Sammenligning av korte og standard tannimplantater

INTRODUKSJON

Tannimplantater anses vanligvis som et alternativt behandlingsalternativ for å erstatte tapte tenner hos tannløse pasienter. Frekvensen av implantatplassering i regioner som er vanskeligere å rehabilitere har økt med økningen i suksessen til osseointegrasjon og overlevelse. Foruten implantatplassering på steder med utilstrekkelig toppbredde og -høyde, har imidlertid behandlingstiden og -kostnadene også økt med bruk av graftingprosedyrer.1 Ulike kirurgiske teknikker, som vertikal beinforstørrelse, sinusgulvhøyde og nervetransposisjon, har blitt utviklet for behandling av disse benvolumsviktene. Disse metodene er imidlertid teknisk sensitive og kan forårsake betydelige postoperative komplikasjoner. Korte tannimplantater har blitt foreslått som et enklere, billigere og raskere alternativ for å forhindre ulempene ved kirurgiske teknikker og for rehabilitering av tannløse områder.2,3 Et stort antall randomiserte kontrollerte kliniske studier viste at den langsiktige suksessen og overlevelsesraten for korte implantater var lik de for standard lange implantater.4-6 Akkumulering av mikrobiell tannplakk rundt implantatet er den viktigste årsaken til tap av implantat. Hvis det mikrobielle vedlegget ikke fjernes, kan sykdommer som periimplantat mukositt og periimplantitt oppstå og resultere i implantattap på lang sikt. Peri-implantat mukositt er en reversibel betennelsesreaksjon i bløtvevet som omgir implantatet i funksjon. Peri-implantitt er en mikrobiell inflammatorisk sykdom karakterisert ved resorpsjon av det støttende beinet som omgir implantatet i funksjon.7 Gram-negative anaerobe bakterier dominerer rundt implantatstedene som er påvirket av sykdommen. Mens de ligner kroniske periodontale infeksjoner, har de en mer kompleks mikrobiologisk karakter.8 De dominerende artene rundt et peri-implantitt-implantat er rødt kompleks (P. gingivalis, T. dentcola og T. forsythia) og appelsinkompleksbakterier (F. nucleatum og P. intermedia) beskrevet av Socransky.9 I 1989, Apse et al. rapporterte om en væske rundt peri-implantat sulcus med egenskaper som ligner de til gingival crevicular væske, og de kalte denne væsken peri-implant crevicular fluid (PICF).10 PICF er et inflammatorisk ekssudat dannet av osmotisk trykk. Biokjemiske mediatorer i PICF er svært viktige for å bestemme helsen til vev rundt implantatet.11 Prostaglandiner, spesielt prostaglandin E2 (PGE2), anses som en potent mediator av alveolær beinødeleggelse ved periodontitt. Et stort antall studier rapporterte en økning i PGE2-nivåer fra frisk tilstand til periodontitt.12 Tumornekrosefaktor α (TNF-α) er et proinflammatorisk cytokin som regulerer den gramnegative bakterielle responsen. TNF-α-konsentrasjonen er en indikator på bakteriemengde og grad av betennelse.13 I områder der peri-implantitt er aktiv, er tilstedeværelsen og aktiviteten av osteoklaster nødvendig for at beinødeleggelse skal skje. Dannelsen og aktiveringen av osteoklaster reguleres gjennom aktivering av tre medlemmer av TNF-familien: reseptoraktivator av kjernefaktor kappa B-ligand (RANKL), reseptoraktivator av kjernefaktor kappa B (RANK) og osteoprotegerin (OPG). Osteoklastdifferensiering og aktivering skjer med bindingen av RANKL til RANK over overflaten av osteoklaster og forløpere. OPG, som er et løselig protein av TNF-reseptorer, antagoniserer RANK-RANKL-interaksjon og øker bendannelse ved å hemme osteoklastogenese. Nivåene av proinflammatoriske cytokiner, slik som IL-1, IL-6, TNF-α og PGE2, og RANKL/OPG-hastigheter, som tillater bestemmelse av osteoklastisk aktivitet, endres ved peri-implantitt.14 Målet med denne studien var å evaluere nivåene av TNF-α, PGE2, RANKL, RANK og OPG i ekstra korte og standard tannimplantater som fungerer i den bakre underkjeven. Et ytterligere mål var å undersøke nivåene av antatte orale patogener F. nucleatum, P. gingivalis, T. denticola, T. forsythia, P. intermedia og S. oralis i submukosale biofilmprøver fra de studerte stedene.

MATERIALER OG METODER Denne studien ble utført ved å tilbakekalle personer hvis bilaterale partielle tanntap ble behandlet med implantatstøttede faste restaureringer og hvis implantater hadde fungert i minst 3 år etter proteserehabilitering. Studien ble utført i samsvar med de etiske retningslinjene fra World Medical Association Declaration of Helsinki (versjon 2013) (Clinical Researches Ethical Board with the 28. 09. 2016 og 2016/009 vedtak nummerert godkjenning).

Totalt 31 pasienter oppfylte inklusjonskriteriene. En pasient fortsatte ikke studien. Videre ble 60 implantater undersøkt hos 30 pasienter (16 kvinner og 14 menn). De bilaterale regionene til pasienter med et standardimplantat og et ekstra kort implantat ble gruppert i to.16 Kontrollgruppe: Standard implantat, intra-benlengde ≥8 mm (30 implantater) Testgruppe: Extra Short implantat, intra-benlengde ≤6 mm (30 implantater)

Innsamling av kliniske data En enkelt kalibrert undersøker utførte alle (fullmunn og stedsspesifikke) kliniske målinger (B.K.), inkludert sonderingsdybde (PD), klinisk tilknytningsnivå (CAL), tilstedeværelse av blødning ved sondering (BOP), 3- års overlevelsesrate (CSR) og bentap (BL).

Verdiene av PD og BOP ble målt fra fire steder av hvert implantat (mesialt, distalt, bukkalt og lingualt) med en Williams type (Hue Friedy, Sveits) plastisk periodontal probe. PD ble registrert som avstanden fra bunnen av peri-implantatet til siden av tannkjøttet i millimeter. BOP ble evaluert i henhold til nærvær (+) eller fravær (-) av blødning i løpet av de første 30 sekundene etter målingen av PD.17 Kontrollpanoramafilmer av alle pasienter ble tatt, og forskjeller i marginalt bennivå mellom radiografibilder etter implantatplassering og 3 år senere ble evaluert. Originale filmer og bilder tatt senere ble tatt med samme vinkel for standardisering.

Innsamling av PICF- og subgingival plakkprøver Etter at plakk og myke fester rundt implantatene var fjernet, ble implantatene isolert ved bruk av bomullsruller og tørket med en luftspray. PICF ble samlet fra den mesio-bukkale regionen av implantatet ved bruk av periopaper-strimler (Oraflow Inc, NY, USA). Papirstrimler ble plassert 1-2 mm inne i peri-implantat sulcus og holdt i 30 s. Papirstrimler ble plassert i sterile Eppendorf-rør som inneholdt 200 µL fosfatbufret saltvann (PBS). Rørene ble holdt ved -80°C frem til analysedagen. Papirstrimler kontaminert med spytt eller blod ble ekskludert fra prøvetakingen.

Etter å ha samlet inn PICF,. den supragingivale plakk ble forsiktig fjernet ved bruk av en steril scaler. Implantater ble isolert ved bruk av bomullsruller og tørket med en luftspray. Subgingivale plakkprøver ble samlet fra den mesio-bukkale regionen av implantatet ved bruk av en steril Gracey-kyrett av plast (Hu-Friedy, Sveits) i 30 s. Prøvene som ble samlet ble overført til sterile Eppendorf-rør som inneholdt 200 µL PBS. Rørene ble holdt ved -80°C frem til analysedagen.

PICF-analyse Kommersielle enzymkoblede immunosorbentanalysesett ble brukt for å måle nivåene av TNF-α, PGE2, RANKL, RANK og OPG i samsvar med produsentens anbefalinger (Elabscience Biotechnology Co., Ltd, Wuhan, Kina). Måleområdene var som følger: TNF-a, 7,81-500 pg/ml; PGE2, 31.25-2000 pg/ml; RANKL, 0,16-10 pg/ml; RANK, 0,16-10 pg/ml; og OPG, 0,16-10 pg/ml. Optisk tetthet ble målt ved 450 nm, og prøvene ble sammenlignet med standarder. Biokjemiske data ble målt som total mengde (pg/30 s).

Genomisk DNA-preparering Et ekstraksjonssett ble brukt i samsvar med produsentens anbefalinger for å rense DNA i de innsamlede plakkprøvene (GF-1 bakteriell DNA-ekstraksjonssett, Vivantis, Malaysia). Standarder ble brukt for totalt DNA i målbakteriene. Genomisk DNA ble oppnådd og lagret ved 4°C.

Sanntids polymerasekjedereaksjon Primære prober ble bestemt til å definere hver bakterie og observere spredningskurvene ved bruk av sanntids polymerasekjedereaksjon (PCR) (tabell 1). For DNA-amplifikasjonsreaksjonen ble prosedyrer utført med et sanntids PCR-system (Roche Light Cycler 480 Instrument II, Sveits) ved bruk av en mastermix (SYBR Green Master Mix; Life Technologies, CA, USA). PCR-sykluser var som følger: 10 minutter ved 95°C, 40 sykluser ved 95°C i 30 s og 2 minutter ved 60°C. DNA-innhold ble beregnet ved bruk av standardkurver.

Statistisk analyse Statistiske analyser ble utført med SPSS 19.0 (IBM Inc., IL, USA). Kolmogorov-Smirnov og Shapiro-Wilk tester ble brukt for å undersøke om variablene var normalfordelt. Signifikansnivået ble brukt som 0,05 under kommentering av resultatene.

Mens man undersøkte forskjellene mellom gruppene, ble t-testen for uavhengige utvalg brukt når variablene var normalfordelt.

Den ikke-parametriske Mann-Whitney U-testen ble brukt når variablene ikke var normalfordelt. Kjikvadratanalysen ble brukt mens man undersøkte sammenhengene mellom gruppene av nominelle variabler. Overlevelsesraten (CSR) ble beregnet i henhold til antall korte og standardimplantater plassert.