Afføring og serum CMV-PCR til diagnosticering af CMV colitis

Guldstandarden for diagnosticering af CMV colitis er koloskopi med vævsbiopsi. Histologi ved hæmatoxylin og eosinfarvning (H&E) har en høj specificitet på 92-100%, men lav sensitivitet på 10-87%. Immunhistokemi-farvning (IHC) øger diagnostisk følsomhed til 78-93%. Vævspolymerasekædereaktionsassay (PCR), metoden, der amplificerer CMV-DNA, har den højeste følsomhed (92-93%); der er dog ingen klar afskæringsværdi til at differentiere CMV-bystandere fra CMV colitis. Selvom koloskopi er guldstandarden, er det ikke tilladt at udføre i nogle situationer på grund af høj risiko for proceduremæssige komplikationer, såsom hos patienter med dyb neutropeni, trombocytopeni eller alvorlige sygdomme. Serum CMV-PCR er en ikke-invasiv test, der påviser CMV-viræmi, som kan være forbundet med CMV-GI-sygdom. Resultaterne af tidligere undersøgelser er imidlertid inkonsistente.

I de senere år har der været en stigende interesse for afføring CMV-PCR til diagnosticering af CMV colitis. Afføring CMV-PCR er en ikke-invasiv test, der kan være enten kvalitativ eller kvantitativ. I det første pilotstudie har Herfarth et al. rapporterede afførings CMV-PCR-sensitivitet på 83 % og specificitet på 93 % hos 19 patienter med inflammatorisk tarmsygdom. Siden da har der kun været nogle få undersøgelser, der rapporterer ydeevnen af ​​afføring CMV-PCR ved diagnosticering af CMV colitis, og deres resultater er inkonsekvente. Den rapporterede sensitivitet spænder fra 16,7 % til 85 %, og specificiteten spænder fra 71 til 96 %. Desuden er den diagnostiske ydeevne ved at kombinere serum og afføring CMV-PCR, som kunne forbedre den diagnostiske ydeevne, ikke blevet undersøgt. Derfor sigtede vi på at undersøge den diagnostiske ydeevne af afføring CMV-PCR, serum CMV-PCR og deres kombination ved diagnosticering af CMV colitis ved hjælp af vævshistopatologi som standardreference hos patienter med klinisk mistanke om CMV colitis. Derudover evaluerede vi også korrelationen af ​​viral belastning i afføring, serum, tyktarmsvæv og antallet af CMV-inficerede celler i tyktarmsvæv.

Patienter ældre end 18 år med klinisk mistanke om CMV colitis blev inkluderet. Kriterierne for klinisk mistanke om CMV colitis omfattede: i) tilstedeværelse af mindst én af risikofaktorerne, herunder human immundefektvirusinfektion, solide organ- eller hæmatologiske stamcelletransplantationer, hæmatologisk malignitet, inflammatorisk tarmsygdom, indtagelse af immunsuppressive midler eller kemoterapi, og kritisk syg med flere komorbiditeter, og ii) med symptomer fra mave-tarmkanalen, herunder mavesmerter, gastrointestinal blødning, diarré og tarm-ileus.

Alle deltagere gennemgik koloskopi med vævsbiopsi for både H&E-farvning og immunhistokemi for CMV (IHC-CMV). Patienter med påvisning af enten cytomegaliske celler eller IHC-CMV-celler blev diagnosticeret med CMV colitis. De to andre stykker tyktarmsvæv blev sendt til kvantitativ CMV-PCR (CMV R-gene® kit, detektionsgrænse 450 kopier/ml, Biomerieux, Frankrig). Patienter, der ikke kunne fortsætte med koloskopi og vævsbiopsi, blev udelukket. Kvantitativ afføring CMV-PCR (CMV R-gene® kit, detektionsgrænse 450 kopier/ml, Biomerieux, Frankrig) og kvantitativ serum CMV-PCR (Cobas® CMV, detektionsgrænse 150 kopier/ml, Roche, USA) blev indsamlet inden for syv dage efter koloskopi.