- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT04815811
Untersuchung der Geschlechtsunterschiede bei entzündlichen Erkrankungen bei Kindern (SepsiX)
Geschlechtsspezifische Unterschiede in der angeborenen Immunantwort wurden nachgewiesen und hauptsächlich dem Einfluss der Sexualsteroide zugeschrieben (1-18). Jüngste klinische Daten zeigten jedoch signifikante Unterschiede bei Entzündungsmarkern zwischen Jungen und Mädchen, die an akuten und chronischen Entzündungserkrankungen leiden (19-23). Die Sexualhormonspiegel bei präpubertären Kindern sind besonders niedrig und unzureichend, um die geschlechtsspezifischen Unterschiede zu erklären, die bei entzündlichen Erkrankungen von Neugeborenen bis zu älteren Menschen beobachtet werden, was auf die Beteiligung eines anderen Mechanismus hindeutet, wie z. B. den Einfluss von Genen, die sich auf den Geschlechtschromosomen befinden und an der Entzündungsreaktion beteiligt sind .
Das Ziel dieser Arbeit ist es, die Rolle des X-Chromosoms bei den Geschlechtsunterschieden bei entzündlichen Erkrankungen bei Kindern zu bewerten. Um die Rolle des X-Chromosoms relativ zu den Sexualsteroiden bei der geschlechtsspezifischen Entzündungsreaktion genauer zu diskriminieren, werden einige angeborene Immunfunktionen im Zusammenhang mit X-chromosomalen Genen im Vollblut von vorpubertären Kindern beiderlei Geschlechts, die an leiden, bewertet akute entzündliche Prozesse wie Pyelonephritis durch Escherichia coli, Lungenentzündung mit Pleuraerguss durch Streptococcus pneumoniae oder Sepsis
Studienübersicht
Status
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Viele Studien zeigten immunologische Unterschiede zwischen Männern und Frauen, die an akuten und chronischen Entzündungsprozessen leiden. Bei akuten entzündlichen Erkrankungen wie Sepsis haben Frauen im Vergleich zu Männern eine bessere Prognose (1,24-28).
Im Gegensatz dazu wird bei chronisch entzündlichen Erkrankungen wie Asthma oder Mukoviszidose eine schlechtere Prognose für Frauen beobachtet (8-10,12,13,29).
Die geschlechtsabhängige Entzündungsreaktion wurde dem Einfluss von Sexualhormonen auf das Immunsystem zugeschrieben. (2,15-18). Jüngste Studien zeigten jedoch Unterschiede im klinischen Ergebnis, aber auch in Entzündungsmarkern zwischen Jungen und Mädchen, die an akuten und chronischen entzündlichen Erkrankungen leiden (19-23). Die Sexualhormonspiegel bei präpubertären Kindern sind besonders niedrig und unzureichend, um die geschlechtsspezifischen Unterschiede zu erklären, die bei entzündlichen Erkrankungen von Neugeborenen bis zu älteren Menschen beobachtet werden, was auf die Beteiligung eines anderen Mechanismus hindeutet, wie z. B. den Einfluss von Genen, die sich auf den Geschlechtschromosomen befinden und an der Entzündungsreaktion beteiligt sind .
Das Ziel dieser Arbeit ist es, die potenziellen X-chromosomalen Mechanismen zu identifizieren, die für einige der Unterschiede zwischen Jungen und Mädchen in der Entzündungsreaktion verantwortlich sind, wodurch die Mädchen einem höheren Risiko ausgesetzt sind, Komplikationen bei chronischen Entzündungskrankheiten zu entwickeln, und die Jungen einem höheren Risiko ausgesetzt sind, tödlich zu verlaufen Komplikationen bei schweren akuten entzündlichen Erkrankungen wie Sepsis. Mehrere Gene, die für Komponenten der angeborenen Immunität codieren, sind mit dem X-Chromosom verbunden, wie z. B. das Diapedese-Molekül CD99 oder die Gene der TLR-Pathway-Proteine. (30-33). Das X-Chromosom ist auch stark angereichert mit Genen, die Mikro-RNAs (miRNAs) codieren, die an der posttranskriptionellen Regulation der Genexpression beteiligt sind, die eine entscheidende Rolle bei der Entzündungsreaktion des Immunsystems spielen (34-36).
Um die Rolle des X-Chromosoms relativ zu den Sexualsteroiden bei der geschlechtsspezifischen Entzündungsreaktion genauer zu unterscheiden, werden daher einige angeborene Immunfunktionen im Zusammenhang mit X-chromosomalen Genen im Vollblut von präpubertären Kindern beiderlei Geschlechts untersucht. an akuten entzündlichen Prozessen wie Pyelonephritis durch Escherichia coli, Lungenentzündung mit Pleuraerguss durch Streptococcus pneumoniae oder Sepsis leiden. Wir werden auch die Korrelationen zwischen entzündlichen und klinischen Markern der Krankheitsaktivität untersuchen, um Prognoseindikatoren in Abhängigkeit vom Geschlecht zu identifizieren. Um den Beitrag des Mikrobioms abzugrenzen, werden wir außerdem die Darmmikrobiota in Stuhlproben der rekrutierten Patienten untersuchen.
Studientyp
Einschreibung (Voraussichtlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Alexandros Popotas, MD
- Telefonnummer: +32 2 477 24 24
- E-Mail: alexandros.popotas@ulb.be
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Nicolas Lefevre, MD, PhD
- Telefonnummer: +32 2 477 23 41
- E-Mail: nicolas.lefevre@huderf.be
Studienorte
-
-
-
Brussels, Belgien, 1020
- Rekrutierung
- Huderf
-
Kontakt:
- Alexandros Popotas, MD
- Telefonnummer: +32 2 477 24 24
- E-Mail: alexandros.popotas@ulb.be
-
Kontakt:
- Georges Casimir, MD, PhD
- Telefonnummer: + 32 2 477 29 45
- E-Mail: georges.casimir@huderf.be
-
Hauptermittler:
- Alexandros Popotas, MD
-
Unterermittler:
- Francis Corazza, MD, PhD
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien der experimentellen Gruppe:
- Männlich (XY) und weiblich (XX) im Alter von 6 Monaten bis 7 Jahren.
Subjekt ins Krankenhaus eingeliefert entweder wegen:
(1) Durch Escherichia Coli verursachte Harnwegsinfektion mit:
- Temperatur ≥ bis 38,5°C
Urinanalyse
- Leukozyten-Esterase +
- UND/ODER Nitrite +
- UND/ODER Pyurie (≥ 100WBC/mm³)
- UND/ODER Bakteriurie.
Urinanalyse
- Sauberer Urinfang: > 10^4 Escherichia Coli Colony Form Unit (CFU)/mm (Urinsammelmethode für Kinder > 3 Jahre oder Toilettengänger oder durch Stimulation für Kinder < 3 Jahre)
- Transurethrale Blasenkatheterisierung: > 10^4 Escherichia Coli Kolonieformeinheit (KBE)/mm³ (Urinsammelmethode für Kinder <3 Jahre).
Suprapubische Aspiration: > 1 Kolonieformeinheit Escherichia Coli (KBE)/mm³ (Urinsammelmethode für Kinder <3 Jahre).
(2) Pneumonie mit Pleuraerguss mit:
- Temperatur ≥ 38,5 °C
- Thorax-Röntgen/Ultraschall: Pleuraerguss
Streptococcus pneumoniae identifiziert durch Blut- oder Pleuraflüssigkeitskultur oder durch PCR
(3) Sepsis mit:
- Dokumentierte oder vermutete Infektion
- Temperatur < 36° oder > 38,3°C
Herzrhythmus:
- 2 SD über dem Alter normal
- 6-23 Monate: >180/Min
- 24-71 Monate: >140/Min
- 72-84 Monate: >130/Min
Atemfrequenz:
- 6-23 Monate: >35/Min
- 24 - 71 Monate: >30/Min
- 72-84 Monate: >20/Min
Leukozyten:
- 6-23 Monate: >17500/µL oder <5000/µL
- 24-71 Monate: >15500/µL oder <6000/µL
- 72-84 Monate: >13500/µL oder <4500/µL
- und/oder CRP (Blut) > 2 SD über dem Normalwert
Und mindestens zwei der folgenden:
- PaO2/FiO2 <300
- Nachweisliche Notwendigkeit von >50 % FiO2, um eine Sättigung von ≥ 92 % aufrechtzuerhalten
- Notwendigkeit einer mechanischen Belüftung
- Glasgow-Punktzahl < 11
- Urinausscheidung < 0,5 ml/kg/h für mindestens 2 h
Kreatinin:
- 6-11 Monate: >0,4mg/dl
- 12-23 Monate: >0,5mg/dl
- 24-59 Monate: >0,8mg/dl
- 60-84 Monate: >1 mg/dl
- Oder Kreatinin steigt um mehr als 0,5 mg/dL
- Thrombozytenzahl <100000/ml
- Bilirubin > 2 mg/dl
Mittlerer arterieller Druck (MAP)
- 6-11 Monate: <55 mmHg
- 12-23 Monate: <60 mmHg
- 24-59 Monate: <62 mmHg
- 60-84 Monate: <65 mmHg
- SBP weniger als zwei SD unter dem Altersnormalwert
- Längere Kapillarnachfüllung: > 5 Sek
Einschlusskriterien der Kontrollgruppe:
- Männlich (XY) und weiblich (XX) im Alter von 6 Monaten bis 7 Jahren.
- Geplanter chirurgischer Eingriff für eine nicht infektiöse Pathologie.
Ausschlusskriterien:
- Verwendung von Antithrombotika (Acetylsalicylsäure, Thienopyridine, Dipyridamol, Glykoprotein IIb / IIIa-Antagonisten, Vitamin-K-Antagonisten, Heparine).
- Angeborene oder erworbene Immunschwäche: Immunsuppressiva, Transplantation hämatopoetischer Stammzellen, Immunglobulintherapie, extrakorporale Membranoxygenierung (ECMO).
- Hämodialyse.
- 48h nach Herzoperation jeglicher Art.
- Bösartiger Krebs.
- HIV.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: GRUNDWISSENSCHAFT
- Zuteilung: NON_RANDOMIZED
- Interventionsmodell: PARALLEL
- Maskierung: KEINER
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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EXPERIMENTAL: Kinder, die an akuten entzündlichen Prozessen leiden.
Die Studienpopulation besteht aus männlichen und weiblichen Kindern im Alter von 6 Monaten bis 7 Jahren, die wegen einer der drei folgenden Arten von akuten Entzündungsprozessen ins Krankenhaus eingeliefert werden:
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Blutentnahmen zur Bewertung der möglichen Rolle der Geschlechtschromosomen bei der angeborenen Immunantwort durch Analyse der entzündlichen Zytokinproduktion (IL-1β, IL-6, IL-8, IL-10, TNF-α und IFN-α), Untersuchung des Zelldiapedeserezeptors CD99 auf PMNs, Monozyten und Lymphozyten, Analyse des Beitrags von X-verknüpften Genen der TLR-Signalwege und des Einflusses von X-verknüpften miRNAs.
Kotprobenentnahme Um den Beitrag des Mikrobioms abzugrenzen, werden wir die Darmmikrobiota in Kotproben der rekrutierten Patienten untersuchen.
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ANDERE: Kontrollgruppe
Männliche und weibliche Kinder im Alter von 6 Monaten bis 7 Jahren, die für eine geplante Operation wegen einer nicht entzündlichen Pathologie ins Krankenhaus eingeliefert wurden.
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Blutentnahmen zur Bewertung der möglichen Rolle der Geschlechtschromosomen bei der angeborenen Immunantwort durch Analyse der entzündlichen Zytokinproduktion (IL-1β, IL-6, IL-8, IL-10, TNF-α und IFN-α), Untersuchung des Zelldiapedeserezeptors CD99 auf PMNs, Monozyten und Lymphozyten, Analyse des Beitrags von X-verknüpften Genen der TLR-Signalwege und des Einflusses von X-verknüpften miRNAs.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Vollblutproduktion von Zytokin IL-6
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die Produktion von IL6 wird durch Multiplex-Techniken gemessen.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Vollblutproduktion des Zytokins IL-1β
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Vollblutproduktion von Zytokin IL-8
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Vollblutproduktion von Zytokin IL-10
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Vollblutproduktion des Zytokins TNF-α
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Vollblutproduktion von Zytokin Interferon-α
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Intrazelluläre Menge der phosphorylierten Formen von NF-κB p65 in einer Leukozytenpopulation.
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die intrazelluläre Menge der phosphorilierten Formen ERK1/2 in der Leukozytenpopulation.
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die intrazelluläre Menge der phosphorylierten Formen von p38 MAPK in der Leukozytenpopulation.
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression des Zelldiapedeserezeptors CD99 auf PMNs
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen des Zelldiapedeserezeptors CD99 an Leukozyten werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression des Zelldiapedeserezeptors CD99 auf Monozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen des Zelldiapedeserezeptors CD99 an Leukozyten werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression des Zelldiapedeserezeptors CD99 auf Lymphozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen des Zelldiapedeserezeptors CD99 an Leukozyten werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von TLR2 auf PMNs
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von TLR2 auf Monozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von TLR2 auf Lymphozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von TLR4 auf PMNs
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von TLR4 auf Monozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
|
|
Expression von TLR4 auf Lymphozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Messungen intrazellulärer phosphorylierter Formen von TLR-Pathway-Proteinen sowie die Expression von TLR2 und TLR4 werden mittels Durchflusszytometrie durchgeführt
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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BTK-Genexpression
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die Messungen werden mit dem Quantitect Reverse Transcription Kit (Qiagen, Manchester, UK) für die quantitative PCR (qPCR) an Leukozyten durchgeführt.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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IRAK1-Genexpression
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die Messungen werden mit dem Quantitect Reverse Transcription Kit (Qiagen, Manchester, UK) für die quantitative PCR (qPCR) an Leukozyten durchgeführt.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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NEMO-Genexpression
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die Messungen werden mit dem Quantitect Reverse Transcription Kit (Qiagen, Manchester, UK) für die quantitative PCR (qPCR) an Leukozyten durchgeführt.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von X-verknüpften miRNAs in Leukozyten
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Die Expression von X-chromosomalen miRNAs wird durch Sequenzierung und qRT-PCR an Leukozyten und/oder Plasmaproben gemessen.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Expression von X-verknüpften miRNAs im Plasma
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
|
Die Expression von X-chromosomalen miRNAs wird durch Sequenzierung und qRT-PCR an Leukozyten und/oder Plasmaproben gemessen.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Leukozytenpopulation
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Anzahl der weißen Blutkörperchen, einschließlich Neutrophile, Monozyten, Monozyten-Subtypen und Lymphozyten.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Leukozytenpopulation
Zeitfenster: Tag 1
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Anzahl der weißen Blutkörperchen, einschließlich Neutrophile, Monozyten, Monozyten-Subtypen und Lymphozyten.
Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 1
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Leukozytenpopulation
Zeitfenster: Tag 2
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Anzahl der weißen Blutkörperchen, einschließlich Neutrophile, Monozyten, Monozyten-Subtypen und Lymphozyten.
Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 2
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Leukozytenpopulation
Zeitfenster: Tag 3
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Anzahl der weißen Blutkörperchen, einschließlich Neutrophile, Monozyten, Monozyten-Subtypen und Lymphozyten.
Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 3
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CRP
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
|
innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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CRP
Zeitfenster: Tag 1
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 1
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CRP
Zeitfenster: Tag 2
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 2
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CRP
Zeitfenster: Tag 3
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe
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Tag 3
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Gesamt-17β-Östradiol
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Testosteron
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
|
innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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IGF1
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Mikrobiom-Analyse
Zeitfenster: Während des betreffenden Krankenhausaufenthalts
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Während des betreffenden Krankenhausaufenthalts
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pSOFA-Score
Zeitfenster: innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe.
Der pSOFA wird alle 24 Stunden ausgewertet, um Labor- und klinische Daten zu vergleichen.
Der Score basiert auf dem PaO2: FiO2- oder SpO2: FiO2-Verhältnis, der Thrombozytenzahl, dem Bilirubinspiegel, dem mittleren arteriellen Druck (MAP), dem Glasgow-Score und dem Kreatininspiegel.
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innerhalb von 24 Stunden nach Krankenhausaufnahme (Tag 0)
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pSOFA-Score
Zeitfenster: Tag 1
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe.
Der pSOFA wird alle 24 Stunden ausgewertet, um Labor- und klinische Daten zu vergleichen.
Der Score basiert auf dem PaO2: FiO2- oder SpO2: FiO2-Verhältnis, der Thrombozytenzahl, dem Bilirubinspiegel, dem mittleren arteriellen Druck (MAP), dem Glasgow-Score und dem Kreatininspiegel.
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Tag 1
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pSOFA-Score
Zeitfenster: Tag 2
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Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe.
Der pSOFA wird alle 24 Stunden ausgewertet, um Labor- und klinische Daten zu vergleichen.
Der Score basiert auf dem PaO2: FiO2- oder SpO2: FiO2-Verhältnis, der Thrombozytenzahl, dem Bilirubinspiegel, dem mittleren arteriellen Druck (MAP), dem Glasgow-Score und dem Kreatininspiegel.
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Tag 2
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pSOFA-Score
Zeitfenster: Tag 3
|
Gilt nur für die Sepsis-Untergruppe.
Der pSOFA wird alle 24 Stunden ausgewertet, um Labor- und klinische Daten zu vergleichen.
Der Score basiert auf dem PaO2: FiO2- oder SpO2: FiO2-Verhältnis, der Thrombozytenzahl, dem Bilirubinspiegel, dem mittleren arteriellen Druck (MAP), dem Glasgow-Score und dem Kreatininspiegel.
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Tag 3
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Mitarbeiter und Ermittler
Mitarbeiter
Ermittler
- Hauptermittler: Alexandros Popotals, MD, Huderf
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Venn A, Lewis S, Cooper M, Hill J, Britton J. Questionnaire study of effect of sex and age on the prevalence of wheeze and asthma in adolescence. BMJ. 1998 Jun 27;316(7149):1945-6. doi: 10.1136/bmj.316.7149.1945. No abstract available.
- Schroder J, Kahlke V, Staubach KH, Zabel P, Stuber F. Gender differences in human sepsis. Arch Surg. 1998 Nov;133(11):1200-5. doi: 10.1001/archsurg.133.11.1200.
- Angele MK, Pratschke S, Hubbard WJ, Chaudry IH. Gender differences in sepsis: cardiovascular and immunological aspects. Virulence. 2014 Jan 1;5(1):12-9. doi: 10.4161/viru.26982. Epub 2013 Nov 5.
- Wichmann MW, Inthorn D, Andress HJ, Schildberg FW. Incidence and mortality of severe sepsis in surgical intensive care patients: the influence of patient gender on disease process and outcome. Intensive Care Med. 2000 Feb;26(2):167-72. doi: 10.1007/s001340050041.
- Schoeneberg C, Kauther MD, Hussmann B, Keitel J, Schmitz D, Lendemans S. Gender-specific differences in severely injured patients between 2002 and 2011: data analysis with matched-pair analysis. Crit Care. 2013 Nov 29;17(6):R277. doi: 10.1186/cc13132.
- Moss M, Mannino DM. Race and gender differences in acute respiratory distress syndrome deaths in the United States: an analysis of multiple-cause mortality data (1979- 1996). Crit Care Med. 2002 Aug;30(8):1679-85. doi: 10.1097/00003246-200208000-00001.
- Carr MJ, Moss E, Waters A, Dean J, Jin L, Coughlan S, Connell J, Hall WW, Hassan J. Molecular epidemiological evaluation of the recent resurgence in mumps virus infections in Ireland. J Clin Microbiol. 2010 Sep;48(9):3288-94. doi: 10.1128/JCM.00434-10. Epub 2010 Jul 21.
- McClelland EE, Smith JM. Gender specific differences in the immune response to infection. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2011 Jun;59(3):203-13. doi: 10.1007/s00005-011-0124-3. Epub 2011 Mar 26.
- Vink NM, Postma DS, Schouten JP, Rosmalen JG, Boezen HM. Gender differences in asthma development and remission during transition through puberty: the TRacking Adolescents' Individual Lives Survey (TRAILS) study. J Allergy Clin Immunol. 2010 Sep;126(3):498-504.e1-6. doi: 10.1016/j.jaci.2010.06.018.
- Chen W, Mempel M, Schober W, Behrendt H, Ring J. Gender difference, sex hormones, and immediate type hypersensitivity reactions. Allergy. 2008 Nov;63(11):1418-27. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01880.x.
- Raghavan D, Varkey A, Bartter T. Chronic obstructive pulmonary disease: the impact of gender. Curr Opin Pulm Med. 2017 Mar;23(2):117-123. doi: 10.1097/MCP.0000000000000353.
- Fogarty A, Hubbard R, Britton J. International comparison of median age at death from cystic fibrosis. Chest. 2000 Jun;117(6):1656-60. doi: 10.1378/chest.117.6.1656.
- Sweezey NB, Ratjen F. The cystic fibrosis gender gap: potential roles of estrogen. Pediatr Pulmonol. 2014 Apr;49(4):309-17. doi: 10.1002/ppul.22967. Epub 2013 Dec 11.
- Betteridge JD, Armbruster SP, Maydonovitch C, Veerappan GR. Inflammatory bowel disease prevalence by age, gender, race, and geographic location in the U.S. military health care population. Inflamm Bowel Dis. 2013 Jun;19(7):1421-7. doi: 10.1097/MIB.0b013e318281334d.
- Ahmed SA, Talal N. Sex hormones and the immune system--Part 2. Animal data. Baillieres Clin Rheumatol. 1990 Apr;4(1):13-31. doi: 10.1016/s0950-3579(05)80241-9.
- Lahita RG. Sex hormones and the immune system--Part 1. Human data. Baillieres Clin Rheumatol. 1990 Apr;4(1):1-12. doi: 10.1016/s0950-3579(05)80240-7. No abstract available.
- Bouman A, Heineman MJ, Faas MM. Sex hormones and the immune response in humans. Hum Reprod Update. 2005 Jul-Aug;11(4):411-23. doi: 10.1093/humupd/dmi008. Epub 2005 Apr 7.
- Bosch F, Angele MK, Chaudry IH. Gender differences in trauma, shock and sepsis. Mil Med Res. 2018 Oct 26;5(1):35. doi: 10.1186/s40779-018-0182-5.
- Casimir GJ, Heldenbergh F, Hanssens L, Mulier S, Heinrichs C, Lefevre N, Desir J, Corazza F, Duchateau J. Gender differences and inflammation: an in vitro model of blood cells stimulation in prepubescent children. J Inflamm (Lond). 2010 Jun 2;7:28. doi: 10.1186/1476-9255-7-28.
- Casimir GJ, Mulier S, Hanssens L, Knoop C, Ferster A, Hofman B, Duchateau J. Chronic inflammatory diseases in children are more severe in girls. Shock. 2010 Jul;34(1):23-6. doi: 10.1097/SHK.0b013e3181ce2c3d.
- Casimir GJ, Mulier S, Hanssens L, Zylberberg K, Duchateau J. Gender differences in inflammatory markers in children. Shock. 2010 Mar;33(3):258-62. doi: 10.1097/SHK.0b013e3181b2b36b.
- Casimir GJ, Lefevre N, Corazza F, Duchateau J. Sex and inflammation in respiratory diseases: a clinical viewpoint. Biol Sex Differ. 2013 Sep 1;4:16. doi: 10.1186/2042-6410-4-16. eCollection 2013.
- Lefevre N, Noyon B, Biarent D, Corazza F, Duchateau J, Casimir G. Sex Differences in Inflammatory Response and Acid-Base Balance in Prepubertal Children with Severe Sepsis. Shock. 2017 Apr;47(4):422-428. doi: 10.1097/SHK.0000000000000773.
- Martin GS, Mannino DM, Eaton S, Moss M. The Epidemiology of Sepsis in the United States from 1979 through 2000 [Internet]. http://dx.doi.org/10.1056/NEJMoa022139. 2009 [cited 2019 Feb 27]. Available from: https://www.nejm.org/doi/10.1056/NEJMoa022139?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori%3Arid%3Acrossref.org&rfr_dat=cr_pub%3Dwww.ncbi.nlm.nih.gov
- Wichmann et al. - 2000 - Incidence and mortality of severe sepsis in surgic.pdf [Internet]. [cited 2019 Feb 27]. Available from: https://link.springer.com/content/pdf/10.1007/s001340050041.pdf
- The effect of sex on asthma control from the National Asthma Survey - Journal of Allergy and Clinical Immunology [Internet]. [cited 2019 Feb 27]. Available from: https://www.jacionline.org/article/S0091-6749(08)02373-7/fulltext
- Johnston CM, Lovell FL, Leongamornlert DA, Stranger BE, Dermitzakis ET, Ross MT. Large-scale population study of human cell lines indicates that dosage compensation is virtually complete. PLoS Genet. 2008 Jan;4(1):e9. doi: 10.1371/journal.pgen.0040009. Epub 2007 Dec 13.
- Lefevre N, Corazza F, Duchateau J, Desir J, Casimir G. Sex differences in inflammatory cytokines and CD99 expression following in vitro lipopolysaccharide stimulation. Shock. 2012 Jul;38(1):37-42. doi: 10.1097/SHK.0b013e3182571e46.
- Spolarics Z. The X-files of inflammation: cellular mosaicism of X-linked polymorphic genes and the female advantage in the host response to injury and infection. Shock. 2007 Jun;27(6):597-604. doi: 10.1097/SHK.0b013e31802e40bd.
- Li Q, Verma IM. NF-kappaB regulation in the immune system. Nat Rev Immunol. 2002 Oct;2(10):725-34. doi: 10.1038/nri910. Erratum In: Nat Rev Immunol 2002 Dec;2(12):975.
- O'Connell RM, Rao DS, Chaudhuri AA, Baltimore D. Physiological and pathological roles for microRNAs in the immune system. Nat Rev Immunol. 2010 Feb;10(2):111-22. doi: 10.1038/nri2708.
- Ceribelli A, Satoh M, Chan EK. MicroRNAs and autoimmunity. Curr Opin Immunol. 2012 Dec;24(6):686-91. doi: 10.1016/j.coi.2012.07.011. Epub 2012 Aug 14.
- Dorhoi A, Iannaccone M, Farinacci M, Fae KC, Schreiber J, Moura-Alves P, Nouailles G, Mollenkopf HJ, Oberbeck-Muller D, Jorg S, Heinemann E, Hahnke K, Lowe D, Del Nonno F, Goletti D, Capparelli R, Kaufmann SH. MicroRNA-223 controls susceptibility to tuberculosis by regulating lung neutrophil recruitment. J Clin Invest. 2013 Nov;123(11):4836-48. doi: 10.1172/JCI67604.
- Morgan E, Varro R, Sepulveda H, Ember JA, Apgar J, Wilson J, Lowe L, Chen R, Shivraj L, Agadir A, Campos R, Ernst D, Gaur A. Cytometric bead array: a multiplexed assay platform with applications in various areas of biology. Clin Immunol. 2004 Mar;110(3):252-66. doi: 10.1016/j.clim.2003.11.017.
- Kuczynski J, Stombaugh J, Walters WA, Gonzalez A, Caporaso JG, Knight R. Using QIIME to analyze 16S rRNA gene sequences from microbial communities. Curr Protoc Bioinformatics. 2011 Dec;Chapter 10:10.7.1-10.7.20. doi: 10.1002/0471250953.bi1007s36.
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