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Indikator-Aminosäureoxidation bei Intensivpatienten (IAAO-IC)

14. April 2026 aktualisiert von: Maastricht University Medical Center

Die Auswirkung einer Standard- oder höheren Proteinfütterung auf die Oxidation von Indikatoraminosäuren bei Intensivpatienten

In dieser Studie wird die Indikator-Aminosäureoxidationstechnik (IAAO) verwendet, um die Proteinoxidation von Intensivpatienten bei zwei Proteinaufnahmen zu bestimmen: 1,3 g/kg/Tag gegenüber 2,0 g/kg/Tag.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Begründung:

Zwar gibt es von internationalen Organisationen wie ASPEN und ESPEN Richtlinien zur Proteinverabreichung für die Intensivpflege, diese unterscheiden sich jedoch stark in der empfohlenen Dosis und basieren auf Evidenz von relativ geringer Qualität. Die Indicator Amino Acid Oxidation (IAAO)-Technik wurde als praktischeres und nicht-invasiveres Instrument zur Beurteilung des Proteinstoffwechsels entwickelt, das in gefährdeten Bevölkerungsgruppen eingesetzt werden kann. Die Anwendung der IAAO-Technik bei Patienten, die auf der Intensivstation (ICU) aufgenommen werden, könnte eine Alternative darstellen, um die optimale Proteinzufuhr bei kritischen Erkrankungen besser zu untersuchen.

Zielsetzung:

Es sollte die Wirkung einer enteralen Ernährung mit höherem Proteingehalt im Vergleich zum Standardproteingehalt auf die Oxidation von Indikatoraminosäuren bei Intensivpatienten beurteilt werden.

Studiendesign:

Randomisierte, ausgeglichene Cross-Over-Studie.

Studienpopulation:

Erwachsene Patienten mit einer ungeplanten Aufnahme auf die Intensivstation, die mechanisch beatmet werden und bei denen eine Indikation für eine längere enterale Ernährung besteht.

Intervention:

Die Probanden durchlaufen zwei Testtage in zufälliger Reihenfolge, an denen sie entweder eine enterale Ernährung gemäß einer Standardproteindosis (1,3 g/kg/Tag) oder eine höhere Proteindosis (2,0 g/kg/Tag) erhalten. Zur Beurteilung der Indikator-Aminosäureoxidation wird eine kontinuierliche Zufuhr von L-[1-13C]-Phenylalanin in Kombination mit Atem-, Urin- und Blutproben durchgeführt.

Hauptparameter/Endpunkte der Studie:

Der primäre Endpunkt ist die Oxidation von Indikatoraminosäuren nach enteraler Ernährung mit einem Standard- oder höheren Proteingehalt, bestimmt mit der Methode der Indikatoraminosäureoxidation (IAAO) durch Messung der 13CO2-Anreicherung in der ausgeatmeten Atemluft und der Anreicherung von L-[1-13C]-Phenylalanin in Plasma und Urin.

Art und Ausmaß der mit der Teilnahme, dem Nutzen und der Gruppenzugehörigkeit verbundenen Belastungen und Risiken:

Das Gesamtrisiko der Studie ist vernachlässigbar. Die aktuelle Studie vergleicht die Wirkung zweier Ernährungszusammensetzungen, die den Empfehlungen internationaler Leitlinien zur Ernährung auf der Intensivstation entsprechen, auf den Proteinstoffwechsel nach der Aufnahme auf die Intensivstation. Um eine Überernährung in der frühen Phase einer kritischen Erkrankung zu vermeiden, sowohl in Bezug auf Kalorien als auch Protein, wird nach drei Tagen einer allmählichen Steigerung der Aufnahme eine vollständige enterale Ernährung bereitgestellt (d. h. 25–50–75 % der angestrebten Aufnahme an den Tagen 1–2). -3 bzw. -3). Die Probenahme von Atem-, Urin-, Kot- und Plasmaproben birgt für diese Bevölkerungsgruppe keine zusätzlichen Risiken. Unsere Abteilung verfügt über umfangreiche Kenntnisse in der Aminosäure-Stabilisotopen-Methodik, der Bewertung der 13CO2-Anreicherung in ausgeatmeten Atemproben und der Bewertung der Kohlendioxidproduktion durch indirekte Kalorimetrie.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

8

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

    • Limburg
      • Maastricht, Limburg, Niederlande, 6229 HX
        • Maastricht University Medical Center+

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • ≥ 18 Jahre alt
  • Ungeplante Einweisung auf die Intensivstation
  • Mechanisch belüftet
  • Beginn der enteralen Ernährung innerhalb von 2 Tagen nach der Intubation
  • ≥ 3 Tage mit enteraler Ernährung
  • Voraussichtlicher verbleibender Aufenthalt auf der Intensivstation mit mechanischer Beatmung von ≥ 2 Tagen

Ausschlusskriterien:

  • Kontraindikationen für eine enterale Ernährung liegen im Ermessen des behandelnden Arztes
  • Fütterungsunverträglichkeit während des schrittweisen Fütterungsprotokolls
  • Sterbend oder Zurückhalten der Behandlung
  • Zur extrakorporalen Membranoxygenierung (ECMO)
  • Vorhandensein von Thoraxdrainagen, Pneumothorax, tracheoösophagealer Fistel oder subkutanem Emphysem
  • Nierenversagen UND ein „Keine Dialyse“-Code bei der Aufnahme
  • Hepatische Enzephalopathie (West Haven-Kriterien 3-4)
  • BMI < 18 kg/m2

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Diagnose
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Crossover-Aufgabe
  • Maskierung: Keine (Offenes Etikett)

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Sonstiges: 1,3 g/kg/Tag, gefolgt von 2,0 g/kg/Tag
Patienten in diesem Arm erhalten an ihrem ersten Testtag eine enterale Ernährung mit 1,3 Gramm Protein pro kg Körpergewicht und Tag, gefolgt von 2,0 Gramm Protein pro kg Körpergewicht und Tag am zweiten Testtag.
Enterale Ernährung mit Standard-Proteinzufuhr (1,3 g/kg/Tag), verabreicht über eine Magensonde. Als Begleitintervention wird ein oraler L-[1-13C]-Phenylalanin-Tracer verabreicht. Zur Bestimmung der Indikator-Aminosäureoxidation ist die Verwendung eines enteral verabreichten Tracers erforderlich.
Enterale Ernährung mit hoher Proteinzufuhr (2,0 g/kg/Tag), verabreicht über eine Magensonde. Als Begleitintervention wird ein oraler L-[1-13C]-Phenylalanin-Tracer verabreicht. Zur Bestimmung der Indikator-Aminosäureoxidation ist die Verwendung eines enteral verabreichten Tracers erforderlich.
Sonstiges: 2,0 g/kg/Tag, gefolgt von 1,3 g/kg/Tag
Patienten in diesem Arm erhalten an ihrem ersten Testtag eine enterale Ernährung mit 2,0 Gramm Protein pro kg Körpergewicht und Tag, gefolgt von 1,3 Gramm Protein pro kg Körpergewicht und Tag am zweiten Testtag.
Enterale Ernährung mit Standard-Proteinzufuhr (1,3 g/kg/Tag), verabreicht über eine Magensonde. Als Begleitintervention wird ein oraler L-[1-13C]-Phenylalanin-Tracer verabreicht. Zur Bestimmung der Indikator-Aminosäureoxidation ist die Verwendung eines enteral verabreichten Tracers erforderlich.
Enterale Ernährung mit hoher Proteinzufuhr (2,0 g/kg/Tag), verabreicht über eine Magensonde. Als Begleitintervention wird ein oraler L-[1-13C]-Phenylalanin-Tracer verabreicht. Zur Bestimmung der Indikator-Aminosäureoxidation ist die Verwendung eines enteral verabreichten Tracers erforderlich.

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Indikator für die Oxidation von Aminosäuren
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation.
Indikator für die Aminosäureoxidation, ausgedrückt in µmol/kg/h
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation.

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
13CO2-Ausscheidung in der Atemluft (F13CO2)
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gesammelt anhand von Atemproben; gemessen mittels Gaschromatographie-Massenspektrometrie (Agilent G1530N/G2589A, Little Falls, USA)
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Konzentration von Plasma-Phenylalanin
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gesammelt über einen arteriellen In-situ-Katheter; mittels Hochleistungsflüssigkeitschromatographie analysiert
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Kotausstoß und Kotproteingehalt
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vom Beginn des Eingriffs bis zum Ende des Eingriffs erfasst und Tracer-Protokoll.
Gesammelt über einen In-situ-Kotsammelbeutel; Der Proteingehalt in Stuhlproben wird mit der Dumas-Methode (Variomax CN-Analysator) gemessen.
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vom Beginn des Eingriffs bis zum Ende des Eingriffs erfasst und Tracer-Protokoll.
Anreicherung des Atems mit 13CO2
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gesammelt anhand von Atemproben; gemessen mittels Gaschromatographie-Massenspektrometrie (Agilent G1530N/G2589A, Little Falls, USA)
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
CO2-Produktion
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: 2 Stunden nach Beginn des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gemessen mittels indirekter Kalorimetrie
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: 2 Stunden nach Beginn des Tracer-Protokolls gesammelt.
Anreicherung von Plasma-L-[1-13C]-Phenylalanin
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gesammelt über einen arteriellen In-situ-Katheter; gemessen mittels Gaschromatographie-Massenspektrometrie (Agilent G1530N/G2589A, Little Falls, USA)
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Anreicherung von L-[1-13C]-Phenylalanin im Urin
Zeitfenster: Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.
Gesammelt über einen Harnverweilkatheter; gemessen mittels Gaschromatographie-Massenspektrometrie (Agilent G1530N/G2589A, Little Falls, USA)
Gesammelt bei Standard- oder höherer Proteinverabreichung am Testtag 1 und 2 (je nach Randomisierungsreihenfolge) in der ersten Woche der Aufnahme auf die Intensivstation. Pro Testtag: vor Beginn des Tracer-Protokolls und am Ende des Tracer-Protokolls gesammelt.

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Luc van Loon, Ph.D., Maastricht University

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

30. Oktober 2023

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

23. März 2026

Studienabschluss (Tatsächlich)

23. März 2026

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

18. Oktober 2023

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

26. Oktober 2023

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

27. Oktober 2023

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

17. April 2026

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

14. April 2026

Zuletzt verifiziert

1. April 2026

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

JA

Beschreibung des IPD-Plans

Auf begründete Anfrage können Studiendaten zur Verfügung gestellt werden, die von den Projektforschern (Dr. Julia Bels, Dr. Jorn Trommelen) und der Hauptforscher (Prof. Luc van Loon). Voraussetzung für die Prüfung ist ein Antrag auf Datenfreigabe sowie ein ausgearbeitetes Studienprotokoll.

Art der unterstützenden IPD-Freigabeinformationen

  • STUDIENPROTOKOLL
  • ICF
  • ANALYTIC_CODE
  • CSR

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur Kritische Krankheit

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