenn die Zellen frisch kultiviert wurden, vs. nach einer Woche und einem Monat Lagerung in flüssigem Stickstoff.
|
bis zu 1 Monat
|
|
Einfluss der Zeit von der Extraktion bis zur Kultivierung bei Raumtemperatur
Zeitfenster: 1 Monat
|
Diagramm der Zeit von der Extraktion bis zur Kultivierung im Vergleich zur Anzahl der kultivierten Riechhüllenzellen.
|
1 Monat
|
|
Einfluss der Zeit von der Extraktion bis zur Kultur bei 4 °C
Zeitfenster: 1 Monat
|
Diagramm der Zeit von der Extraktion bis zur Kultivierung bei 4 °C im Vergleich zur Anzahl der kultivierten Riechhüllenzellen.
|
1 Monat
|
Mitarbeiter und Ermittler
Ermittler
- Hauptermittler: Marios Papadopoulos, FRCS (SN), St George's, University of London
- Hauptermittler: Samira Saadoun, PhD, St George's, University of London
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Tabakow P, Jarmundowicz W, Czapiga B, Fortuna W, Miedzybrodzki R, Czyz M, Huber J, Szarek D, Okurowski S, Szewczyk P, Gorski A, Raisman G. Transplantation of autologous olfactory ensheathing cells in complete human spinal cord injury. Cell Transplant. 2013;22(9):1591-612. doi: 10.3727/096368912X663532.
- Miedzybrodzki R, Tabakow P, Fortuna W, Czapiga B, Jarmundowicz W. The olfactory bulb and olfactory mucosa obtained from human cadaver donors as a source of olfactory ensheathing cells. Glia. 2006 Nov 1;54(6):557-65. doi: 10.1002/glia.20395.
- Raisman G. Olfactory ensheathing cells and repair of brain and spinal cord injuries. Cloning Stem Cells. 2004;6(4):364-8. doi: 10.1089/clo.2004.6.364.
- Li Y, Decherchi P, Raisman G. Transplantation of olfactory ensheathing cells into spinal cord lesions restores breathing and climbing. J Neurosci. 2003 Feb 1;23(3):727-31. doi: 10.1523/JNEUROSCI.23-03-00727.2003.
- Keyvan-Fouladi N, Li Y, Raisman G. How do transplanted olfactory ensheathing cells restore function? Brain Res Brain Res Rev. 2002 Oct;40(1-3):325-7. doi: 10.1016/s0165-0173(02)00215-1.
- Raisman G. Olfactory ensheathing cells - another miracle cure for spinal cord injury? Nat Rev Neurosci. 2001 May;2(5):369-75. doi: 10.1038/35072576.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Voraussichtlich)
Studienabschluss (Voraussichtlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Schätzen)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
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Andere Studien-ID-Nummern
- 16.0069
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Informationskommentare: Die Projektunterlagen sind direkt beim Forschungsteam erhältlich. Bitte senden Sie eine E-Mail an Dr. Florence Hogg fhogg@sgul.ac.uk
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