Sammlung immunologischer Proben von Patienten mit Krebs oder Bluterkrankungen sowie gesunden Freiwilligen

HAUPTZIELE; I. Identifizieren Sie Veränderungen der Parameter des Immunsystems bei Patienten, die Immuntherapien erhalten (einschließlich Immun-Checkpoint-Inhibitoren, immunstimulierende/immunmodulatorische Wirkstoffe, Zelltherapien, Stammzelltransplantation) und vergleichen Sie sie mit Veränderungen bei Patienten, die konventionelle Chemotherapie, zielgerichtete Wirkstofftherapie und gesunde normale Freiwillige erhalten Multiparameter-Durchflusszytometrie, Flugzeit-Massenzytometrie, Zytokinquantifizierung, Funktionsanalyse von Immunzelluntergruppen, die über fluoreszenzaktivierte Zellsortierung (FACS) isoliert wurden, sowie genetische und proteomische Techniken (Desoxyribonukleinsäure [DNA]-Sequenzierung, Ribonukleinsäuresequenz [RNASeq] , Reverse Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion [RT-PCR], Western Blot).

SEKUNDÄRE ZIELE:

I. Optimierung der Methoden zur Messung des Funktionsstatus zirkulierender Immunzellen und hämatopoetischer Vorläufer (Aktivierung, Hemmung, Zytotoxizität, Proliferationskapazität).

II. Verwenden Sie genetische und epigenetische Techniken, um a) die klonale Diversität in T-Zell-Untergruppen zu untersuchen und b) die genetische Grundlage für die Immunrekonstitution von T-Zellen nach einer Stammzelltransplantation zu bestimmen.

UMRISS:

Bei Patienten und gesunden normalen Freiwilligen werden periphere Blutproben zur Analyse mittels Durchflusszytometrie, RNASeq, Immunhistochemie, Zytometrie-by-Time-of-Flight-Experimenten (CyTOF), Zellkulturen und funktionellen Studien von Immunzelluntergruppen, die durch FACS gewonnen wurden, entnommen. Bei den Patienten werden auch Knochenmarks- und Leukopherese-/Leukoreduktionsproben entnommen, und aus Routinetests werden Einzelzellsuspensionen und ausgeschnittene Tumorbiopsien zur Analyse mittels Immunhistochemie oder CyTOF gewonnen.

Nach Abschluss der Studie werden die Patienten bis zu 2 Jahre lang nachbeobachtet.