- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT06280560
IVF 호르몬 치료가 자궁내막 수용성과 자궁내막 노화 세포 병리학적 축적에 미치는 영향 (HormoSenoRec)
통제된 난소 자극 및 황체기 지원이 자궁내막 수용성과 자궁내막 노화 세포 병리학적 축적에 미치는 영향: 파일럿 연구
통제된 난소 자극(COS)과 냉동 배아 이식은 모두 체외 수정(IVF) 치료의 필수적인 부분이 되었습니다. 신선한 배아 이식은 일반적으로 COS 후 황체기 지원(LPS)에 프로게스테론을 제공하여 수행됩니다. 냉동 배아 이식(FET)은 일반적으로 외인성 프로게스테론이 투여되는 호르몬 대체 치료(HRT)와 함께 인공 주기로 수행되지만, 자연 주기(호르몬 보충 없이)(NC)에서도 수행될 수도 있습니다. COS+LPS 및 HRT 동안 에스트라디올과 프로게스테론의 초생리학적 수준이 형태학적 및 생화학적 자궁내막 변형을 초래하여 자궁내막 수용성을 변경하고 착상 및 임신율을 낮출 수 있다는 증거가 있습니다.
우리는 COS+LPS와 HRT 모두에 필요한 초생리학적 호르몬 수준이 자궁내막 구성 및 기능의 변화, 특히 노화 세포의 만성 축적을 유도할 수 있다고 가정합니다. 과도한 호르몬 유도, uNK 결핍으로 인한 제거 부족 또는 두 가지의 조합으로 인해 궁극적으로 자궁내막 수용성과 탈락막화에 영향을 미쳐 IVF 결과가 악화됩니다.
세포사멸의 선택적 유도에 의한 자궁내막 노화 세포의 시험관 내 제거는 자궁내막 간질 세포(EnSC)의 나머지 부분의 탈락막화 능력을 향상시키는 것으로 밝혀졌으며, 이는 초생리학적 호르몬 수준의 잠재적으로 유해한 영향을 줄이기 위한 미래 보조 전략에서 나타날 수 있습니다. IVF 환자의 생식 결과를 개선합니다.
이 프로젝트에서 얻은 결과는 임상 실습에 직접적인 영향을 미칠 것입니다. 첫째, 결과를 통해 실험 데이터를 기반으로 IVF 치료에 일반적으로 사용되는 자극 프로토콜의 잠재적인 자궁내막 부작용을 평가할 수 있습니다. 또한, 자궁내막 수용성에 영향을 미치는 노화세포의 병리학적 축적을 발견한 경우, 자궁내막 수용성 발현을 향상시키는 보조제 세놀리틱(노화세포를 특이적으로 제거하도록 고안된 약물) 화합물의 유효성을 시험관 내에서 평가할 수 있을 것입니다. IVF 환자의 생식 결과를 개선하는 데 있어 마커 사용의 효과를 입증하기 위한 첫 번째 단계입니다.
연구 개요
상태
정황
연구 유형
등록 (추정된)
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: Francisco Domínguez Hernández, PhD
- 전화번호: +34963903305
- 이메일: francisco.dominguez@ivirma.com
연구 연락처 백업
- 이름: Roberto González Martín, PhD
- 전화번호: +34963903305
- 이메일: roberto.gonzalez@ivirma.com
연구 장소
-
-
-
Valencia, 스페인, 46015
- 모병
- IVI-RMA Valencia Clinic
-
연락하다:
- Laura Caracena, PhD
- 전화번호: 651791000
- 이메일: Laura.Caracena@ivirma.com
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
- 성인
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
샘플링 방법
연구 인구
연구 모집단은 불임 문제로 인해 IVF 치료를 받고 있는 45명의 여성으로 구성되며 임상 실습에 따라 다음 호르몬 프로토콜 중 하나를 받게 됩니다(그룹당 15명의 참가자)(자연 주기, 조절된 난소 자극 + 황체기) 지원, 호르몬 대체 요법).
또한, 자궁내막 수용성 참고 그룹으로서 호르몬 자극이 없는 자궁내막 주기(자연 주기)에서 난모세포 기증 프로그램에 속하는 가임력이 입증된 여성 15명을 모집할 것입니다.
참가자 60명은 IVI-RMA 발렌시아 클리닉(발렌시아)에서 모집할 예정이다.
설명
연구 그룹(난임 IVF 환자).
- 포함 기준: 18~45세 여성, BMI ≥ 18.5~30.
- 제외 기준: 자궁내막강에 영향을 미치는 자궁 질환을 나타내는 여성, 얇거나 불규칙한 자궁내막, 변형된 핵형, 혈전 선호증 또는 교정되지 않은 전신 또는 내분비 질환이 있는 여성은 제외됩니다.
자궁내막 수용성 참조 그룹(난모세포 기증자).
- 포함 기준: 18~35세 여성, BMI ≥ 18.5~25.
- 제외 기준: DIU 존재, 적어도 지난 3개월 동안의 호르몬 피임약, 변형된 핵형, 혈전 선호증 또는 교정되지 않은 전신 또는 내분비 질환의 경우는 제외됩니다.
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
코호트 및 개입
그룹/코호트 |
개입 / 치료 |
|---|---|
|
자연주기(NC)
호르몬 자극 없음
|
호르몬 자극이 없습니다.
월경 6일째부터 난포의 성장을 평가하게 됩니다.
난포의 직경이 17mm에 도달하면 배란 테스트 스트립이 제공되어 아침 첫 소변의 LH 수치를 평가합니다.
참가자는 양성 반응을 보고하고 7일 후에 샘플링이 예정됩니다.
LH 피크(LH+7) 7일 후에 자궁내막 생검 및 혈액 샘플을 채취합니다.
|
|
난소 자극 조절(COS) + 황체기 지원(LPS)
호르몬 신선 전달 프로토콜
|
GnRH 길항제에 이어 프로게스테론 보충을 포함하는 짧은 COS 프로토콜.
월경 기간 1일과 2일에 난소 휴지기를 정의하기 위한 음성 질 초음파 검사 후에 시작됩니다.
난소 자극의 경우 FSHrec(GONAL F) 150~225UI/일을 HMG(Menopur) 75UI/일과 함께 또는 병용하여 투여합니다.
6일차부터 HMG/FSHrec는 혈청 E2 수준과 질경유 난소 초음파 검사에 따라 개인별로 투여되며, 직경 14mm의 난포가 달성되자마자 GnRH 길항제(오르갈루트란) 0.25mg/일을 투여합니다.
hCGrec(6500 IU, Ovitrelle)은 최대 직경이 17~18mm를 초과하는 7~8개의 난포가 관찰될 때 투여됩니다.
400mg의 미분화된 질 프로게스테론이 5일 동안 투여됩니다(200mg을 하루 2회 질 경로).
hCG 투여(hCH+7) 후 7일 후에 자궁내막 생검 및 혈액 샘플을 채취합니다.
|
|
HRT 프로그램 인공주기
지연된 호르몬 전달 프로토콜
|
월경 첫날부터 에스트라디올 6mg을 경구투여하고, 10일 후 자궁내막검사를 실시하고, 질초음파로 7mms 삼중선 자궁내막이 확인된 경우 미분화된 질프로게스테론 800mg(400mg을 2회) 하루 질 경로), 5일 동안 에스트로겐 요법에 추가됩니다.
프로게스테론 투여 5일차에 자궁내막 생검 및 혈액 샘플을 채취합니다(P+5).
|
|
자궁내막 수용성 참조 그룹
호르몬 자극 없음
|
난모세포 기증 프로그램에 속한 여성 중에서 모집되며 위에 설명된 Natural Cycle 그룹의 절차를 따릅니다.
호르몬 자극이 없습니다.
월경 6일째부터 난포의 성장을 평가하게 됩니다.
난포의 직경이 17mm에 도달하면 배란 테스트 스트립이 제공되어 아침 첫 소변의 LH 수치를 평가합니다.
참가자는 양성 반응을 보고하고 7일 후에 샘플링이 예정됩니다.
LH 피크(LH+7) 7일 후에 자궁내막 생검 및 혈액 샘플을 채취합니다.
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
자궁내막 수용성
기간: 연구 완료를 통해 평균 2년
|
프로락틴, 프로락틴, IGFBP1, FOXO1, HOXA-10, CLU, SCAS5, DIO, VEGF, TGFβ, CD34, CD31, CD44, MMP, IL-15, IL-11과 같은 시험관 내(세포상) 자궁내막 수용성 마커를 평가합니다. , IL-6, LIF, 글리코델린, β-카테닌, ALCAM, IGF-1R, c-KIT, SMAD3 등
|
연구 완료를 통해 평균 2년
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
노화 세포 병리학적 축적
기간: 연구 완료를 통해 평균 2년
|
시험관 내(세포에서) 리포푸신 과립(SentraGor 또는 Sudan Black B), NF-kB, p-16, p-21, p38, P-p38, p53, cGAS, STRING, γH2AX와 같은 노화 마커의 존재를 평가합니다. , 카르보닐 단백질 등
|
연구 완료를 통해 평균 2년
|
공동 작업자 및 조사자
스폰서
수사관
- 수석 연구원: Francisco Domínguez Hernández, PhD, IVI Foundation, Valencia, Valencia, Spain
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Haouzi D, Assou S, Mahmoud K, Tondeur S, Reme T, Hedon B, De Vos J, Hamamah S. Gene expression profile of human endometrial receptivity: comparison between natural and stimulated cycles for the same patients. Hum Reprod. 2009 Jun;24(6):1436-45. doi: 10.1093/humrep/dep039. Epub 2009 Feb 26.
- Bourgain C, Devroey P. The endometrium in stimulated cycles for IVF. Hum Reprod Update. 2003 Nov-Dec;9(6):515-22. doi: 10.1093/humupd/dmg045.
- McLernon DJ, Maheshwari A, Lee AJ, Bhattacharya S. Cumulative live birth rates after one or more complete cycles of IVF: a population-based study of linked cycle data from 178,898 women. Hum Reprod. 2016 Mar;31(3):572-81. doi: 10.1093/humrep/dev336. Epub 2016 Jan 18.
- Mackens S, Santos-Ribeiro S, van de Vijver A, Racca A, Van Landuyt L, Tournaye H, Blockeel C. Frozen embryo transfer: a review on the optimal endometrial preparation and timing. Hum Reprod. 2017 Nov 1;32(11):2234-2242. doi: 10.1093/humrep/dex285.
- Venetis CA, Kolibianakis EM, Papanikolaou E, Bontis J, Devroey P, Tarlatzis BC. Is progesterone elevation on the day of human chorionic gonadotrophin administration associated with the probability of pregnancy in in vitro fertilization? A systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2007 Jul-Aug;13(4):343-55. doi: 10.1093/humupd/dmm007. Epub 2007 Apr 3.
- Shapiro BS, Daneshmand ST, Garner FC, Aguirre M, Hudson C, Thomas S. Evidence of impaired endometrial receptivity after ovarian stimulation for in vitro fertilization: a prospective randomized trial comparing fresh and frozen-thawed embryo transfer in normal responders. Fertil Steril. 2011 Aug;96(2):344-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.05.050. Epub 2011 Jul 6.
- Ishihara O, Araki R, Kuwahara A, Itakura A, Saito H, Adamson GD. Impact of frozen-thawed single-blastocyst transfer on maternal and neonatal outcome: an analysis of 277,042 single-embryo transfer cycles from 2008 to 2010 in Japan. Fertil Steril. 2014 Jan;101(1):128-33. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.09.025. Epub 2013 Oct 23. Erratum In: Fertil Steril. 2014 Apr;101(4):1200.
- Kolibianakis E, Bourgain C, Albano C, Osmanagaoglu K, Smitz J, Van Steirteghem A, Devroey P. Effect of ovarian stimulation with recombinant follicle-stimulating hormone, gonadotropin releasing hormone antagonists, and human chorionic gonadotropin on endometrial maturation on the day of oocyte pick-up. Fertil Steril. 2002 Nov;78(5):1025-9. doi: 10.1016/s0015-0282(02)03323-x.
- Turco MY, Gardner L, Hughes J, Cindrova-Davies T, Gomez MJ, Farrell L, Hollinshead M, Marsh SGE, Brosens JJ, Critchley HO, Simons BD, Hemberger M, Koo BK, Moffett A, Burton GJ. Long-term, hormone-responsive organoid cultures of human endometrium in a chemically defined medium. Nat Cell Biol. 2017 May;19(5):568-577. doi: 10.1038/ncb3516. Epub 2017 Apr 10.
- Roque M, Lattes K, Serra S, Sola I, Geber S, Carreras R, Checa MA. Fresh embryo transfer versus frozen embryo transfer in in vitro fertilization cycles: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril. 2013 Jan;99(1):156-162. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.09.003. Epub 2012 Oct 3.
- Devroey P, Bourgain C, Macklon NS, Fauser BC. Reproductive biology and IVF: ovarian stimulation and endometrial receptivity. Trends Endocrinol Metab. 2004 Mar;15(2):84-90. doi: 10.1016/j.tem.2004.01.009.
- Nikas G, Develioglu OH, Toner JP, Jones HW Jr. Endometrial pinopodes indicate a shift in the window of receptivity in IVF cycles. Hum Reprod. 1999 Mar;14(3):787-92. doi: 10.1093/humrep/14.3.787.
- Roque M, Haahr T, Geber S, Esteves SC, Humaidan P. Fresh versus elective frozen embryo transfer in IVF/ICSI cycles: a systematic review and meta-analysis of reproductive outcomes. Hum Reprod Update. 2019 Jan 1;25(1):2-14. doi: 10.1093/humupd/dmy033.
- Lucas ES, Vrljicak P, Muter J, Diniz-da-Costa MM, Brighton PJ, Kong CS, Lipecki J, Fishwick KJ, Odendaal J, Ewington LJ, Quenby S, Ott S, Brosens JJ. Recurrent pregnancy loss is associated with a pro-senescent decidual response during the peri-implantation window. Commun Biol. 2020 Jan 21;3(1):37. doi: 10.1038/s42003-020-0763-1.
- Yousefzadeh MJ, Zhu Y, McGowan SJ, Angelini L, Fuhrmann-Stroissnigg H, Xu M, Ling YY, Melos KI, Pirtskhalava T, Inman CL, McGuckian C, Wade EA, Kato JI, Grassi D, Wentworth M, Burd CE, Arriaga EA, Ladiges WL, Tchkonia T, Kirkland JL, Robbins PD, Niedernhofer LJ. Fisetin is a senotherapeutic that extends health and lifespan. EBioMedicine. 2018 Oct;36:18-28. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.09.015. Epub 2018 Sep 29.
- Aplin JD, Stevens A. Use of 'omics for endometrial timing: the cycle moves on. Hum Reprod. 2022 Apr 1;37(4):644-650. doi: 10.1093/humrep/deac022.
- Birch J, Gil J. Senescence and the SASP: many therapeutic avenues. Genes Dev. 2020 Dec 1;34(23-24):1565-1576. doi: 10.1101/gad.343129.120.
- Boretto M, Cox B, Noben M, Hendriks N, Fassbender A, Roose H, Amant F, Timmerman D, Tomassetti C, Vanhie A, Meuleman C, Ferrante M, Vankelecom H. Development of organoids from mouse and human endometrium showing endometrial epithelium physiology and long-term expandability. Development. 2017 May 15;144(10):1775-1786. doi: 10.1242/dev.148478. Epub 2017 Apr 25.
- Boretto M, Maenhoudt N, Luo X, Hennes A, Boeckx B, Bui B, Heremans R, Perneel L, Kobayashi H, Van Zundert I, Brems H, Cox B, Ferrante M, Uji-I H, Koh KP, D'Hooghe T, Vanhie A, Vergote I, Meuleman C, Tomassetti C, Lambrechts D, Vriens J, Timmerman D, Vankelecom H. Patient-derived organoids from endometrial disease capture clinical heterogeneity and are amenable to drug screening. Nat Cell Biol. 2019 Aug;21(8):1041-1051. doi: 10.1038/s41556-019-0360-z. Epub 2019 Aug 1.
- Brighton PJ, Maruyama Y, Fishwick K, Vrljicak P, Tewary S, Fujihara R, Muter J, Lucas ES, Yamada T, Woods L, Lucciola R, Hou Lee Y, Takeda S, Ott S, Hemberger M, Quenby S, Brosens JJ. Clearance of senescent decidual cells by uterine natural killer cells in cycling human endometrium. Elife. 2017 Dec 11;6:e31274. doi: 10.7554/eLife.31274.
- Burton GJ, Jauniaux E, Charnock-Jones DS. Human early placental development: potential roles of the endometrial glands. Placenta. 2007 Apr;28 Suppl A:S64-9. doi: 10.1016/j.placenta.2007.01.007. Epub 2007 Mar 8.
- Burton GJ, Redman CW, Roberts JM, Moffett A. Pre-eclampsia: pathophysiology and clinical implications. BMJ. 2019 Jul 15;366:l2381. doi: 10.1136/bmj.l2381.
- Check JH, Wilson C, Choe JK, Amui J, Brasile D. Evidence that high serum progesterone (P) levels on day of human chorionic gonadotropin (hCG) injection have no adverse effect on the embryo itself as determined by pregnancy outcome following embryo transfer using donated eggs. Clin Exp Obstet Gynecol. 2010;37(3):179-80.
- Cindrova-Davies T, Fogarty NME, Jones CJP, Kingdom J, Burton GJ. Evidence of oxidative stress-induced senescence in mature, post-mature and pathological human placentas. Placenta. 2018 Aug;68:15-22. doi: 10.1016/j.placenta.2018.06.307. Epub 2018 Jun 19.
- Clevers H. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 2016 Jun 16;165(7):1586-1597. doi: 10.1016/j.cell.2016.05.082.
- Cox LS, Redman C. The role of cellular senescence in ageing of the placenta. Placenta. 2017 Apr;52:139-145. doi: 10.1016/j.placenta.2017.01.116. Epub 2017 Jan 16.
- Deane JA, Cousins FL, Gargett CE. Endometrial organoids: in vitro models for endometrial research and personalized medicine. Biol Reprod. 2017 Jan 1;97(6):781-783. doi: 10.1093/biolre/iox139. No abstract available.
- Deryabin P, Griukova A, Nikolsky N, Borodkina A. The link between endometrial stromal cell senescence and decidualization in female fertility: the art of balance. Cell Mol Life Sci. 2020 Apr;77(7):1357-1370. doi: 10.1007/s00018-019-03374-0. Epub 2019 Nov 15.
- Deryabin PI, Borodkina AV. Stromal cell senescence contributes to impaired endometrial decidualization and defective interaction with trophoblast cells. Hum Reprod. 2022 Jun 30;37(7):1505-1524. doi: 10.1093/humrep/deac112.
- Dominguez F, Avila S, Cervero A, Martin J, Pellicer A, Castrillo JL, Simon C. A combined approach for gene discovery identifies insulin-like growth factor-binding protein-related protein 1 as a new gene implicated in human endometrial receptivity. J Clin Endocrinol Metab. 2003 Apr;88(4):1849-57. doi: 10.1210/jc.2002-020724.
- Dominguez F, Gadea B, Mercader A, Esteban FJ, Pellicer A, Simon C. Embryologic outcome and secretome profile of implanted blastocysts obtained after coculture in human endometrial epithelial cells versus the sequential system. Fertil Steril. 2010 Feb;93(3):774-782.e1. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.10.019. Epub 2008 Dec 4.
- Evans GE, Phillipson GTM, Sykes PH, McNoe LA, Print CG, Evans JJ. Does the endometrial gene expression of fertile women vary within and between cycles? Hum Reprod. 2018 Mar 1;33(3):452-463. doi: 10.1093/humrep/dex385.
- Evans J, Hannan NJ, Edgell TA, Vollenhoven BJ, Lutjen PJ, Osianlis T, Salamonsen LA, Rombauts LJ. Fresh versus frozen embryo transfer: backing clinical decisions with scientific and clinical evidence. Hum Reprod Update. 2014 Nov-Dec;20(6):808-21. doi: 10.1093/humupd/dmu027. Epub 2014 Jun 10.
- Frances-Herrero E, Juarez-Barber E, Campo H, Lopez-Martinez S, de Miguel-Gomez L, Faus A, Pellicer A, Ferrero H, Cervello I. Improved Models of Human Endometrial Organoids Based on Hydrogels from Decellularized Endometrium. J Pers Med. 2021 Jun 3;11(6):504. doi: 10.3390/jpm11060504.
- Groothuis PG, Dassen HH, Romano A, Punyadeera C. Estrogen and the endometrium: lessons learned from gene expression profiling in rodents and human. Hum Reprod Update. 2007 Jul-Aug;13(4):405-17. doi: 10.1093/humupd/dmm009.
- Hernandez-Segura A, Nehme J, Demaria M. Hallmarks of Cellular Senescence. Trends Cell Biol. 2018 Jun;28(6):436-453. doi: 10.1016/j.tcb.2018.02.001. Epub 2018 Feb 21.
- Horcajadas JA, Minguez P, Dopazo J, Esteban FJ, Dominguez F, Giudice LC, Pellicer A, Simon C. Controlled ovarian stimulation induces a functional genomic delay of the endometrium with potential clinical implications. J Clin Endocrinol Metab. 2008 Nov;93(11):4500-10. doi: 10.1210/jc.2008-0588. Epub 2008 Aug 12.
- Horcajadas JA, Riesewijk A, Polman J, van Os R, Pellicer A, Mosselman S, Simon C. Effect of controlled ovarian hyperstimulation in IVF on endometrial gene expression profiles. Mol Hum Reprod. 2005 Mar;11(3):195-205. doi: 10.1093/molehr/gah150. Epub 2005 Feb 4.
- Huang R, Fang C, Xu S, Yi Y, Liang X. Premature progesterone rise negatively correlated with live birth rate in IVF cycles with GnRH agonist: an analysis of 2,566 cycles. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):664-670.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.024. Epub 2012 Jun 15.
- Jin J, Richardson L, Sheller-Miller S, Zhong N, Menon R. Oxidative stress induces p38MAPK-dependent senescence in the feto-maternal interface cells. Placenta. 2018 Jul;67:15-23. doi: 10.1016/j.placenta.2018.05.008. Epub 2018 May 17.
- Junovich G, Mayer Y, Azpiroz A, Daher S, Iglesias A, Zylverstein C, Gentile T, Pasqualini S, Markert UR, Gutierrez G. Ovarian stimulation affects the levels of regulatory endometrial NK cells and angiogenic cytokine VEGF. Am J Reprod Immunol. 2011 Feb;65(2):146-53. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00892.x.
- Kilicdag EB, Haydardedeoglu B, Cok T, Hacivelioglu SO, Bagis T. Premature progesterone elevation impairs implantation and live birth rates in GnRH-agonist IVF/ICSI cycles. Arch Gynecol Obstet. 2010 Apr;281(4):747-52. doi: 10.1007/s00404-009-1248-0. Epub 2009 Oct 28.
- Kusama K, Yamauchi N, Yoshida K, Azumi M, Yoshie M, Tamura K. Senolytic treatment modulates decidualization in human endometrial stromal cells. Biochem Biophys Res Commun. 2021 Sep 24;571:174-180. doi: 10.1016/j.bbrc.2021.07.075. Epub 2021 Jul 27.
- Labarta E, Martinez-Conejero JA, Alama P, Horcajadas JA, Pellicer A, Simon C, Bosch E. Endometrial receptivity is affected in women with high circulating progesterone levels at the end of the follicular phase: a functional genomics analysis. Hum Reprod. 2011 Jul;26(7):1813-25. doi: 10.1093/humrep/der126. Epub 2011 May 2.
- Lancaster MA, Knoblich JA. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 2014 Jul 18;345(6194):1247125. doi: 10.1126/science.1247125. Epub 2014 Jul 17.
- Libby VR, Wilson R, Kresak A, Cameron C, Redline R, Mesiano S, Weinerman R. Superovulation with gonadotropin-releasing hormone agonist or chorionic gonadotropin for ovulation trigger differentially affects leukocyte populations in the peri-implantation mouse uterus. F S Sci. 2021 May;2(2):198-206. doi: 10.1016/j.xfss.2021.03.003. Epub 2021 Mar 20.
- Martinez-Conejero JA, Simon C, Pellicer A, Horcajadas JA. Is ovarian stimulation detrimental to the endometrium? Reprod Biomed Online. 2007 Jul;15(1):45-50. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60690-6.
- Maru Y, Tanaka N, Itami M, Hippo Y. Efficient use of patient-derived organoids as a preclinical model for gynecologic tumors. Gynecol Oncol. 2019 Jul;154(1):189-198. doi: 10.1016/j.ygyno.2019.05.005. Epub 2019 May 14.
- Melo MA, Meseguer M, Garrido N, Bosch E, Pellicer A, Remohi J. The significance of premature luteinization in an oocyte-donation programme. Hum Reprod. 2006 Jun;21(6):1503-7. doi: 10.1093/humrep/dei474. Epub 2006 Apr 28.
- Menon R, Boldogh I, Hawkins HK, Woodson M, Polettini J, Syed TA, Fortunato SJ, Saade GR, Papaconstantinou J, Taylor RN. Histological evidence of oxidative stress and premature senescence in preterm premature rupture of the human fetal membranes recapitulated in vitro. Am J Pathol. 2014 Jun;184(6):1740-51. doi: 10.1016/j.ajpath.2014.02.011. Epub 2014 May 12.
- Montenegro IS, Kuhl CP, Schneider RA, Zachia SA, Durli ICLO, Terraciano PB, Rivero RC, Passos EP. Use of clomiphene citrate protocol for controlled ovarian stimulation impairs endometrial maturity. JBRA Assist Reprod. 2021 Feb 2;25(1):90-96. doi: 10.5935/1518-0557.20200056.
- Montoya-Botero P, Polyzos NP. The endometrium during and after ovarian hyperstimulation and the role of segmentation of infertility treatment. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2019 Feb;33(1):61-75. doi: 10.1016/j.beem.2018.09.003. Epub 2018 Sep 13.
- Simon C, Mercader A, Garcia-Velasco J, Nikas G, Moreno C, Remohi J, Pellicer A. Coculture of human embryos with autologous human endometrial epithelial cells in patients with implantation failure. J Clin Endocrinol Metab. 1999 Aug;84(8):2638-46. doi: 10.1210/jcem.84.8.5873.
- Suhorutshenko M, Kukushkina V, Velthut-Meikas A, Altmae S, Peters M, Magi R, Krjutskov K, Koel M, Codoner FM, Martinez-Blanch JF, Vilella F, Simon C, Salumets A, Laisk T. Endometrial receptivity revisited: endometrial transcriptome adjusted for tissue cellular heterogeneity. Hum Reprod. 2018 Nov 1;33(11):2074-2086. doi: 10.1093/humrep/dey301.
- Unfer V, Casini ML, Gerli S, Costabile L, Mignosa M, Di Renzo GC. Phytoestrogens may improve the pregnancy rate in in vitro fertilization-embryo transfer cycles: a prospective, controlled, randomized trial. Fertil Steril. 2004 Dec;82(6):1509-13. doi: 10.1016/j.fertnstert.2004.07.934.
- Wang W, Vilella F, Alama P, Moreno I, Mignardi M, Isakova A, Pan W, Simon C, Quake SR. Single-cell transcriptomic atlas of the human endometrium during the menstrual cycle. Nat Med. 2020 Oct;26(10):1644-1653. doi: 10.1038/s41591-020-1040-z. Epub 2020 Sep 14.
- Zhao Y, Garcia J, Kolp L, Cheadle C, Rodriguez A, Vlahos NF. The impact of luteal phase support on gene expression of extracellular matrix protein and adhesion molecules in the human endometrium during the window of implantation following controlled ovarian stimulation with a GnRH antagonist protocol. Fertil Steril. 2010 Nov;94(6):2264-71. doi: 10.1016/j.fertnstert.2010.01.068. Epub 2010 Mar 12.
- Zhu X, Niu Z, Ye Y, Xia L, Chen Q, Feng Y. Endometrium cytokine profiles are altered following ovarian stimulation but almost not in subsequent hormone replacement cycles. Cytokine. 2019 Feb;114:6-10. doi: 10.1016/j.cyto.2018.11.002. Epub 2018 Dec 20.
- Lozano-Torres B, Estepa-Fernández A, Rovira M, Orzáez M, Serrano M, Martínez-Máñez R, Sancenón F. The chemistry of senescence. Nat Rev Chem. 2019;3:426-441. doi: 10.1038/s41570-019-0108-0.
- Organization WH. Infertility prevalence estimates 1990-2021. 2023.
- Garcia-Alonso L, Handfield LF, Roberts K, Nikolakopoulou K, Fernando RC, Gardner L, Woodhams B, Arutyunyan A, Polanski K, Hoo R, Sancho-Serra C, Li T, Kwakwa K, Tuck E, Lorenzi V, Massalha H, Prete M, Kleshchevnikov V, Tarkowska A, Porter T, Mazzeo CI, van Dongen S, Dabrowska M, Vaskivskyi V, Mahbubani KT, Park JE, Jimenez-Linan M, Campos L, Kiselev VY, Lindskog C, Ayuk P, Prigmore E, Stratton MR, Saeb-Parsy K, Moffett A, Moore L, Bayraktar OA, Teichmann SA, Turco MY, Vento-Tormo R. Mapping the temporal and spatial dynamics of the human endometrium in vivo and in vitro. Nat Genet. 2021 Dec;53(12):1698-1711. doi: 10.1038/s41588-021-00972-2. Epub 2021 Dec 2. Erratum In: Nat Genet. 2023 Jan;55(1):165. doi: 10.1038/s41588-022-01287-6.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (추정된)
연구 완료 (추정된)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
기타 연구 ID 번호
- 2109-FIVI-087-FD
- PI23/00860 (기타 보조금/기금 번호: Instituto de Salud Carlos III, co-funded by European Union)
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
IPD 계획 설명
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
미국에서 제조되어 미국에서 수출되는 제품
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .
자연주기(NC)에 대한 임상 시험
-
University of HelsinkiFinnish Cultural Foundation; University of Oulu; Finnish Work Environment Fund; Juho Vainio... 그리고 다른 협력자들알려지지 않은
-
Radboud University Medical CenterUniversity of Pecs; University Hospital, Bonn; University of Navarra; Lancaster University; University... 그리고 다른 협력자들모병
-
Deutsches Herzzentrum MuenchenSIS Medical AG완전한
-
Nanjing First Hospital, Nanjing Medical University완전한