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Mitochondriale Dysfunktionen führen zur Insulinresistenz (MITO-DYS-IR)

17. November 2023 aktualisiert von: Matteo Fiorenza, Rigshospitalet, Denmark

Mitochondriale Störungen, die die Insulinresistenz der Muskeln beim Menschen vorantreiben

Das übergeordnete Ziel dieser Beobachtungsstudie besteht darin, mitochondriale Muskeldefekte bei Personen zu charakterisieren, die pathogene mitochondriale DNA-Mutationen (mtDNA) tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.

In einem Fall-Kontroll-Design werden Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen mit Kontrollpersonen verglichen, deren Geschlecht, Alter und körperliche Aktivitätsniveau übereinstimmen. Die Teilnehmer nehmen an einem Screening-Besuch und zwei experimentellen Versuchen teil, darunter:

  • Ein oraler Glukosetoleranztest
  • Eine hyperinsulinämisch-euglykämische Klemme kombiniert mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz
  • Muskelbiopsieproben

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Hintergrund: Periphere Insulinresistenz ist ein wesentlicher Risikofaktor für Stoffwechselerkrankungen wie Typ-2-Diabetes. Der Großteil der durch Insulin stimulierten Glukoseverwertung erfolgt über die Skelettmuskulatur, daher ist die Wiederherstellung der Insulinwirkung in der Skelettmuskulatur von entscheidender Bedeutung für die Prävention von Typ-2-Diabetes. Mitochondriale Dysfunktion ist an der Ätiologie der Muskelinsulinresistenz beteiligt. Da die Mitochondrienfunktion durch die Quantität und Qualität des Proteoms bestimmt wird, können Veränderungen im mitochondrialen Muskelproteom eine entscheidende Rolle bei der Pathophysiologie der Insulinresistenz spielen. Allerdings ist die Insulinresistenz multifaktorieller Natur und es ist unklar, ob mitochondriale Störungen eine Ursache oder eine Folge einer beeinträchtigten Insulinwirkung sind. In den letzten Jahren hat die Untersuchung von Menschen mit genetischen Mutationen ein enormes Potenzial gezeigt, den mechanistischen Zusammenhang zwischen zwei physiologischen Variablen herzustellen; Wenn die Mutation tatsächlich einen funktionellen Einfluss auf eine dieser Variablen hat, kann die Richtung der Kausalität leicht zugeschrieben werden. Mitochondriale Myopathien sind genetische Störungen der mitochondrialen Atmungskette, die überwiegend die Skelettmuskulatur betreffen. Mitochondriale Myopathien werden durch pathogene Mutationen in der nuklearen oder mitochondrialen DNA (mtDNA) verursacht, die letztendlich zu einer mitochondrialen Dysfunktion führen. Obwohl die Prävalenz von mtDNA-Mutationen nur 1 von 5.000 beträgt, hat die Untersuchung von Patienten mit mtDNA-Defekten das Potenzial, einzigartige Informationen über die pathogene Rolle mitochondrialer Störungen zu liefern, die in keinem Verhältnis zur Seltenheit der betroffenen Personen stehen. Die m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert, ist die häufigste Mutation, die beim Menschen zu einer mitochondrialen Myopathie führt. Die m.3243A>G-Mutation ist mit einer beeinträchtigten Glukosetoleranz und Insulinresistenz in der Skelettmuskulatur verbunden. Am wichtigsten ist, dass bei Trägern der m.3243A>G-Mutation eine Insulinresistenz einer Beeinträchtigung der β-Zellfunktion vorausgeht, was diese Patienten zu einem idealen menschlichen Modell für die Untersuchung des ursächlichen Zusammenhangs zwischen Muskel-Mitochondrien-Dysfunktion und Insulinresistenz macht. Daher könnte eine umfassende Charakterisierung mitochondrialer Funktionsdefekte und der damit verbundenen Proteomveränderungen bei Patienten mit einer mtDNA-Mutation im Zusammenhang mit einem insulinresistenten Phänotyp den ursächlichen Zusammenhang zwischen mitochondrialen Störungen und Insulinresistenz aufklären. Da mitochondriale Dysfunktion viele Gesichter hat (z.B. verringerte Sauerstoffverbrauchsrate, beeinträchtigte ATP-Synthese, Überproduktion reaktiver Sauerstoffspezies, verändertes Membranpotential) könnte ein solcher Ansatz klären, welche Merkmale der mitochondrialen Dysfunktion eine herausragende Rolle bei der Pathogenese der Insulinresistenz spielen.

Ziel: Charakterisierung mitochondrialer Muskeldefekte bei Personen, die pathogene mitochondriale DNA-Mutationen (mtDNA) tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.

Studiendesign: Fall-Kontroll-Studie an Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen (n=15) und gesunden Kontrollpersonen (n=15), abgestimmt auf Geschlecht, Alter und körperliche Aktivität.

Endpunkt: Unterschiede zwischen Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen und Kontrollen.

Studientyp

Beobachtungs

Einschreibung (Geschätzt)

30

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studieren Sie die Kontaktsicherung

Studienorte

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Ja

Probenahmeverfahren

Nicht-Wahrscheinlichkeitsprobe

Studienpopulation

Personen mit mitochondrialer Myopathie aufgrund pathogener mtDNA-Mutationen werden identifiziert und vom Copenhagen Neuromuscular Center oder der Abteilung für klinische Genetik (Rigshospitalet) rekrutiert.

Kontrollfreiwillige werden in Dänemark über Stellenausschreibungen rekrutiert.

Beschreibung

Zulassungskriterien für Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen

Einschlusskriterien:

  • Bekannte m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert
  • Andere bekannte mtDNA-Punktmutationen

Ausschlusskriterien:

  • Verwendung von Antiarrhythmika oder anderen Medikamenten, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
  • Es wurden schwere Herzerkrankungen, dysregulierte Schilddrüsenerkrankungen oder andere dysregulierte Endokrinopathien oder andere Erkrankungen diagnostiziert, die nach Ansicht der Prüfärzte das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
  • Schwangerschaft

Zulassungskriterien für Kontrollen

Ausschlusskriterien:

  • Aktuelle und regelmäßige Einnahme von Antidiabetika oder anderen Medikamenten, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
  • Diagnostizierte Herzerkrankung, symptomatisches Asthma, Leberzirrhose oder -versagen, chronische Nierenerkrankung, dysregulierte Schilddrüsenerkrankungen oder andere dysregulierte Endokrinopathien oder andere Erkrankungen, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen
  • Täglicher Konsum von Tabakprodukten
  • Übermäßiger Alkoholkonsum
  • Schwangerschaft

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

Kohorten und Interventionen

Gruppe / Kohorte
Mitochondriale Myopathie
Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen
Kontrolle
Personen ohne mtDNA-Mutationen

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Mitochondriale Muskelatmung
Zeitfenster: Grundlinie
Der mitochondriale O2-Fluss wird durch hochauflösende Respirometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
Grundlinie
Produktion mitochondrialer reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) im Muskel
Zeitfenster: Grundlinie
Mitochondriale H2O2-Emissionsraten werden durch hochauflösende Fluorometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
Grundlinie
Mitochondriales Muskelproteom
Zeitfenster: Grundlinie
Mitochondriale Proteomsignaturen werden durch massenspektrometrische Proteomik in Muskelbiopsieproben bestimmt
Grundlinie
Insulinsensitivität der Skelettmuskulatur
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
Die durch Insulin stimulierte Muskelglukoseaufnahme wird durch die hyperinsulinämisch-euglykämische Clamp-Methode bestimmt, die mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz kombiniert wird
90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
Insulinsensitivität des gesamten Körpers
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
Die Insulinsensitivität des gesamten Körpers wird mit der hyperinsulinämisch-euglykämischen Clamp-Methode bestimmt
90–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Muskel-mtDNA-Heteroplasmie
Zeitfenster: Grundlinie
Die mtDNA-Mutationslast wird in Muskelbiopsieproben von Patienten mit mitochondrialer Myopathie gemessen
Grundlinie
Muskelintegrierte Stressreaktionsgene
Zeitfenster: Grundlinie
Der mRNA-Gehalt von Genen, die den integrierten Stressreaktionsweg steuern, wird durch Echtzeit-PCR in Muskelbiopsieproben gemessen.
Grundlinie
Glukosetoleranz
Zeitfenster: 0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
Die Glukosetoleranz wird anhand der Plasmaglukosetoleranzkurve bestimmt, die während eines oralen Glukosetoleranztests gemessen wird
0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
Funktion der Betazellen
Zeitfenster: 0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
Die Betazellfunktion wird durch Messungen von Plasmainsulin und Insulin-C-Peptid während eines oralen Glukosetoleranztests bestimmt
0–180 Minuten nach Einnahme einer oralen Glukoselösung
Muskelinsulinsignalisierung
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
Insulinvermittelte Veränderungen in der Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die die Insulinwirkung modulieren, werden durch Immunblotting in Muskel- und Fettbiopsieproben gemessen
Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
Muskelintegrierte Stressreaktionssignalproteine
Zeitfenster: Grundlinie
Die Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die den integrierten Stressreaktionsweg modulieren, wird durch Immunblotting in Muskelbiopsieproben gemessen.
Grundlinie
Muskelfreisetzung von FGF21 und GDF15
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
Die Skelettmuskelproduktion von FGF21 und GDF15 wird durch Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Differenz von Plasma-FGF21 und GDF15 bestimmt
Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme

Andere Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Herz-Lungen-Fitness
Zeitfenster: Grundlinie
Die maximale Sauerstoffaufnahme der Lunge (VO2max) wird während eines inkrementellen Belastungstests bis zur Erschöpfung bestimmt
Grundlinie
Selbstberichtete körperliche Aktivität
Zeitfenster: Grundlinie
Die selbst gemeldete körperliche Aktivität wird mit dem International Physical Activity Questionnaire – Short Form (IPAQ-SF) gemessen.
Grundlinie
Beinmuskelmasse
Zeitfenster: Grundlinie
Die Beinmuskelmasse wird mittels Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie bestimmt
Grundlinie
Körperzusammensetzung
Zeitfenster: Grundlinie
Die fettfreie Masse des gesamten Körpers und die Fettmasse werden durch Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie bestimmt
Grundlinie
Grad der körperlichen Aktivität
Zeitfenster: Grundlinie
Die körperliche Aktivität wird mit am Handgelenk getragenen Beschleunigungsmessern gemessen
Grundlinie

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Matteo Fiorenza, Ph.D., Rigshospitalet, Denmark
  • Hauptermittler: John Vissing, MD, Rigshospitalet, Denmark

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Allgemeine Veröffentlichungen

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

20. Oktober 2023

Primärer Abschluss (Geschätzt)

1. Dezember 2025

Studienabschluss (Geschätzt)

1. Dezember 2025

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

29. September 2023

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

6. Oktober 2023

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

12. Oktober 2023

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

18. November 2023

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

17. November 2023

Zuletzt verifiziert

1. November 2023

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur Mitochondriale Erkrankungen

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