PRF-Wachstumsfaktorspiegel bei Diabetikern mit chronischer Parodontitis

Das Ziel der Studie der Prüfärzte war es, die Spiegel des von Blutplättchen abgeleiteten Wachstumsfaktors AB (PDGF-AB), des vaskulären endothelialen Wachstumsfaktors (VEGF), des transformierenden Wachstumsfaktors beta1 und beta 2 (TGF-β1 und β2), basischer Fibroblasten zu bewerten Wachstumsfaktor (b-FGF), insulinähnlicher Wachstumsfaktor-1 (IGF-1) bei Typ-2-Diabetikern (T2DM) mit chronischer Parodontitis.

Diese Studie bestand aus 80 Probanden; 20 Patienten waren T2DM mit parodontal gesund (DM-CTRL), 20 Patienten waren T2DM mit chronischer Parodontitis (DM-CP ), 20 Patienten waren systemisch gesund mit chronischer Parodontitis (CP; ), 20 Probanden waren systemisch und parodontal gesund (CTRL).

Die Probanden wurden klinisch in Bezug auf Plaqueindex (PI), Gingivaindex (GI), Sondierungstaschentiefe (PD), klinisches Attachmentlevel (CAL), Blutung bei Sondierung (BOP), aufgezeichnet an sechs Stellen pro Zahn (disto-facial , Mittelgesicht, Mesio-Gesicht, Mesio-Lingual, Disto-Lingual und Mittel-Lingual) unter Verwendung einer in Millimeter kalibrierten parodontalen Goldman/Fox-Williams-Sonde.

PRF wurde ohne biochemische Manipulation von Blut hergestellt. Intravenöses Blut von jedem Patienten wurde in sterilen 10-ml-Röhrchen ohne Antikoagulans durch Venenpunktion der antekubitalen Vene gesammelt. Sofort wurden Reagenzgläser unter Verwendung einer Zentrifugationsmaschine (Electro.mag M 815 P Laboratory Centrifuge; Istanbul, Türkei) bei 2700 U/min (ungefähr 700 g) für 12 min zentrifugiert. Das zentrifugierte Blut wies ein strukturiertes Fibringerinnsel in der Mitte des Röhrchens direkt zwischen den roten Blutkörperchen unten und azellulärem Plasma oben auf. PRF wurde unter Verwendung einer sterilen Schere leicht von der Basis der roten Blutkörperchen getrennt und in sterile Röhrchen eingeführt. Die Röhrchen wurden auf einen Schüttler gestellt und vorsichtig geschüttelt. Nach 5 Minuten wurden die Röhrchen gevortext, um eine PRF-Membran zu bilden, und das Volumen der Freisetzung wurde gemessen und die Freisetzung in das Röhrchen zurückgeführt. Die Röhrchen wurden weiter sanft geschüttelt. Proben wurden in der 5. Minute entnommen und sofort bei 5000 U/min für 15 Minuten zentrifugiert (Electro.mag M 815 P Laborzentrifuge ; Istanbul, Türkei), um alle restlichen Blutzellen zu pelletieren, und wurden für nachfolgende Assays bei -80 Grad Celsius gelagert.

Die Proben wurden unter Verwendung eines enzymgebundenen Immunadsorptionstests (ELISA) mit einem ELX 800 G ELISA-Gerät (BIO-TEC Instruments, Winooski, USA) getestet. Die folgenden ELISA-Kits wurden in dieser Studie verwendet: b-FGF, TGF-β2 und IGF 1 (Assay Biotechnology Company, CA, USA); PDGF-AB, VEGF und TGF-β1 (Boster Biological Technology, CA, USA).

Die statistische Analyse wurde unter Verwendung einer im Handel erhältlichen Software (SPSS 15.0; SPSS Inc., Chicago, IL) durchgeführt. Mit dem Shapiro-Wilk-Test wurde untersucht, ob die Daten normalverteilt sind. Wenn Normalverteilung mit gleichen Varianzen in PDGF-AB, VEGF, TGF-β1 angenommen wurde, wurden die Variablen unter Verwendung einer Einweg-Varianzanalyse (ANOVA) mit Bonferroni-Post-Hoc-Test verglichen. Wenn die Normalitätsannahme fehlschlug, wurden Vergleiche des Alters, TGF-β2, b-FGF, IGF-1, HbA1c, Nüchternblutzucker, postprandialer Blutzucker, Vollmund-PD, CAL, GI, PI und BOP getestet Nichtparametrischer Kruskal-Wallis-Test, gefolgt von Post-hoc-Gruppenvergleichen mit dem Bonferroni-adjustierten Mann-Whitney-U-Test.