- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06080581
Mitochondriale Dysfunktionen führen zur Insulinresistenz (MITO-DYS-IR)
Mitochondriale Störungen, die die Insulinresistenz der Muskeln beim Menschen vorantreiben
Das übergeordnete Ziel dieser Beobachtungsstudie besteht darin, mitochondriale Muskeldefekte bei Personen zu charakterisieren, die pathogene mitochondriale DNA-Mutationen (mtDNA) tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.
In einem Fall-Kontroll-Design werden Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen mit Kontrollpersonen verglichen, deren Geschlecht, Alter und körperliche Aktivitätsniveau übereinstimmen. Die Teilnehmer nehmen an einem Screening-Besuch und zwei experimentellen Versuchen teil, darunter:
- Ein oraler Glukosetoleranztest
- Eine hyperinsulinämisch-euglykämische Klemme kombiniert mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz
- Muskelbiopsieproben
Studienübersicht
Status
Detaillierte Beschreibung
Hintergrund: Periphere Insulinresistenz ist ein wesentlicher Risikofaktor für Stoffwechselerkrankungen wie Typ-2-Diabetes. Der Großteil der durch Insulin stimulierten Glukoseverwertung erfolgt über die Skelettmuskulatur, daher ist die Wiederherstellung der Insulinwirkung in der Skelettmuskulatur von entscheidender Bedeutung für die Prävention von Typ-2-Diabetes. Mitochondriale Dysfunktion ist an der Ätiologie der Muskelinsulinresistenz beteiligt. Da die Mitochondrienfunktion durch die Quantität und Qualität des Proteoms bestimmt wird, können Veränderungen im mitochondrialen Muskelproteom eine entscheidende Rolle bei der Pathophysiologie der Insulinresistenz spielen. Allerdings ist die Insulinresistenz multifaktorieller Natur und es ist unklar, ob mitochondriale Störungen eine Ursache oder eine Folge einer beeinträchtigten Insulinwirkung sind. In den letzten Jahren hat die Untersuchung von Menschen mit genetischen Mutationen ein enormes Potenzial gezeigt, den mechanistischen Zusammenhang zwischen zwei physiologischen Variablen herzustellen; Wenn die Mutation tatsächlich einen funktionellen Einfluss auf eine dieser Variablen hat, kann die Richtung der Kausalität leicht zugeschrieben werden. Mitochondriale Myopathien sind genetische Störungen der mitochondrialen Atmungskette, die überwiegend die Skelettmuskulatur betreffen. Mitochondriale Myopathien werden durch pathogene Mutationen in der nuklearen oder mitochondrialen DNA (mtDNA) verursacht, die letztendlich zu einer mitochondrialen Dysfunktion führen. Obwohl die Prävalenz von mtDNA-Mutationen nur 1 von 5.000 beträgt, hat die Untersuchung von Patienten mit mtDNA-Defekten das Potenzial, einzigartige Informationen über die pathogene Rolle mitochondrialer Störungen zu liefern, die in keinem Verhältnis zur Seltenheit der betroffenen Personen stehen. Die m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert, ist die häufigste Mutation, die beim Menschen zu einer mitochondrialen Myopathie führt. Die m.3243A>G-Mutation ist mit einer beeinträchtigten Glukosetoleranz und Insulinresistenz in der Skelettmuskulatur verbunden. Am wichtigsten ist, dass bei Trägern der m.3243A>G-Mutation eine Insulinresistenz einer Beeinträchtigung der β-Zellfunktion vorausgeht, was diese Patienten zu einem idealen menschlichen Modell für die Untersuchung des ursächlichen Zusammenhangs zwischen Muskel-Mitochondrien-Dysfunktion und Insulinresistenz macht. Daher könnte eine umfassende Charakterisierung mitochondrialer Funktionsdefekte und der damit verbundenen Proteomveränderungen bei Patienten mit einer mtDNA-Mutation im Zusammenhang mit einem insulinresistenten Phänotyp den ursächlichen Zusammenhang zwischen mitochondrialen Störungen und Insulinresistenz aufklären. Da mitochondriale Dysfunktion viele Gesichter hat (z.B. verringerte Sauerstoffverbrauchsrate, beeinträchtigte ATP-Synthese, Überproduktion reaktiver Sauerstoffspezies, verändertes Membranpotential) könnte ein solcher Ansatz klären, welche Merkmale der mitochondrialen Dysfunktion eine herausragende Rolle bei der Pathogenese der Insulinresistenz spielen.
Ziel: Charakterisierung mitochondrialer Muskeldefekte bei Personen, die pathogene mitochondriale DNA-Mutationen (mtDNA) tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.
Studiendesign: Fall-Kontroll-Studie an Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen (n=15) und gesunden Kontrollpersonen (n=15), abgestimmt auf Geschlecht, Alter und körperliche Aktivität.
Endpunkt: Unterschiede zwischen Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen und Kontrollen.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Matteo Fiorenza, Ph.D.
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: matteo.fiorenza@regionh.dk
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Tue Leth Nielsen, MD
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: tue.leth.nielsen.01@regionh.dk
Studienorte
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Copenhagen, Dänemark, 2100
- Rekrutierung
- Rigshospitalet
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Kontakt:
- Tue Leth Nielsen, MD
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: tue.leth.nielsen.01@regionh.dk
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Personen mit mitochondrialer Myopathie aufgrund pathogener mtDNA-Mutationen werden identifiziert und vom Copenhagen Neuromuscular Center oder der Abteilung für klinische Genetik (Rigshospitalet) rekrutiert.
Kontrollfreiwillige werden in Dänemark über Stellenausschreibungen rekrutiert.
Beschreibung
Zulassungskriterien für Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen
Einschlusskriterien:
- Bekannte m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert
- Andere bekannte mtDNA-Punktmutationen
Ausschlusskriterien:
- Verwendung von Antiarrhythmika oder anderen Medikamenten, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
- Es wurden schwere Herzerkrankungen, dysregulierte Schilddrüsenerkrankungen oder andere dysregulierte Endokrinopathien oder andere Erkrankungen diagnostiziert, die nach Ansicht der Prüfärzte das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
- Schwangerschaft
Zulassungskriterien für Kontrollen
Ausschlusskriterien:
- Aktuelle und regelmäßige Einnahme von Antidiabetika oder anderen Medikamenten, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
- Diagnostizierte Herzerkrankung, symptomatisches Asthma, Leberzirrhose oder -versagen, chronische Nierenerkrankung, dysregulierte Schilddrüsenerkrankungen oder andere dysregulierte Endokrinopathien oder andere Erkrankungen, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen
- Täglicher Konsum von Tabakprodukten
- Übermäßiger Alkoholkonsum
- Schwangerschaft
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
Kohorten und Interventionen
Gruppe / Kohorte |
---|
Mitochondriale Myopathie
Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen
|
Kontrolle
Personen ohne mtDNA-Mutationen
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Mitochondriale Muskelatmung
Zeitfenster: Grundlinie
|
Der mitochondriale O2-Fluss wird durch hochauflösende Respirometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
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Grundlinie
|
Produktion mitochondrialer reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) im Muskel
Zeitfenster: Grundlinie
|
Mitochondriale H2O2-Emissionsraten werden durch hochauflösende Fluorometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
|
Grundlinie
|
Mitochondriales Muskelproteom
Zeitfenster: Grundlinie
|
Mitochondriale Proteomsignaturen werden durch massenspektrometrische Proteomik in Muskelbiopsieproben bestimmt
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Grundlinie
|
Insulinsensitivität der Skelettmuskulatur
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
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Die durch Insulin stimulierte Muskelglukoseaufnahme wird durch die hyperinsulinämisch-euglykämische Clamp-Methode bestimmt, die mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz kombiniert wird
|
90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Insulinsensitivität des gesamten Körpers
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Die Insulinsensitivität des gesamten Körpers wird mit der hyperinsulinämisch-euglykämischen Clamp-Methode bestimmt
|
90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Muskel-mtDNA-Heteroplasmie
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die mtDNA-Mutationslast wird in Muskelbiopsieproben von Patienten mit mitochondrialer Myopathie gemessen
|
Grundlinie
|
Muskelintegrierte Stressreaktionsgene
Zeitfenster: Grundlinie
|
Der mRNA-Gehalt von Genen, die den integrierten Stressreaktionsweg steuern, wird durch Echtzeit-PCR in Muskelbiopsieproben gemessen.
|
Grundlinie
|
Glukosetoleranz
Zeitfenster: 0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
|
Die Glukosetoleranz wird anhand der Plasmaglukosetoleranzkurve bestimmt, die während eines oralen Glukosetoleranztests gemessen wird
|
0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
|
Funktion der Betazellen
Zeitfenster: 0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
|
Die Betazellfunktion wird durch Messungen von Plasmainsulin und Insulin-C-Peptid während eines oralen Glukosetoleranztests bestimmt
|
0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
|
Muskelinsulinsignalisierung
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Insulinvermittelte Veränderungen in der Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die die Insulinwirkung modulieren, werden durch Immunblotting in Muskel- und Fettbiopsieproben gemessen
|
Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Muskelintegrierte Stressreaktionssignalproteine
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die den integrierten Stressreaktionsweg modulieren, wird durch Immunblotting in Muskelbiopsieproben gemessen.
|
Grundlinie
|
Muskelfreisetzung von FGF21 und GDF15
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Die Skelettmuskelproduktion von FGF21 und GDF15 wird durch Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Differenz von Plasma-FGF21 und GDF15 bestimmt
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Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
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Andere Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Herz-Lungen-Fitness
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die maximale Sauerstoffaufnahme der Lunge (VO2max) wird während eines inkrementellen Belastungstests bis zur Erschöpfung bestimmt
|
Grundlinie
|
Selbstberichtete körperliche Aktivität
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die selbst gemeldete körperliche Aktivität wird mit dem International Physical Activity Questionnaire – Short Form (IPAQ-SF) gemessen.
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Grundlinie
|
Beinmuskelmasse
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die Beinmuskelmasse wird mittels Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie bestimmt
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Grundlinie
|
Körperzusammensetzung
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die fettfreie Masse des gesamten Körpers und die Fettmasse werden durch Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie bestimmt
|
Grundlinie
|
Grad der körperlichen Aktivität
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die körperliche Aktivität wird mit am Handgelenk getragenen Beschleunigungsmessern gemessen
|
Grundlinie
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Mitarbeiter
Ermittler
- Hauptermittler: Matteo Fiorenza, Ph.D., Rigshospitalet, Denmark
- Hauptermittler: John Vissing, MD, Rigshospitalet, Denmark
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- DeFronzo RA, Ferrannini E. Insulin resistance. A multifaceted syndrome responsible for NIDDM, obesity, hypertension, dyslipidemia, and atherosclerotic cardiovascular disease. Diabetes Care. 1991 Mar;14(3):173-94. doi: 10.2337/diacare.14.3.173.
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- DeFronzo RA, Simonson D, Ferrannini E. Hepatic and peripheral insulin resistance: a common feature of type 2 (non-insulin-dependent) and type 1 (insulin-dependent) diabetes mellitus. Diabetologia. 1982 Oct;23(4):313-9. doi: 10.1007/BF00253736.
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- Saleheen D, Natarajan P, Armean IM, Zhao W, Rasheed A, Khetarpal SA, Won HH, Karczewski KJ, O'Donnell-Luria AH, Samocha KE, Weisburd B, Gupta N, Zaidi M, Samuel M, Imran A, Abbas S, Majeed F, Ishaq M, Akhtar S, Trindade K, Mucksavage M, Qamar N, Zaman KS, Yaqoob Z, Saghir T, Rizvi SNH, Memon A, Hayyat Mallick N, Ishaq M, Rasheed SZ, Memon FU, Mahmood K, Ahmed N, Do R, Krauss RM, MacArthur DG, Gabriel S, Lander ES, Daly MJ, Frossard P, Danesh J, Rader DJ, Kathiresan S. Human knockouts and phenotypic analysis in a cohort with a high rate of consanguinity. Nature. 2017 Apr 12;544(7649):235-239. doi: 10.1038/nature22034.
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Studienaufzeichnungsdaten
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Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
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Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
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