- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT04444245
Rejuvenecimiento ovárico con plasma rico en plaquetas (PRP) y fracción vascular del estroma de tejido autólogo (tSVF) y tSVF enriquecido con células (OVAR-REJUV)
Restablecimiento de la función hormonal ovárica, retraso de la menopausia o reversión de la menopausia temprana con alta densidad (HD PRP), tSVF + PRP o tSVF + PRP enriquecido con células mediante inyección ovárica guiada por ultrasonido
Descripción general del estudio
Estado
Descripción detallada
Ya se ha demostrado en varias series que la colocación intraovárica de plasma rico en plaquetas (PRP) devuelve los niveles de hormonas perimenopáusicas y posmenopáusicas tempranas a los niveles premenopáusicos y al comportamiento cíclico premenopáusico, incluso dando como resultado embarazos y partos saludables. infantes La intención de este ensayo es evaluar la utilidad del PRP para mejorar el estado hormonal y la sintomatología clínica en mujeres perimenopáusicas y posmenopáusicas tempranas, y en mujeres con insuficiencia ovárica prematura no Turner, mediante la documentación de las mejoras en los parámetros bioquímicos/hormonales. , la densidad ósea y la calidad de vida relacionada con la salud física y mental, además de comparar la duración y la eficacia de este procedimiento de PRP con la colocación intraovárica de elementos celulares y citocinas biocelulares fisiológicamente activos contenidos en la Fracción Vascular Estromal derivada del tejido adiposo (tSVF).
Cabe señalar que la tasa de pérdida de densidad ósea en las mujeres es máxima en los 12 meses anteriores y 24 meses posteriores a la menopausia. Las cantidades porcentuales absolutas y relativas de grasa corporal y músculo cambian de manera adversa: aumenta la grasa y disminuye la masa muscular, y los cambios más dramáticos también ocurren en el período de transición a la menopausia. Por lo tanto, este estudio ofrece la posibilidad de documentar el cese medible de la pérdida de densidad ósea o la reducción de la tasa de pérdida de densidad ósea en comparación con patrones conocidos bien establecidos y controles históricos como resultado de las intervenciones relativamente inocuas propuestas. La misma tecnología que se usará para la evaluación de la densidad ósea, la absorciometría de fotón único, también se usará para cuantificar la composición corporal de grasa versus músculo al inicio ya los 18 meses.
La SVF se puede caracterizar además como SVF celular o SVF tisular (cSVF o tSVF). La SVF tisular (tSVF) se obtiene mediante una aspiración manual de microcánula con jeringa cerrada de pequeño volumen de tejido adiposo subcutáneo (aproximadamente 10+ cucharaditas), seguido de un sistema cerrado de decantación para eliminar los fluidos infranadantes seguido de la emulsificación del remanente hasta el grado requerido de homogeneidad y tamaño de partículas reducido para permitir la inyección a través de orificios de aguja de calibre convencional. La SVF tisular se caracteriza por la retención de una proporción de la matriz no celular de colágeno y restos vasculares finos, que juntos forman una matriz que retiene y proporciona estructura a los elementos biocelulares que están incrustados en su interior. El SVF celular (cSVF) comienza con la misma miniaspiración, pero se caracteriza por una centrifugación en sistema cerrado, seguida de digestión enzimática para aislar/concentrar el SVF celular (cSVF). Después de la neutralización enzimática y el enjuague, el concentrado resultante de células nucleadas estromales/troncales viables se prepara para su colocación guiada en el tejido del parénquima ovárico. Se analiza y cuantifica una muestra de cada inyectado mediante citometría de flujo láser estándar, incluida la viabilidad y el número de células dentro de cada muestra.
El estudio incluye el uso de PRP (Emcyte II Pure PRP, Florida, EE. UU.) PRP según las instrucciones del fabricante) solo como control en el primer segmento de tratamiento (ARM), que volumétricamente será igual que los otros inyectados, para la colocación guiada documentada dentro de los ovarios . Un segundo ARM comparativo compuesto por PRP se combinará con tSVF emulsionado (Sterile Tulip Nanofat desechable, San Diego, California (CA), EE. UU.). En un tercer ARM, se combinará PRP más tSVF emulsionado con ambos cSVF concentrados. Este brazo es para determinar los efectos de una concentración celular más alta que la lograda en el segundo ARM usando los concentrados celulares logrados usando Centricyte 1000 (Healeon Medical Inc, Newbury Park, CA, EE. UU.). Los resultados primarios de cada uno de estos procedimientos opcionales se compararán y evaluarán en cuanto a seguridad y eficacia clínica para mejorar el retorno de la función ovárica para determinar la metodología preferida para lograr los máximos resultados.
Las características basales y monitoreadas de los pacientes son las siguientes:
- El estado inicial de todos los pacientes se determinará utilizando índices bioquímicos relevantes, incluidos los niveles séricos de hormona estimulante del folículo (FSH), hormona antimülleriana (AMH), hormona luteinizante (LH), estradiol (E2) y progesterona (PRG). Estos se repetirán a los 30 y 90 días, y luego cada 3 meses durante 15 meses adicionales, con un seguimiento total de 18 meses. El panel completo de sangre (SMA 12), el conteo sanguíneo completo (CBC), los perfiles de lípidos y los índices de coagulación se obtendrán al inicio y se repetirán (sin índices de coagulación) a los 12 meses.
- A medida que la densidad ósea comienza a disminuir a un ritmo significativo en el período perimenopáusico, se obtendrá una determinación de la densidad ósea con absorciometría de fotón único al inicio y nuevamente a los 12 y/o 18 meses. Las proporciones de grasa/músculo de la composición corporal se evaluarán con la misma tecnología en la misma sesión.
- La calidad de vida relacionada con la salud física y mental se evaluará con las encuestas de calidad de vida al inicio, a los 6 y 12 meses.
- El volumen ovárico se evaluará al inicio mediante ecografía endovaginal, junto con el tamaño y la cantidad de folículos presentes, y luego cada 6 meses.
- Registro diario de ciclos menstruales: frecuencia/intervalo, días y duración.
En ARM 1, solo se colocará PRP dentro de los ovarios. En ARM 2, PRP se combinará con tSVF. En ARM 3, tSVF se combinará con cSVF y PRP. Se utilizarán volúmenes equivalentes de inyectado en cada ARM para evitar la cuestión de la posible interferencia con el parénquima ovárico que afecte el resultado debido a los efectos de la variable de volumen. Se compararán los resultados primarios de cada uno de estos brazos, lo que nos informará sobre una metodología preferida para una evaluación adicional y, en última instancia, para la práctica clínica.
El plasma rico en plaquetas autólogo es una modalidad de tratamiento establecida que utiliza metodologías y kits aprobados por la FDA, y se ha convertido en una modalidad de tratamiento madura para una variedad de patologías ortopédicas y de tejidos blandos. Como se señaló, su seguridad y utilidad en el rejuvenecimiento ovárico y la reversión de la infertilidad ya se han establecido en series de casos revisadas por pares.
Se ha propuesto la seguridad del uso de ciertas células madre mesenquimales humanas alogénicas (hMSC) y se ha probado de forma limitada su eficacia en algunos estudios anteriores. Los productos probados tienen protocolos variables para aislar y documentar el contenido y las viabilidades celulares.
Se ha informado que las células estromales autólogas (contenidas en cSVF) son seguras y eficaces en muchas aplicaciones/estudios y en ensayos clínicos actualmente en curso en otros sistemas y patologías corporales. Estas células se obtienen fácilmente y se aíslan/concentran en un sistema cerrado a partir de la fracción vascular estromal derivada de tejido adiposo (tSVF) del paciente. Esto es importante ya que tales tejidos son células genéticamente únicas del propio paciente y, en teoría, potencialmente más seguras que las células madre mesenquimales humanas alogénicas (hMSC), que son potencialmente genéticamente extrañas y conllevan el riesgo de contaminación durante el procesamiento y la entrega.
Un enfoque combinado puede permitir la implementación de un número adecuadamente mayor de células, factores de crecimiento, exosomas/microvesículas sin necesidad de expansión del cultivo.
El contenido del cSVF contiene una población heterogénea de células no designadas (tipo tallo) y de apoyo (estromal). Se considera que esta combinación de células adultas autólogas, junto con células del estroma, ofrece importantes cualidades terapéuticas y regenerativas basadas en características de diferenciación celular y paracrinas (señales de comunicación secretoras y respuestas al nicho) en diversos grados. Se cree que dicha señalización puede constituir el propio mecanismo del cuerpo para la homeostasis y la regeneración. Se propone la interacción de estas señales bioquímicas complejas para reclutar o activar más procesos reparativos con la interacción con las células y tejidos nativos del huésped. Además, este proceso reparador puede convertirse en importantes actividades y necesidades específicas del huésped en el lugar en el que se coloca la combinación terapéutica. Los mecanismos precisos que subyacen a estos procesos de reparación están bajo intensas investigaciones.
En todos los casos, las plaquetas y los materiales biocelulares para la inyección intraovárica se colocarán bajo la guía de imágenes convencionales utilizando ecografía endovaginal. Se utilizarán agujas modificadas especialmente diseñadas para administrar con precisión los productos biológicos a los tejidos parenquimatosos intraováricos objetivo. La metodología requerida es muy similar en general a la recuperación de ovocitos en los tratamientos de infertilidad, que se realizan en todo el mundo, con un riesgo mínimo de efectos adversos millones de veces al año.
Se sabe que los procedimientos provocan una incomodidad mínima, y la preparación del paciente varía de ninguna a ansiolisis de apoyo leve. El dolor posterior al procedimiento, si lo hay, puede controlarse eficazmente con paracetamol. Se observa a los pacientes después del procedimiento durante 60 a 120 minutos y luego se les da de alta con instrucciones escritas adecuadas después del procedimiento para que regresen periódicamente para el seguimiento clínico y de laboratorio según el protocolo descrito en el análisis de resultados. El objetivo de este estudio busca comparar la duración de la mejora hormonal, clínica y de calidad de vida entre los 3 brazos del estudio.
Para la minoría de participantes del estudio en quienes los ovarios no son fácilmente accesibles mediante ultrasonido endovaginal, un subconjunto de pacientes puede requerir el uso de guía laparoscópica. En todos estos casos, las intervenciones se llevarán a cabo en entornos hospitalarios, con el investigador preparando el inyectado y ginecólogos u otros cirujanos especialistas adecuados realizando el procedimiento laparoscópico utilizando procedimientos estándar como guía.
Tipo de estudio
Inscripción (Anticipado)
Fase
- Fase 1
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
Vermont
-
Colchester, Vermont, Estados Unidos, 05446
- Fanny Island Campus Medical Building
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- Sintomatología o alteración hormonal durante al menos 6 meses
- Suspensión de la terapia de reemplazo hormonal (TRH) durante al menos 3 meses antes de la intervención
- Se suspendió la Botanoterapia/Danazol por 3 meses
- Dispuesto a cumplir con los requisitos del estudio, incluido evitar la TRH, la botanoterapia y el danazol durante al menos 12 meses después de la intervención.
- Mujeres mayores de 35 años
- Presencia de al menos un ovario
- Estar de acuerdo en informar cualquier embarazo al personal de investigación de inmediato.
- Dispuesto y capaz de cumplir con los requisitos de estudio.
Criterio de exclusión:
- Deficiencia actual o previa de inmunoglobulina A (IgA)
- Insuficiencia ovárica prematura actual o anterior debido a un origen genético, como el síndrome de Turner o anomalía cromosómica
- Lesiones o adherencias actuales o anteriores en la pelvis o los ovarios
- Embarazo actual y en curso
- Uso actual y continuo de anticoagulantes
- Diátesis hemorrágica conocida
- Trastorno importante de salud mental actual y en curso que impide la participación en el estudio
- Abuso o dependencia activa actual y continua de sustancias
- Neoplasia maligna de ovario previa o actual, o mutación genética conocida
- Dolor pélvico crónico actual y continuo que no sea dispareunia o trastornos del tegumento vulvar/vaginal
- Historia de la endometriosis
- Diagnóstico actual de cáncer o cáncer activo en los últimos 24 meses
- Inaccesibilidad ovárica determinada por ecografía endovaginal
- Insuficiencia ovárica prematura actual o previa
- Trastornos endocrinológicos activos no tratados (disfunción tiroidea descompensada, diabetes insulinodependiente (tipo 1, tipo 2)
- Índice de masa corporal (IMC) >30 kg/m2
- Trastorno autoinmune sistémico
- Conoce el Síndrome de Ovario Poliquístico
- No estar dispuesto a terminar los tratamientos con fármacos ováricos o con hormonas exógenas 3 meses antes de ingresar al estudio y evitar las hormonas exógenas durante la duración del estudio
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
|
Experimental: ARM 1 Plasma Rico en Plaquetas
Extracción de sangre, procesamiento de PRP, glóbulos blancos bajos, plaquetas múltiples >/= 4, p.
(Emcyte II Pure PRP) Colocación intraovárica guiada por ultrasonido endovaginal en el parénquima ovárico, preferiblemente en ambos si es accesible.
|
Uso de lipocosecha de microcánula estéril desechable para adquirir tSVF
Venopunción estándar, concentración de PRP en dispositivo aprobado por la FDA (Emcyte II)
Guía de ultrasonido endovaginal para la colocación intraovárica, bilateralmente
|
|
Experimental: ARM 2 tSVF y PRP emulsionados
Extracción de sangre, procesamiento de PRP, glóbulos blancos bajos, plaquetas múltiples >/= 4, p. Emcyte PRP Lipoaspiración utilizando microcánula cerrada de recolección de pequeño volumen (Tulip tumescente fluido infiltrado y Tulip Harvester). Decantación de lípidos libres. Emulsificación de tejido adiposo en tSVF (Tulip Nanofat device). Mezcla de Nanofat con PRP en una proporción de 3:1. Colocación intraovárica guiada por ecografía endovaginal en el ovario, preferiblemente en ambos si es accesible. |
Uso de lipocosecha de microcánula estéril desechable para adquirir tSVF
Venopunción estándar, concentración de PRP en dispositivo aprobado por la FDA (Emcyte II)
Guía de ultrasonido endovaginal para la colocación intraovárica, bilateralmente
10 cc de solución salina normal estéril para inyección
Emulsificación de tSVF cosechada con dispositivo de pantalla Nanofat estéril y desechable
|
|
Experimental: ARM 3 tSVF y PRP emulsionados, enriquecidos con cSVF
Extracción de sangre, procesamiento de PRP, glóbulos blancos bajos, plaquetas múltiples >/= 4, p. Preparación de Emcyte PRP tSVF: Lipoaspiración utilizando una microcánula cerrada para la recolección de un volumen pequeño (Tulip tumescente líquido infiltrado y Tulip Harvester). Decantación de lípidos libres. Emulsificación de tejido adiposo (dispositivo Tulip Nanofat). Preparación de cSVF: lipoaspiración como arriba. Aislamiento y concentración de la fracción vascular del estroma celular (cSVF) utilizando una centrífuga Healeon Medical CentriCyte 1000, una incubadora y una placa agitadora con enzima Liberase estéril (Roche Medical) según el protocolo del fabricante. Cuantificación del recuento de células nucleadas viables con citometría de flujo. Adición de sedimento de células nucleadas viables a tSVF. Mezcla de emulsión tSVF/cSVF con PRP en una proporción de 3:1. Colocación intraovárica guiada por ecografía endovaginal en el ovario, preferiblemente en ambos si es accesible. Intervención: |
Uso de lipocosecha de microcánula estéril desechable para adquirir tSVF
Venopunción estándar, concentración de PRP en dispositivo aprobado por la FDA (Emcyte II)
Guía de ultrasonido endovaginal para la colocación intraovárica, bilateralmente
10 cc de solución salina normal estéril para inyección
Emulsificación de tSVF cosechada con dispositivo de pantalla Nanofat estéril y desechable
Digestión de tSVF con Liberase, aislamiento y concentración de cSVF en Centricyte 1000
|
|
Experimental: Colocación guiada intraovárica ARM 4
Aguja recolectora de ovocitos modificada de calibre 23 específicamente diseñada para colocación guiada por ultrasonido
|
Guía de ultrasonido endovaginal para la colocación intraovárica, bilateralmente
|
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Seguridad del paciente para el procedimiento
Periodo de tiempo: 30 dias
|
Reporte de todos los Eventos Adversos, Eventos Adversos Severos
|
30 dias
|
Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Reanudación menstrual
Periodo de tiempo: línea de base hasta los 18 meses
|
Documentación del diario por temas de frecuencia menstrual, duración
|
línea de base hasta los 18 meses
|
|
Respuesta hormonal
Periodo de tiempo: Línea base, 3 meses, 6 meses, 12 meses, 18 meses
|
Concentraciones de Hormona Folicular Estimulante (FSH), Hormona Luteinizante (LH), Estradiol, Hormona Antimulleriana.
Se tabulará el porcentaje de pacientes con reducciones significativas de FSH y LH, aumentos de estradiol y hormona antimülleriana.
Los cambios en estas direcciones indicarán un estado hormonal mejorado que se ha demostrado que se correlaciona con un estado de salud mejorado en una amplia gama de medidas.
|
Línea base, 3 meses, 6 meses, 12 meses, 18 meses
|
|
Morfología Ovárica
Periodo de tiempo: Línea base, 6 meses, 12 meses, 18 meses
|
Ecografía endovaginal para el volumen ovárico
|
Línea base, 6 meses, 12 meses, 18 meses
|
|
Densidad ósea y composición corporal
Periodo de tiempo: Línea base, 12 y/o 18 meses
|
Evaluación de la Densidad Ósea y Composición Corporal (proporciones grasa/músculo) por Absorciometría de Fotón Único
|
Línea base, 12 y/o 18 meses
|
Otras medidas de resultado
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Calidad de vida relacionada con la salud
Periodo de tiempo: Línea base, 6 meses, 12 meses
|
Utian Menopausal Quality of Life (UQoL) Instrument y las encuestas de calidad de vida de salud física y mental SF-36v2.
Estas son herramientas de medición validadas clínicamente y ampliamente aceptadas basadas en normas.
La mejora de las puntuaciones indicaría una mayor satisfacción de los sujetos con la salud física y mental general para la encuesta SF-36v2 y una reducción de la sintomatología específica de la menopausia para la encuesta Utian Menopausal Quality of Life.
|
Línea base, 6 meses, 12 meses
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Burger H. The menopausal transition--endocrinology. J Sex Med. 2008 Oct;5(10):2266-73. doi: 10.1111/j.1743-6109.2008.00921.x. Epub 2008 Jul 1.
- Santiquet N, Vallieres L, Pothier F, Sirard MA, Robert C, Richard F. Transplanted bone marrow cells do not provide new oocytes but rescue fertility in female mice following treatment with chemotherapeutic agents. Cell Reprogram. 2012 Apr;14(2):123-9. doi: 10.1089/cell.2011.0066.
- He Y, Chen D, Yang L, Hou Q, Ma H, Xu X. The therapeutic potential of bone marrow mesenchymal stem cells in premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Oct 4;9(1):263. doi: 10.1186/s13287-018-1008-9.
- Sills ES, Rickers NS, Li X, Palermo GD. First data on in vitro fertilization and blastocyst formation after intraovarian injection of calcium gluconate-activated autologous platelet rich plasma. Gynecol Endocrinol. 2018 Sep;34(9):756-760. doi: 10.1080/09513590.2018.1445219. Epub 2018 Feb 28.
- Bertone-Johnson ER, Manson JE, Purdue-Smithe AC, Steiner AZ, Eliassen AH, Hankinson SE, Rosner BA, Whitcomb BW. Anti-Mullerian hormone levels and incidence of early natural menopause in a prospective study. Hum Reprod. 2018 Jun 1;33(6):1175-1182. doi: 10.1093/humrep/dey077.
- Ji MX, Yu Q. Primary osteoporosis in postmenopausal women. Chronic Dis Transl Med. 2015 Mar 21;1(1):9-13. doi: 10.1016/j.cdtm.2015.02.006. eCollection 2015 Mar. No abstract available.
- Li J, Yu Q, Huang H, Deng W, Cao X, Adu-Frimpong M, Yu J, Xu X. Human chorionic plate-derived mesenchymal stem cells transplantation restores ovarian function in a chemotherapy-induced mouse model of premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Apr 3;9(1):81. doi: 10.1186/s13287-018-0819-z.
- Liu M, Qiu Y, Xue Z, Wu R, Li J, Niu X, Yuan J, Wang Y, Wu Q. Small extracellular vesicles derived from embryonic stem cells restore ovarian function of premature ovarian failure through PI3K/AKT signaling pathway. Stem Cell Res Ther. 2020 Jan 3;11(1):3. doi: 10.1186/s13287-019-1508-2.
- Vermeulen M, Giudice MG, Del Vento F, Wyns C. Role of stem cells in fertility preservation: current insights. Stem Cells Cloning. 2019 Aug 5;12:27-48. doi: 10.2147/SCCAA.S178490. eCollection 2019.
- Zhang X, Niu J, Che T, Zhu Y, Zhang H, Qu J. Fertility preservation in BRCA mutation carriers-efficacy and safety issues: a review. Reprod Biol Endocrinol. 2020 Feb 18;18(1):11. doi: 10.1186/s12958-019-0561-0.
- Ling L, Feng X, Wei T, Wang Y, Wang Y, Wang Z, Tang D, Luo Y, Xiong Z. Human amnion-derived mesenchymal stem cell (hAD-MSC) transplantation improves ovarian function in rats with premature ovarian insufficiency (POI) at least partly through a paracrine mechanism. Stem Cell Res Ther. 2019 Jan 25;10(1):46. doi: 10.1186/s13287-019-1136-x.
- Su J, Ding L, Cheng J, Yang J, Li X, Yan G, Sun H, Dai J, Hu Y. Transplantation of adipose-derived stem cells combined with collagen scaffolds restores ovarian function in a rat model of premature ovarian insufficiency. Hum Reprod. 2016 May;31(5):1075-86. doi: 10.1093/humrep/dew041. Epub 2016 Mar 9.
- Zhao YX, Chen SR, Su PP, Huang FH, Shi YC, Shi QY, Lin S. Using Mesenchymal Stem Cells to Treat Female Infertility: An Update on Female Reproductive Diseases. Stem Cells Int. 2019 Dec 6;2019:9071720. doi: 10.1155/2019/9071720. eCollection 2019.
- Liu R, Zhang X, Fan Z, Wang Y, Yao G, Wan X, Liu Z, Yang B, Yu L. Human amniotic mesenchymal stem cells improve the follicular microenvironment to recover ovarian function in premature ovarian failure mice. Stem Cell Res Ther. 2019 Oct 2;10(1):299. doi: 10.1186/s13287-019-1315-9.
- Yoon SY. Mesenchymal stem cells for restoration of ovarian function. Clin Exp Reprod Med. 2019 Mar;46(1):1-7. doi: 10.5653/cerm.2019.46.1.1. Epub 2019 Mar 1.
- Chen L, Guo S, Wei C, Li H, Wang H, Xu Y. Effect of stem cell transplantation of premature ovarian failure in animal models and patients: A meta-analysis and case report. Exp Ther Med. 2018 May;15(5):4105-4118. doi: 10.3892/etm.2018.5970. Epub 2018 Mar 20.
- Tabatabaei Qomi R, Sheykhhasan M. Adipose-derived stromal cell in regenerative medicine: A review. World J Stem Cells. 2017 Aug 26;9(8):107-117. doi: 10.4252/wjsc.v9.i8.107.
- Ding C, Li H, Wang Y, Wang F, Wu H, Chen R, Lv J, Wang W, Huang B. Different therapeutic effects of cells derived from human amniotic membrane on premature ovarian aging depend on distinct cellular biological characteristics. Stem Cell Res Ther. 2017 Jul 27;8(1):173. doi: 10.1186/s13287-017-0613-3.
- Li F, Zhou C, Xu L, Tao S, Zhao J, Gu Q. Effect of Stem Cell Therapy on Bone Mineral Density: A Meta-Analysis of Preclinical Studies in Animal Models of Osteoporosis. PLoS One. 2016 Feb 16;11(2):e0149400. doi: 10.1371/journal.pone.0149400. eCollection 2016.
- Bidet M, Bachelot A, Bissauge E, Golmard JL, Gricourt S, Dulon J, Coussieu C, Badachi Y, Touraine P. Resumption of ovarian function and pregnancies in 358 patients with premature ovarian failure. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Dec;96(12):3864-72. doi: 10.1210/jc.2011-1038. Epub 2011 Oct 12.
- Cordts EB, Christofolini DM, Dos Santos AA, Bianco B, Barbosa CP. Genetic aspects of premature ovarian failure: a literature review. Arch Gynecol Obstet. 2011 Mar;283(3):635-43. doi: 10.1007/s00404-010-1815-4. Epub 2010 Dec 29.
- Miao Y, Wang P, Xie B, Yang M, Li S, Cui Z, Fan Y, Li M, Xiong B. BRCA2 deficiency is a potential driver for human primary ovarian insufficiency. Cell Death Dis. 2019 Jun 17;10(7):474. doi: 10.1038/s41419-019-1720-0.
- Hernandez-Angeles C, Castelo-Branco C. Early menopause: A hazard to a woman's health. Indian J Med Res. 2016 Apr;143(4):420-7. doi: 10.4103/0971-5916.184283.
- Guo Y, Sun J, Lai D. Role of microRNAs in premature ovarian insufficiency. Reprod Biol Endocrinol. 2017 May 12;15(1):38. doi: 10.1186/s12958-017-0256-3.
- Chen X, Wang Q, Li X, Wang Q, Xie J, Fu X. Heat shock pretreatment of mesenchymal stem cells for inhibiting the apoptosis of ovarian granulosa cells enhanced the repair effect on chemotherapy-induced premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Sep 26;9(1):240. doi: 10.1186/s13287-018-0964-4.
- Vural B, Duruksu G, Vural F, Gorguc M, Karaoz E. Effects of VEGF + Mesenchymal Stem Cells and Platelet-Rich Plasma on Inbred Rat Ovarian Functions in Cyclophosphamide-Induced Premature Ovarian Insufficiency Model. Stem Cell Rev Rep. 2019 Aug;15(4):558-573. doi: 10.1007/s12015-019-09892-5.
- Liu C, Yin H, Jiang H, Du X, Wang C, Liu Y, Li Y, Yang Z. Extracellular Vesicles Derived from Mesenchymal Stem Cells Recover Fertility of Premature Ovarian Insufficiency Mice and the Effects on their Offspring. Cell Transplant. 2020 Jan-Dec;29:963689720923575. doi: 10.1177/0963689720923575.
- Ding C, Zou Q, Wang F, Wu H, Chen R, Lv J, Ling M, Sun J, Wang W, Li H, Huang B. Human amniotic mesenchymal stem cells improve ovarian function in natural aging through secreting hepatocyte growth factor and epidermal growth factor. Stem Cell Res Ther. 2018 Mar 9;9(1):55. doi: 10.1186/s13287-018-0781-9.
- Li J, Mao Q, He J, She H, Zhang Z, Yin C. Human umbilical cord mesenchymal stem cells improve the reserve function of perimenopausal ovary via a paracrine mechanism. Stem Cell Res Ther. 2017 Mar 9;8(1):55. doi: 10.1186/s13287-017-0514-5.
- Takehara Y, Yabuuchi A, Ezoe K, Kuroda T, Yamadera R, Sano C, Murata N, Aida T, Nakama K, Aono F, Aoyama N, Kato K, Kato O. The restorative effects of adipose-derived mesenchymal stem cells on damaged ovarian function. Lab Invest. 2013 Feb;93(2):181-93. doi: 10.1038/labinvest.2012.167. Epub 2012 Nov 19.
- Huang B, Lu J, Ding C, Zou Q, Wang W, Li H. Exosomes derived from human adipose mesenchymal stem cells improve ovary function of premature ovarian insufficiency by targeting SMAD. Stem Cell Res Ther. 2018 Aug 9;9(1):216. doi: 10.1186/s13287-018-0953-7.
- Shen J, Cao D, Sun JL. Ability of human umbilical cord mesenchymal stem cells to repair chemotherapy-induced premature ovarian failure. World J Stem Cells. 2020 Apr 26;12(4):277-287. doi: 10.4252/wjsc.v12.i4.277.
- Fazeli Z, Abedindo A, Omrani MD, Ghaderian SMH. Mesenchymal Stem Cells (MSCs) Therapy for Recovery of Fertility: a Systematic Review. Stem Cell Rev Rep. 2018 Feb;14(1):1-12. doi: 10.1007/s12015-017-9765-x.
- Bu S, Zhang Q, Wang Q, Lai D. Human amniotic epithelial cells inhibit growth of epithelial ovarian cancer cells via TGF-beta1-mediated cell cycle arrest. Int J Oncol. 2017 Nov;51(5):1405-1414. doi: 10.3892/ijo.2017.4123. Epub 2017 Sep 14.
- Herraiz S, Pellicer N, Romeu M, Pellicer A. Treatment potential of bone marrow-derived stem cells in women with diminished ovarian reserves and premature ovarian failure. Curr Opin Obstet Gynecol. 2019 Jun;31(3):156-162. doi: 10.1097/GCO.0000000000000531.
- Bhartiya D, Patel H. Ovarian stem cells-resolving controversies. J Assist Reprod Genet. 2018 Mar;35(3):393-398. doi: 10.1007/s10815-017-1080-6. Epub 2017 Nov 11.
- Vanni VS, Vigano P, Papaleo E, Mangili G, Candiani M, Giorgione V. Advances in improving fertility in women through stem cell-based clinical platforms. Expert Opin Biol Ther. 2017 May;17(5):585-593. doi: 10.1080/14712598.2017.1305352. Epub 2017 Mar 28.
- Farimani M, Heshmati S, Poorolajal J, Bahmanzadeh M. A report on three live births in women with poor ovarian response following intra-ovarian injection of platelet-rich plasma (PRP). Mol Biol Rep. 2019 Apr;46(2):1611-1616. doi: 10.1007/s11033-019-04609-w. Epub 2019 Feb 5.
- Ruhle A, Lopez Perez R, Zou B, Grosu AL, Huber PE, Nicolay NH. The Therapeutic Potential of Mesenchymal Stromal Cells in the Treatment of Chemotherapy-Induced Tissue Damage. Stem Cell Rev Rep. 2019 Jun;15(3):356-373. doi: 10.1007/s12015-019-09886-3.
- Zafardoust S, Kazemnejad S, Darzi M, Fathi-Kazerooni M, Rastegari H, Mohammadzadeh A. Improvement of Pregnancy Rate and Live Birth Rate in Poor Ovarian Responders by Intraovarian Administration of Autologous Menstrual Blood Derived- Mesenchymal Stromal Cells: Phase I/II Clinical Trial. Stem Cell Rev Rep. 2020 Aug;16(4):755-763. doi: 10.1007/s12015-020-09969-6.
- Truman AM, Tilly JL, Woods DC. Ovarian regeneration: The potential for stem cell contribution in the postnatal ovary to sustained endocrine function. Mol Cell Endocrinol. 2017 Apr 15;445:74-84. doi: 10.1016/j.mce.2016.10.012. Epub 2016 Oct 12.
- Sheikhansari G, Aghebati-Maleki L, Nouri M, Jadidi-Niaragh F, Yousefi M. Current approaches for the treatment of premature ovarian failure with stem cell therapy. Biomed Pharmacother. 2018 Jun;102:254-262. doi: 10.1016/j.biopha.2018.03.056. Epub 2018 Mar 22.
- Soleimani R, Heytens E, Darzynkiewicz Z, Oktay K. Mechanisms of chemotherapy-induced human ovarian aging: double strand DNA breaks and microvascular compromise. Aging (Albany NY). 2011 Aug;3(8):782-93. doi: 10.18632/aging.100363.
- Galvez-Martin P, Sabata R, Verges J, Zugaza JL, Ruiz A, Clares B. Mesenchymal Stem Cells as Therapeutics Agents: Quality and Environmental Regulatory Aspects. Stem Cells Int. 2016;2016:9783408. doi: 10.1155/2016/9783408. Epub 2016 Nov 24.
- Wang S, Yu L, Sun M, Mu S, Wang C, Wang D, Yao Y. The therapeutic potential of umbilical cord mesenchymal stem cells in mice premature ovarian failure. Biomed Res Int. 2013;2013:690491. doi: 10.1155/2013/690491. Epub 2013 Aug 13.
- Sun M, Wang S, Li Y, Yu L, Gu F, Wang C, Yao Y. Adipose-derived stem cells improved mouse ovary function after chemotherapy-induced ovary failure. Stem Cell Res Ther. 2013 Jul 9;4(4):80. doi: 10.1186/scrt231.
- Kilic S, Pinarli F, Ozogul C, Tasdemir N, Naz Sarac G, Delibasi T. Protection from cyclophosphamide-induced ovarian damage with bone marrow-derived mesenchymal stem cells during puberty. Gynecol Endocrinol. 2014 Feb;30(2):135-40. doi: 10.3109/09513590.2013.860127. Epub 2013 Dec 6.
- Frese L, Dijkman PE, Hoerstrup SP. Adipose Tissue-Derived Stem Cells in Regenerative Medicine. Transfus Med Hemother. 2016 Jul;43(4):268-274. doi: 10.1159/000448180. Epub 2016 Jul 26.
- Xia X, Wang T, Yin T, Yan L, Yan J, Lu C, Zhao L, Li M, Zhang Y, Jin H, Zhu X, Liu P, Li R, Qiao J. Mesenchymal Stem Cells Facilitate In Vitro Development of Human Preantral Follicle. Reprod Sci. 2015 Nov;22(11):1367-76. doi: 10.1177/1933719115578922. Epub 2015 Apr 7.
- Vural F, Vural B, Doger E, Cakiroglu Y, Cekmen M. Perifollicular blood flow and its relationship with endometrial vascularity, follicular fluid EG-VEGF, IGF-1, and inhibin-a levels and IVF outcomes. J Assist Reprod Genet. 2016 Oct;33(10):1355-1362. doi: 10.1007/s10815-016-0780-7. Epub 2016 Aug 2.
- Vahabi S, Yadegari Z, Mohammad-Rahimi H. Correction to: Comparison of the effect of activated or non-activated PRP in various concentrations on osteoblast and fibroblast cell line proliferation. Cell Tissue Bank. 2018 Sep;19(3):455. doi: 10.1007/s10561-017-9677-7.
- Pantos K, Nitsos N, Kokkali G, et al. Ovarian rejuvenation and folliculogenesis reactivation in peri-menopausal women after autologous platelet-rich plasma treatment. Abstracts, ESHRE 32nd Annual Meeting; 3-6 Jul 2016; Helsinki, Finland. Hum Reprod 2016 (Suppl. 1):i301.
- Pines A, Sturdee DW, MacLennan AH. Quality of life and the role of menopausal hormone therapy. Climacteric. 2012 Jun;15(3):213-6. doi: 10.3109/13697137.2012.655923.
- Zollner YF, Acquadro C, Schaefer M. Literature review of instruments to assess health-related quality of life during and after menopause. Qual Life Res. 2005 Mar;14(2):309-27. doi: 10.1007/s11136-004-0688-z.
- Utian WH, Woods NF. Impact of hormone therapy on quality of life after menopause. Menopause. 2013 Oct;20(10):1098-105. doi: 10.1097/GME.0b013e318298debe.
- Hess R, Colvin A, Avis NE, Bromberger JT, Schocken M, Johnston JM, Matthews KA. The impact of hormone therapy on health-related quality of life: longitudinal results from the Study of Women's Health Across the Nation. Menopause. 2008 May-Jun;15(3):422-8. doi: 10.1097/gme.0b013e31814faf2b.
- Tella SH, Gallagher JC. Prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. J Steroid Biochem Mol Biol. 2014 Jul;142:155-70. doi: 10.1016/j.jsbmb.2013.09.008. Epub 2013 Oct 29.
- Greendale GA, Sowers M, Han W, Huang MH, Finkelstein JS, Crandall CJ, Lee JS, Karlamangla AS. Bone mineral density loss in relation to the final menstrual period in a multiethnic cohort: results from the Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). J Bone Miner Res. 2012 Jan;27(1):111-8. doi: 10.1002/jbmr.534.
- Samargandy S, Matthews KA, Brooks MM, Barinas-Mitchell E, Magnani JW, Janssen I, Hollenberg SM, El Khoudary SR. Arterial Stiffness Accelerates Within 1 Year of the Final Menstrual Period: The SWAN Heart Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2020 Apr;40(4):1001-1008. doi: 10.1161/ATVBAHA.119.313622. Epub 2020 Jan 23.
- Greendale GA, Huang M, Cauley JA, Liao D, Harlow S, Finkelstein JS, Hans D, Karlamangla AS. Trabecular Bone Score Declines During the Menopause Transition: The Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). J Clin Endocrinol Metab. 2020 Apr 1;105(4):e1872-82. doi: 10.1210/clinem/dgz056.
- Randolph JF Jr, Zheng H, Sowers MR, Crandall C, Crawford S, Gold EB, Vuga M. Change in follicle-stimulating hormone and estradiol across the menopausal transition: effect of age at the final menstrual period. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Mar;96(3):746-54. doi: 10.1210/jc.2010-1746. Epub 2010 Dec 15.
- Greendale GA, Sternfeld B, Huang M, Han W, Karvonen-Gutierrez C, Ruppert K, Cauley JA, Finkelstein JS, Jiang SF, Karlamangla AS. Changes in body composition and weight during the menopause transition. JCI Insight. 2019 Mar 7;4(5):e124865. doi: 10.1172/jci.insight.124865. eCollection 2019 Mar 7.
- Karlamangla AS, Burnett-Bowie SM, Crandall CJ. Bone Health During the Menopause Transition and Beyond. Obstet Gynecol Clin North Am. 2018 Dec;45(4):695-708. doi: 10.1016/j.ogc.2018.07.012. Epub 2018 Oct 25.
- Sfakianoudis K, Simopoulou M, Nitsos N, Rapani A, Pappas A, Pantou A, Chronopoulou M, Deligeoroglou E, Koutsilieris M, Pantos K. Autologous Platelet-Rich Plasma Treatment Enables Pregnancy for a Woman in Premature Menopause. J Clin Med. 2018 Dec 20;8(1):1. doi: 10.3390/jcm8010001.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Anticipado)
Finalización del estudio (Anticipado)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- OVARIAN REJUV
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
producto fabricado y exportado desde los EE. UU.
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .
Ensayos clínicos sobre Trastorno hormonal
-
Gaziosmanpasa Research and Education HospitalTerminadoTerapia de reemplazo hormonTurquía (Türkiye)
Ensayos clínicos sobre cosecha de lipoaspiración tSVF
-
Harvest TechnologiesTerminadoInsuficiencia cardíaca congestivaIndia
-
Regeneris MedicalGlobal Alliance for Regenerative MedicineReclutamientoAlopecia areata | Alopecia cicatricialEstados Unidos
-
Wake Forest University Health SciencesDesert HarvestReclutamientoCistitis intersticial | Síndrome de dolor de vejiga | Cistitis intersticial crónicaEstados Unidos
-
Healeon Medical IncDonna Alderman, DO; Robert W. Alexander, MDReclutamientoOsteoartritis | Osteo Artritis Rodilla | Artrosis, Cadera | Osteo Artritis Hombros | Osteoartritis de múltiples articulaciones | Osteoartritis - Tobillo/PieEstados Unidos
-
Stanford UniversityRetiradoDesgarro del manguito rotador | Artrosis, Rodilla | Degeneración del cartílago
-
Stanford UniversityRetiradoDesgarro del manguito rotador | Lesión del manguito rotadorEstados Unidos
-
Healeon Medical IncTerry, Glenn C., M.D.; Ministry of Health, Honduras; Robert W. Alexander, MDRetiradoEnfermedad del cabelloEstados Unidos
-
Black Tie Medical, Inc.Robert W. Alexander, MDInscripción por invitaciónInfección de coronavirus | Fibrosis pulmonar idiopática | Enfermedad pulmonar intersticial | EPOC | Proteinosis alveolar pulmonar | Neumonía viralEstados Unidos