칼라피오레와 변형 델니도 심정지 용액 사용 중 심근 내 아미노산 변화 비교

선택적 일차 관상동맥 우회술을 받은 20명의 연속 환자가 이 연구에 등록되었습니다. 이전에 심근경색을 앓은 적이 있거나 박출률이 감소했거나 복합 또는 반복 수술을 받은 환자는 본 연구에서 제외되었습니다. 환자들은 심근 보호를 위한 두 가지 방법 중 하나를 사용하여 수술을 받도록 무작위로 배정되었습니다.

• 그룹 1: Calafiore 간헐적 전행성 온혈 심정지증(정상 체온 펌프 혈액, 염화칼륨 2mEq/ml 및 황산마그네슘 50%로 구성됨). 이 심정지 용액은 대동맥 교차 클램프를 적용한 후 37°C에서 투여되었으며 이전에 설명한 대로 각 원위 관상동맥 문합이 완료된 후 반복되었습니다.
• 그룹 2: 변형된 델니도 간헐적 전등급 냉혈 심정지 용액(수유 링거 용액 750ml, 펌프 혈액 200ml, 중탄산나트륨 8.4% 13ml, 만니톨 20% 16ml, 황산마그네슘 50% 4ml로 구성됨) , 2% 리도카인 13ml 및 염화칼륨 2mEq/ml 13ml). 이 용액은 대동맥 교차 클램프를 적용한 후 3~4℃에서 1리터 볼루스로 투여되었고, 교차 클램프 시간이 60분 이상 연장되면 500ml 볼루스로 반복 투여되었습니다(이 연구에 참여한 환자는 없음). .

연구에 등록된 각 환자는 연구 데이터 공개에 대해 서면 동의서를 제공했으며 연구 프로토콜은 13일자 지역 인간 연구 위원회 번호 171의 ​​사전 승인에 반영된 1975년 헬싱키 선언의 윤리 지침을 준수했습니다. 2022년 4월

혈액 샘플 수집 및 심근 생검 말초 혈액 샘플은 수술 직전과 수술 후 4, 12, 24 및 48시간에 수집되었으며 심장 효소(CK-MB 및 트로포닌 I)의 혈중 농도 측정에 사용되었습니다.

다음과 같이 모든 환자의 좌심실 정점에서 Tru-cut 바늘을 사용하여 심근 생검(4-14mg 습윤 중량)을 채취했습니다.

• 생검 1: "휴식 표본", 체외 순환 시작 직후.
• 생검 2: "허혈성 표본", 대동맥 교차 클램프 적용 후 30분.
• 생검 3: "재관류 표본", 대동맥 교차 클램프 제거 후 20분.

각 표본은 아미노산과 젖산 분석을 위해 처리될 때까지 액체 질소(-185°C)에서 즉시 급속 냉동되었습니다.

심장 효소(CK-MB 및 트로포닌 I) 측정 면역형광 스캐너(iChroma II, Boditech Med Incorporated, 한국 및 Obelis s.a, 벨기에)를 사용하여 분석을 수행했습니다. CK-MB의 혈중 농도는 mg/dl로 표시되었고, 트로포닌 I의 농도는 ng/ml로 표시되었습니다.

심근 아미노산 및 젖산 농도 측정 각 냉동 생검 표본의 무게를 측정하고(Laboratory Analytical Balance, Sartorius, Germany) 액체 질소에서 분쇄하고 1000μmol의 0.9% 생리 식염수에서 균질화했습니다. 균질화물의 400 micromol 샘플을 Eppendorf 튜브로 옮기고 100 micromol의 HPLC 물을 첨가했습니다. 각 샘플을 4℃에서 1시간 동안 보관한 후 10000 round/min에서 5분간 원심분리했습니다. 상청액의 400 마이크로몰 샘플을 Vivaspin® 500 멤브레인 필터 0.2 μm(Satorius, Germany)를 통해 여과하고 Eppendorf 튜브로 옮기고 5분 동안 10000 round/min으로 원심분리했습니다. 여과액의 300 마이크로몰 샘플을 Eppendorf 튜브로 옮기고 동일한 부피의 샘플 희석 완충액(membraPure, 독일)을 첨가했습니다. 이 용액은 A300 아미노산 분석기(ARACUS, membraPure, Germany)를 사용하여 7개 아미노산(알라닌, 글루타민, 글루타민산, 글리신, 라이신, 오르니틴 및 타우린)의 농도를 측정하는 데 사용되었습니다. 전용 혈장 젖산염 측정 키트 및 분석기(LACT2, cobas, Roche Diagnostics GmbH, Germany)를 사용하여 젖산 농도도 측정했습니다. 아미노산과 젖산의 농도는 마이크로 몰/g 습윤 중량으로 표현되었습니다.