Sammenligning af korte og standard dentale implantater

INTRODUKTION

Tandimplantater betragtes normalt som en alternativ behandlingsmulighed til at erstatte tabte tænder hos tandløse patienter. Hyppigheden af ​​implantatplacering i områder, der er sværere at rehabilitere, er steget med stigningen i succesen med osseointegration og overlevelse. Udover implantatplacering på steder med utilstrækkelig kambredde og -højde er behandlingstider og -omkostninger dog også steget med brugen af ​​transplantationsprocedurer.1 Forskellige kirurgiske teknikker, såsom lodret knogleforstørrelse, sinusbundshøjde og nervetransposition, er blevet udviklet til behandling af disse knoglevolumenmangler. Disse metoder er imidlertid teknisk følsomme og kan forårsage betydelige postoperative komplikationer. Korte tandimplantater er blevet foreslået som et enklere, billigere og hurtigere alternativ for at forhindre ulemperne ved kirurgiske teknikker og til genoptræning af tandløse områder.2,3 Et stort antal randomiserede kontrollerede kliniske forsøg viste, at den langsigtede succes og overlevelsesraten for korte implantater svarede til dem for lange standardimplantater.4-6 Ophobning af mikrobiel tandplak omkring implantatet er den vigtigste årsag til implantattab. Hvis den mikrobielle vedhæftning ikke fjernes, kan sygdomme som peri-implantat mucositis og peri-implantitis opstå og resultere i implantattab på lang sigt. Peri-implantat mucositis er en reversibel inflammatorisk reaktion i det bløde væv, der omgiver implantatet i funktion. Peri-implantitis er en mikrobiel inflammatorisk sygdom karakteriseret ved resorption af den støttende knogle, der omgiver implantatet i funktion.7 Gram-negative anaerobe bakterier dominerer omkring de implantatsteder, der er ramt af sygdommen. Mens de ligner kroniske parodontale infektioner, har de en mere kompleks mikrobiologisk karakter.8 Fremherskende arter omkring et peri-implantitis-implantat er rødt kompleks (P. gingivalis, T. dentcola og T. forsythia) og appelsinkompleksbakterier (F. nucleatum og P. intermedia) beskrevet af Socransky.9 I 1989, Apse et al. rapporterede en væske omkring peri-implantat sulcus med egenskaber svarende til dem af gingival crevicular væske, og de kaldte denne væske peri-implant crevicular fluid (PICF).10 PICF er et inflammatorisk ekssudat dannet af osmotisk tryk. Biokemiske mediatorer i PICF er yderst vigtige for at bestemme sundheden for væv omkring implantatet.11 Prostaglandiner, især prostaglandin E2 (PGE2), betragtes som en potent mediator af alveolær knogleødelæggelse ved paradentose. Et stort antal undersøgelser rapporterede en stigning i PGE2-niveauer fra sund tilstand til parodontitis.12 Tumornekrosefaktor α (TNF-α) er et proinflammatorisk cytokin, der regulerer den gramnegative bakterielle respons. TNF-α-koncentrationen er en indikator for bakteriel belastning og grad af inflammation.13 I områder, hvor peri-implantitis er aktiv, er tilstedeværelsen og aktiviteten af ​​osteoklaster nødvendig for, at knogleødelæggelse kan forekomme. Dannelsen og aktiveringen af ​​osteoklaster reguleres gennem aktiveringen af ​​tre medlemmer af TNF-familien: receptoraktivator af nuklear faktor kappa B-ligand (RANKL), receptoraktivator af nuklear faktor kappa B (RANK) og osteoprotegerin (OPG). Osteoklastdifferentiering og -aktivering forekommer med bindingen af ​​RANKL til RANK over overfladen af ​​osteoklaster og prækursorer. OPG, som er et opløseligt protein af TNF-receptorer, antagoniserer RANK-RANKL-interaktion og øger knogledannelsen ved at hæmme osteoklastogenese. Niveauerne af proinflammatoriske cytokiner, såsom IL-1, IL-6, TNF-α og PGE2, og RANKL/OPG-hastigheder, som tillader bestemmelse af osteoklastisk aktivitet, ændres i tilfælde af peri-implantitis.14 Formålet med denne undersøgelse var at evaluere niveauerne af TNF-α, PGE2, RANKL, RANK og OPG i ekstra korte og standard dentale implantater, der fungerer i den bageste mandible. Et yderligere formål var at undersøge niveauerne af formodede orale patogener F. nucleatum, P. gingivalis, T. denticola, T. forsythia, P. intermedia og S. oralis i submucosale biofilmprøver fra de undersøgte steder.

MATERIALER OG METODER Denne undersøgelse blev udført ved at tilbagekalde personer, hvis bilaterale partielle tandtab blev behandlet med implantatstøttede faste restaureringer, og hvis implantater havde fungeret i mindst 3 år efter proteserehabilitering. Undersøgelsen blev udført i overensstemmelse med de etiske retningslinjer fra World Medical Association Declaration of Helsinki (version 2013) (Clinical Researches Ethical Board with the 28. 09. 2016 og 2016/009 afgørelse nummereret godkendelse).

I alt 31 patienter opfyldte inklusionskriterierne. En patient fortsatte ikke undersøgelsen. Yderligere blev 60 implantater undersøgt i 30 patienter (16 kvinder og 14 mænd). De bilaterale regioner af patienter med et standardimplantat og et ekstra kort implantat blev grupperet i to.16 Kontrolgruppe: Standardimplantat, intraknoglelængde ≥8 mm (30 implantater) Testgruppe: Ekstra kort implantat, intraknoglelængde ≤6 mm (30 implantater)

Indsamling af kliniske data En enkelt kalibreret undersøger udførte alle (fuldmund- og stedspecifikke) kliniske målinger (B.K.), inklusive sonderingsdybde (PD), klinisk tilknytningsniveau (CAL), tilstedeværelse af blødning ved sondering (BOP), 3- års overlevelsesrate (CSR) og knogletab (BL).

Værdierne af PD og BOP blev målt fra fire steder af hvert implantat (mesial, distal, bukkal og lingual) med en Williams type (Hue Friedy, Schweiz) plastik periodontal probe. PD blev registreret som afstanden fra bunden af ​​peri-implantatet til siden af ​​tyggegummiet i millimeter. BOP blev evalueret i henhold til tilstedeværelsen (+) eller fraværet (-) af blødning inden for de første 30 s efter målingen af ​​PD.17 Kontrol panoramafilm af alle patienter blev taget, og forskelle i det marginale knogleniveau mellem radiografibilleder efter implantatplacering og 3 år senere blev evalueret. Originale film og billeder taget senere blev taget med samme vinkel til standardisering.

Indsamling af PICF- og subgingival plakprøver Efter at plakkerne og de bløde vedhæftninger omkring implantaterne var fjernet, blev implantaterne isoleret ved hjælp af bomuldsruller og tørret med en luftspray. PICF'en blev opsamlet fra den mesio-bukkale region af implantatet under anvendelse af periopaper-strimler (Oraflow Inc, NY, USA). Papirstrimler blev placeret 1-2 mm inde i peri-implantat sulcus og opbevaret i 30 s. Papirstrimler blev anbragt i sterile Eppendorf-rør indeholdende 200 µL phosphatpufret saltvand (PBS). Rørene blev holdt ved -80°C indtil analysedagen. Papirstrimler forurenet med spyt eller blod blev udelukket fra prøveudtagningen.

Efter at have indsamlet PICF,. den supragingivale plaque blev forsigtigt fjernet under anvendelse af en steril scaler. Implantater blev isoleret under anvendelse af bomuldsruller og tørret med en luftspray. Subgingivale plakprøver blev indsamlet fra den mesio-bukkale region af implantatet under anvendelse af en steril Gracey-curette af plast (Hu-Friedy, Schweiz) i 30 s. De opsamlede prøver blev overført til sterile Eppendorf-rør indeholdende 200 µL PBS. Rørene blev holdt ved -80°C indtil analysedagen.

PICF-analyse Kommercielle enzym-koblede immunosorbent assay-sæt blev brugt til at måle niveauerne af TNF-α, PGE2, RANKL, RANK og OPG i overensstemmelse med producentens anbefalinger (Elabscience Biotechnology Co., Ltd, Wuhan, Kina). Måleområderne var som følger: TNF-a, 7,81-500 pg/ml; PGE2, 31.25-2000 pg/ml; RANKL, 0,16-10 pg/ml; RANK, 0,16-10 pg/ml; og OPG, 0,16-10 pg/ml. Optisk tæthed blev målt ved 450 nm, og prøverne blev sammenlignet med standarder. Biokemiske data blev målt som den samlede mængde (pg/30 s).

Genomisk DNA-præparation Et ekstraktionssæt blev brugt i overensstemmelse med producentens anbefalinger til at oprense DNA'et i de indsamlede plakprøver (GF-1 bakterielt DNA-ekstraktionssæt, Vivantis, Malaysia). Standarder blev brugt for totalt DNA i målbakterierne. Genomisk DNA blev opnået og opbevaret ved 4°C.

Realtidspolymerasekædereaktion Primære prober blev bestemt til at definere hver bakterie og observere proliferationskurverne ved anvendelse af realtidspolymerasekædereaktion (PCR) (tabel 1). Til DNA-amplifikationsreaktionen blev procedurer udført med et real-time PCR-system (Roche Light Cycler 480 Instrument II, Schweiz) under anvendelse af en mastermix (SYBR Green Master Mix; Life Technologies, CA, USA). PCR-cyklusser var som følger: 10 minutter ved 95°C, 40 cykler ved 95°C i 30 s og 2 minutter ved 60°C. DNA-indhold blev beregnet under anvendelse af standardkurver.

Statistisk analyse Statistiske analyser blev udført med SPSS 19.0 (IBM Inc., IL, USA). Kolmogorov-Smirnov og Shapiro-Wilk test blev brugt til at undersøge, om variablerne var normalfordelte. Signifikansniveauet blev brugt som 0,05 under kommentarer til resultaterne.

Mens man undersøgte forskellene mellem grupperne, blev t-testen med uafhængige prøver brugt, når variablerne var normalfordelt.

Den ikke-parametriske Mann-Whitney U-test blev brugt, når variablerne ikke var normalfordelte. Chi-kvadratanalysen blev brugt, mens man undersøgte sammenhængene mellem grupperne af nominelle variable. Overlevelsesraten (CSR) blev beregnet i henhold til antallet af korte og standardimplantater.