- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04444245
Odmładzanie jajników za pomocą osocza bogatopłytkowego (PRP) i autologicznej frakcji naczyniowej zrębu tkanki (tSVF) i tSVF wzbogaconego komórkami (OVAR-REJUV)
Przywrócenie funkcji hormonalnej jajników, opóźnienie menopauzy lub odwrócenie wczesnej menopauzy za pomocą iniekcji do jajnika pod kontrolą ultrasonografii (HD PRP), tSVF + PRP lub tSVF + PRP wzbogacony w komórki
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
W kilku seriach wykazano już, że wewnątrzjajnikowe umieszczenie osocza bogatopłytkowego (PRP) przywraca poziomy hormonów w okresie okołomenopauzalnym i wczesnym okresie pomenopauzalnym do poziomów przedmenopauzalnych i cyklicznych zachowań przedmenopauzalnych, prowadząc nawet do ciąż i porodów zdrowych niemowlęta. Celem tego badania jest ocena przydatności PRP do poprawy stanu hormonalnego i symptomatologii klinicznej u kobiet w okresie okołomenopauzalnym i wczesnym okresie pomenopauzalnym oraz u kobiet z przedwczesną niewydolnością jajników inną niż Turner, poprzez udokumentowanie poprawy parametrów biochemicznych/hormonalnych , gęstość kości oraz jakość życia związana ze zdrowiem fizycznym i psychicznym, a także porównanie czasu trwania i skuteczności tej procedury PRP z umieszczeniem wewnątrz jajnika biokomórkowych fizjologicznie aktywnych elementów komórkowych i cytokin zawartych w frakcji naczyniowej zrębu pochodzącej z tkanki tłuszczowej (tSVF).
Należy zauważyć, że tempo utraty gęstości kości u kobiet jest największe w okresie 12 miesięcy przed menopauzą i 24 miesiące po menopauzie. Bezwzględne i względne procentowe ilości tkanki tłuszczowej i mięśniowej zmieniają się w niekorzystny sposób - wraz ze wzrostem tkanki tłuszczowej i spadkiem masy mięśniowej, przy czym najbardziej dramatyczne zmiany zachodzą również w okresie przejściowym menopauzy. Badanie to zapewnia zatem możliwość udokumentowania wymiernego zaprzestania utraty gęstości kości lub zmniejszenia szybkości utraty gęstości kości w porównaniu z dobrze ugruntowanymi znanymi wzorcami i historycznymi kontrolami w wyniku proponowanych stosunkowo nieszkodliwych interwencji. Ta sama technologia, która zostanie wykorzystana do oceny gęstości kości, absorpcjometria pojedynczego fotonu, zostanie również wykorzystana do ilościowego określenia składu tkanki tłuszczowej w stosunku do składu mięśniowego na początku badania i po 18 miesiącach.
SVF można dalej scharakteryzować jako komórkowy SVF lub tkankowy SVF (cSVF lub tSVF). Tkanka SVF (tSVF) jest uzyskiwana za pomocą ręcznej, zamkniętej strzykawki, zasysającej podskórną tkankę tłuszczową (około 10+ łyżeczek do herbaty) małej objętości, po czym następuje dekantacja układu zamkniętego w celu usunięcia płynów infranatantu, a następnie emulgacja pozostałości do wymaganego stopnia jednorodności i zmniejszony rozmiar cząstek stałych, aby umożliwić wtrysk przez konwencjonalne otwory igłowe. Tkanka SVF charakteryzuje się zatrzymaniem części niekomórkowej macierzy kolagenowych i drobnych pozostałości naczyniowych, które razem tworzą macierz, która zatrzymuje i zapewnia strukturę elementom biokomórkowym, które są w niej osadzone. Komórkowy SVF (cSVF) rozpoczyna się od tej samej mini-aspiracji, ale charakteryzuje się wirowaniem w układzie zamkniętym, po którym następuje trawienie enzymatyczne w celu wyizolowania/zatężenia komórkowego SVF (cSVF). Po zobojętnieniu enzymu i wypłukaniu otrzymany koncentrat żywotnych komórek macierzystych/podścieliska z jądrami przygotowuje się do ukierunkowanego umieszczenia w tkance miąższowej jajnika. Próbka każdego nastrzyku jest badana i oznaczana ilościowo przy użyciu standardowej laserowej cytometrii przepływowej, w tym żywotności i liczby komórek w każdej próbce.
Badanie obejmuje zastosowanie samego PRP (Emcyte II Pure PRP, Floryda, USA) PRP zgodnie z instrukcjami producenta) jako kontroli w pierwszej kończynie leczenia (ARM), która pod względem objętości będzie taka sama jak w przypadku innych wstrzyknięć, do udokumentowanego umieszczenia kierowanego w jajnikach . Porównawcza druga ARM złożona z PRP zostanie połączona ze zemulgowanym tSVF (Sterile Tulip Nanofat Disposable, San Diego, Kalifornia (CA), USA). W trzecim ARM, PRP plus zemulgowany tSVF zostanie połączony z obydwoma stężonymi cSVF. To ramię ma na celu określenie efektów wyższego stężenia komórkowego niż osiągnięte w drugim ARM przy użyciu koncentratów komórkowych uzyskanych przy użyciu Centricyte 1000 (Healeon Medical Inc, Newbury Park, CA, USA). Główne wyniki każdej z tych opcjonalnych procedur zostaną porównane i ocenione pod kątem bezpieczeństwa i skuteczności klinicznej w zwiększaniu powrotu funkcji jajników w celu określenia preferowanej metodologii osiągnięcia maksymalnych wyników.
Wyjściowa i monitorowana charakterystyka pacjentów jest następująca:
- Wyjściowy stan wszystkich pacjentów zostanie określony przy użyciu odpowiednich wskaźników biochemicznych, w tym poziomu hormonu folikulotropowego (FSH), hormonu anty-Mullerowskiego (AMH), hormonu luteinizującego (LH), estradiolu (E2) i progesteronu (PRG) w surowicy. Będą one powtarzane po 30 i 90 dniach, a następnie co 3 miesiące przez dodatkowe 15 miesięcy, łącznie przez 18 miesięcy. Kompleksowy panel krwi (SMA 12), pełna morfologia krwi (CBC), profile lipidowe i wskaźniki krzepnięcia zostaną uzyskane na początku badania i powtórzone (bez wskaźników krzepnięcia) po 12 miesiącach.
- Ponieważ gęstość kości zaczyna spadać w znacznym tempie w okresie okołomenopauzalnym, oznaczenie gęstości kości za pomocą absorpcjometrii pojedynczego fotonu zostanie uzyskane na początku badania i ponownie po 12 i/lub 18 miesiącach. Skład ciała Proporcje tłuszcz/mięśnie zostaną ocenione przy użyciu tej samej technologii podczas tego samego siedzenia.
- Jakość życia związana ze zdrowiem fizycznym i psychicznym zostanie oceniona za pomocą ankiet jakości życia na początku badania, po 6 i 12 miesiącach.
- Objętość jajników będzie oceniana wyjściowo za pomocą ultrasonografii dopochwowej, wraz z wielkością i liczbą obecnych pęcherzyków, a następnie co 6 miesięcy.
- Zapis w dzienniku cykli menstruacyjnych - częstotliwość/interwał, dni i czas trwania.
W ARM 1 samo PRP zostanie umieszczone w jajnikach. W ARM 2 PRP zostanie połączone z tSVF. W ARM 3 tSVF zostanie połączone zarówno z cSVF, jak i PRP. Dopasowane objętości iniekcji będą stosowane w każdym ARM, aby uniknąć kwestii potencjalnej ingerencji w miąższ jajnika, która miałaby wpływ na wynik z powodu efektów zmiennej objętości. Główne wyniki dla każdej z tych grup zostaną porównane, informując nas o preferowanej metodologii dalszej oceny, a ostatecznie o praktyce klinicznej.
Autologiczne osocze bogatopłytkowe to uznana metoda leczenia, która wykorzystuje metodologie i zestawy zatwierdzone przez FDA i rozwinęła się w dojrzałą metodę leczenia różnych patologii ortopedycznych i tkanek miękkich. Jak zauważono, jego bezpieczeństwo i użyteczność w odmładzaniu jajników i odwracaniu niepłodności zostało już ustalone w recenzowanych seriach przypadków.
Bezpieczeństwo stosowania niektórych allogenicznych ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC) zostało zaproponowane i przetestowane pod kątem skuteczności w ograniczonym stopniu w niektórych wcześniejszych badaniach. Testowane produkty mają zmienne protokoły izolowania i dokumentowania zawartości oraz żywotności komórek.
Autologiczne komórki macierzyste-zrębowe (zawarte w cSVF) zostały uznane za bezpieczne i skuteczne w wielu zastosowaniach/badaniach oraz w trwających obecnie badaniach klinicznych w innych układach ciała i patologiach. Komórki te można łatwo uzyskać i wyizolować/zatężyć w układzie zamkniętym z frakcji naczyniowej zrębu pochodzącej z tkanki tłuszczowej pacjenta (tSVF). Jest to ważne, ponieważ takie tkanki są własnymi, unikalnymi genetycznie komórkami pacjenta i teoretycznie są potencjalnie bezpieczniejsze niż allogeniczne ludzkie mezenchymalne komórki macierzyste (hMSC), które są potencjalnie genetycznie obce i niosą ze sobą ryzyko zanieczyszczenia podczas przetwarzania i dostarczania.
Podejście łączone może pozwolić na wdrożenie odpowiednio większej liczby komórek, czynników wzrostu, egzosomów/mikropęcherzyków bez konieczności ekspansji hodowli.
Zawartość cSVF zawiera heterogenną populację niewyznaczonych (podobnych do macierzystych) i podtrzymujących komórek (podścieliska). Uważa się, że ta kombinacja dorosłych, autologicznych komórek wraz z komórkami zrębu oferuje ważne właściwości terapeutyczne i regeneracyjne oparte na cechach różnicowania komórkowego i parakrynnych (wydzielnicze sygnały komunikacyjne i odpowiedzi na niszę) w różnym stopniu. Uważa się, że taka sygnalizacja może stanowić własny mechanizm homeostazy i regeneracji organizmu. Proponuje się interakcję tych złożonych sygnałów biochemicznych w celu dalszej rekrutacji lub aktywacji procesów naprawczych z interakcją z natywnymi komórkami i tkankami gospodarza. Co więcej, ten proces naprawczy może stać się ważnymi specyficznymi czynnościami i potrzebami gospodarza w miejscu, w którym umieszcza się kombinację terapeutyczną. Dokładne mechanizmy leżące u podstaw tych procesów naprawczych są przedmiotem intensywnych badań.
We wszystkich przypadkach płytki krwi i materiały biokomórkowe do wstrzyknięcia do jajnika zostaną umieszczone pod konwencjonalną kontrolą obrazowania z wykorzystaniem ultrasonografii wewnątrzpochwowej. Specjalnie zaprojektowane zmodyfikowane igły zostaną wykorzystane do precyzyjnego dostarczania produktów biologicznych do docelowych tkanek miąższowych wewnątrz jajnika. Wymagana metodologia jest ogólnie bardzo podobna do pobierania oocytów w leczeniu niepłodności, które są wykonywane na całym świecie, przy minimalnym ryzyku wystąpienia działań niepożądanych miliony razy rocznie.
Wiadomo, że procedury powodują minimalny dyskomfort, a przygotowanie pacjenta waha się od braku do łagodnego wspomagającego anksjolizy. Ból po zabiegu, jeśli występuje, można skutecznie opanować za pomocą acetaminofenu. Pacjenci są obserwowani po zabiegu przez 60-120 minut, a następnie wypisywani z odpowiednimi pisemnymi instrukcjami po zabiegu, aby okresowo zgłaszać się na badania kliniczne i laboratoryjne zgodnie z protokołem przedstawionym w analizie wyników. Celem tego badania jest porównanie czasu trwania poprawy hormonalnej, klinicznej i jakości życia w trzech ramionach badania.
W przypadku mniejszości uczestniczek badania, u których jajniki nie są łatwo dostępne za pomocą ultrasonografii dopochwowej, podgrupa pacjentek może wymagać zastosowania wskazówek laparoskopowych. We wszystkich takich przypadkach interwencje będą miały miejsce w warunkach szpitalnych, gdzie Badacz przygotuje zastrzyk, a ginekolog lub inny odpowiedni specjalista chirurg przeprowadzi zabieg laparoskopowy z wykorzystaniem standardowych procedur jako wskazówek.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Vermont
-
Colchester, Vermont, Stany Zjednoczone, 05446
- Fanny Island Campus Medical Building
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Objawy lub zaburzenia hormonalne od co najmniej 6 miesięcy
- Przerwanie hormonalnej terapii zastępczej (HTZ) na co najmniej 3 miesiące przed interwencją
- Zatrzymano botanoterapię / Danazol na 3 miesiące
- Gotowość do przestrzegania wymagań badania, w tym unikania HTZ, botanoterapii, danazolu przez co najmniej 12 miesięcy po interwencji.
- Kobiety powyżej 35
- Obecność co najmniej jednego jajnika
- Zgódź się na natychmiastowe zgłaszanie każdej ciąży personelowi badawczemu.
- Chętny i zdolny do spełnienia wymagań dotyczących nauki.
Kryteria wyłączenia:
- Obecny lub przebyty niedobór globuliny immunologicznej A (IgA).
- Obecna lub wcześniejsza przedwczesna niewydolność jajników z powodu pochodzenia genetycznego, takiego jak zespół Turnera lub aberracja chromosomalna
- Obecne lub wcześniejsze urazy lub zrosty miednicy lub jajników
- Obecna i trwająca ciąża
- Obecne i ciągłe stosowanie antykoagulantów
- Znana skaza krwotoczna
- Obecne i trwające poważne zaburzenie zdrowia psychicznego, które wyklucza udział w badaniu
- Obecne i trwające nadużywanie lub uzależnienie od substancji czynnych
- Wcześniejszy lub aktualny nowotwór jajnika lub znana mutacja genetyczna
- Obecny i trwający przewlekły ból miednicy inny niż dyspareunia lub zaburzenia powłok sromu/pochwy
- Historia endometriozy
- Aktualne rozpoznanie raka lub aktywny nowotwór w ciągu ostatnich 24 miesięcy
- Niedostępność jajników stwierdzona za pomocą ultrasonografii dopochwowej
- Obecna lub wcześniejsza przedwczesna niewydolność jajników
- Czynne, nieleczone zaburzenia endokrynologiczne (niewyrównana dysfunkcja tarczycy, cukrzyca insulinozależna (typ 1, typ 2)
- Wskaźnik masy ciała (BMI) >30 kg/m2
- Układowe zaburzenie autoimmunologiczne
- Poznaj zespół policystycznych jajników
- Niechęć do zaprzestania przyjmowania leków na jajniki lub leczenia egzogennymi hormonami na 3 miesiące przed rozpoczęciem badania i unikania egzogennych hormonów przez cały czas trwania badania
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nielosowe
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: ARM 1 Osocze bogatopłytkowe
Pobranie krwi, obróbka PRP, ubogie krwinki białe, wysoka liczba płytek krwi >/= 4, np.
(Emcyte II Pure PRP) Dopochwowe umieszczenie USG wewnątrz jajnika w miąższu jajnika, najlepiej w obu przypadkach, jeśli są dostępne.
|
Zastosowanie jednorazowego, sterylnego lipoharvestu z mikrokaniuli do pozyskania tSVF
Standardowe nakłucie żyły, stężenie PRP w urządzeniu zatwierdzonym przez FDA (Emcyte II)
Dopochwowe wskazówki ultrasonograficzne do umieszczenia wewnątrz jajnika, obustronnie
|
|
Eksperymentalny: ARM 2 zemulgowane tSVF i PRP
Pobranie krwi, obróbka PRP, ubogie krwinki białe, wysoka liczba płytek krwi >/= 4, np. Lipoaspiracja Emcyte PRP z wykorzystaniem zamkniętej mikrokaniuli do pobierania małej objętości (infiltrator płynu tumescencyjnego Tulip i Tulip Harvester). Dekantacja wolnego lipidu. Emulgacja tkanki tłuszczowej do tSVF (aparat Tulip Nanofat). Mieszanie Nanofatu z PRP w stosunku 3:1. Ultrasonografia dopochwowa kierowała umieszczeniem wewnątrz jajnika w jajniku, najlepiej w obu przypadkach, jeśli są dostępne. |
Zastosowanie jednorazowego, sterylnego lipoharvestu z mikrokaniuli do pozyskania tSVF
Standardowe nakłucie żyły, stężenie PRP w urządzeniu zatwierdzonym przez FDA (Emcyte II)
Dopochwowe wskazówki ultrasonograficzne do umieszczenia wewnątrz jajnika, obustronnie
10 ml sterylnej normalnej soli fizjologicznej do wstrzykiwań
Emulgacja zebranego tSVF za pomocą sterylnego, jednorazowego urządzenia przesiewowego Nanofat
|
|
Eksperymentalny: ARM 3 zemulgowane tSVF i PRP, wzbogacone o cSVF
Pobranie krwi, obróbka PRP, ubogie krwinki białe, wysoka liczba płytek krwi >/= 4, np. Preparat Emcyte PRP tSVF: Lipoaspiracja z wykorzystaniem zamkniętej mikrokaniuli do pobierania małej objętości (infiltrator płynu Tulip tumescent i Tulip Harvester). Dekantacja wolnego lipidu. Emulgacja tkanki tłuszczowej (urządzenie Tulip Nanofat). Przygotowanie cSVF: lipoaspiracja jak powyżej. Izolacja i zatężanie komórkowej frakcji naczyniowej zrębu (cSVF) przy użyciu wirówki Healeon Medical CentriCyte 1000, inkubatora i wytrząsarki ze sterylnym enzymem Liberase (Roche Medical) zgodnie z protokołem producenta. Kwantyfikacja liczby żywotnych komórek jądrzastych za pomocą cytometrii przepływowej. Dodanie osadu żywotnych komórek jądrzastych do tSVF. Mieszanie emulsji tSVF/cSVF z PRP w stosunku 3:1. Ultrasonografia dopochwowa kierowała umieszczeniem wewnątrz jajnika w jajniku, najlepiej w obu przypadkach, jeśli są dostępne. Interwencja: |
Zastosowanie jednorazowego, sterylnego lipoharvestu z mikrokaniuli do pozyskania tSVF
Standardowe nakłucie żyły, stężenie PRP w urządzeniu zatwierdzonym przez FDA (Emcyte II)
Dopochwowe wskazówki ultrasonograficzne do umieszczenia wewnątrz jajnika, obustronnie
10 ml sterylnej normalnej soli fizjologicznej do wstrzykiwań
Emulgacja zebranego tSVF za pomocą sterylnego, jednorazowego urządzenia przesiewowego Nanofat
Trawienie tSVF za pomocą Liberazy, izolacja i stężenie cSVF w Centricyte 1000
|
|
Eksperymentalny: RAMIĘ 4 Umieszczenie pod kontrolą wewnątrzjajnikowe
Specjalnie zaprojektowana zmodyfikowana igła do zbierania oocytów o rozmiarze 23 do umieszczania pod kontrolą USG
|
Dopochwowe wskazówki ultrasonograficzne do umieszczenia wewnątrz jajnika, obustronnie
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Bezpieczeństwo pacjenta dla procedury
Ramy czasowe: 30 dni
|
Zgłaszanie wszystkich zdarzeń niepożądanych, ciężkich zdarzeń niepożądanych
|
30 dni
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Wznowienie miesiączki
Ramy czasowe: linii bazowej przez 18 miesięcy
|
Dokumentacja dziennika według tematów częstotliwości miesiączki, czasu trwania
|
linii bazowej przez 18 miesięcy
|
|
Odpowiedź hormonalna
Ramy czasowe: Linia bazowa, 3 miesiące, 6 miesięcy, 12 miesięcy, 18 miesięcy
|
Stężenia hormonu folikulotropowego (FSH), hormonu luteinizującego (LH), estradiolu, hormonu anty-Mullerowskiego.
Odsetek pacjentów ze znacznym zmniejszeniem poziomu FSH i LH, wzrostem poziomu estradiolu i hormonu anty-Mullerowskiego zostanie zestawiony w tabeli.
Zmiany w tych kierunkach będą wskazywać na poprawę stanu hormonalnego, który, jak wykazano, koreluje z poprawą stanu zdrowia w szerokim zakresie środków.
|
Linia bazowa, 3 miesiące, 6 miesięcy, 12 miesięcy, 18 miesięcy
|
|
Morfologia jajników
Ramy czasowe: Linia bazowa, 6 miesięcy, 12 miesięcy, 18 miesięcy
|
Sonografia wewnątrzpochwowa w celu określenia objętości jajników
|
Linia bazowa, 6 miesięcy, 12 miesięcy, 18 miesięcy
|
|
Gęstość kości i skład ciała
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, 12 i/lub 18 miesięcy
|
Ocena gęstości kości i składu ciała (proporcje tłuszcz/mięśnie) za pomocą absorpcjometrii pojedynczego fotonu
|
Wartość wyjściowa, 12 i/lub 18 miesięcy
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Jakość życia oparta na zdrowiu
Ramy czasowe: Wartość bazowa, 6 miesięcy, 12 miesięcy
|
Utian Menopausal Quality of Life (UQoL) Instrument oraz ankiety dotyczące jakości życia w zakresie zdrowia fizycznego i psychicznego SF-36v2.
Są to oparte na normach, sprawdzone klinicznie i powszechnie akceptowane narzędzia pomiarowe.
Poprawa wyników wskazywałaby na zwiększone zadowolenie badanych z ogólnego stanu zdrowia fizycznego i psychicznego w badaniu SF-36v2 oraz zmniejszoną specyficzną dla menopauzy symptomatologię w badaniu Utian Menopausal Quality of Life.
|
Wartość bazowa, 6 miesięcy, 12 miesięcy
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Burger H. The menopausal transition--endocrinology. J Sex Med. 2008 Oct;5(10):2266-73. doi: 10.1111/j.1743-6109.2008.00921.x. Epub 2008 Jul 1.
- Santiquet N, Vallieres L, Pothier F, Sirard MA, Robert C, Richard F. Transplanted bone marrow cells do not provide new oocytes but rescue fertility in female mice following treatment with chemotherapeutic agents. Cell Reprogram. 2012 Apr;14(2):123-9. doi: 10.1089/cell.2011.0066.
- He Y, Chen D, Yang L, Hou Q, Ma H, Xu X. The therapeutic potential of bone marrow mesenchymal stem cells in premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Oct 4;9(1):263. doi: 10.1186/s13287-018-1008-9.
- Sills ES, Rickers NS, Li X, Palermo GD. First data on in vitro fertilization and blastocyst formation after intraovarian injection of calcium gluconate-activated autologous platelet rich plasma. Gynecol Endocrinol. 2018 Sep;34(9):756-760. doi: 10.1080/09513590.2018.1445219. Epub 2018 Feb 28.
- Bertone-Johnson ER, Manson JE, Purdue-Smithe AC, Steiner AZ, Eliassen AH, Hankinson SE, Rosner BA, Whitcomb BW. Anti-Mullerian hormone levels and incidence of early natural menopause in a prospective study. Hum Reprod. 2018 Jun 1;33(6):1175-1182. doi: 10.1093/humrep/dey077.
- Ji MX, Yu Q. Primary osteoporosis in postmenopausal women. Chronic Dis Transl Med. 2015 Mar 21;1(1):9-13. doi: 10.1016/j.cdtm.2015.02.006. eCollection 2015 Mar. No abstract available.
- Li J, Yu Q, Huang H, Deng W, Cao X, Adu-Frimpong M, Yu J, Xu X. Human chorionic plate-derived mesenchymal stem cells transplantation restores ovarian function in a chemotherapy-induced mouse model of premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Apr 3;9(1):81. doi: 10.1186/s13287-018-0819-z.
- Liu M, Qiu Y, Xue Z, Wu R, Li J, Niu X, Yuan J, Wang Y, Wu Q. Small extracellular vesicles derived from embryonic stem cells restore ovarian function of premature ovarian failure through PI3K/AKT signaling pathway. Stem Cell Res Ther. 2020 Jan 3;11(1):3. doi: 10.1186/s13287-019-1508-2.
- Vermeulen M, Giudice MG, Del Vento F, Wyns C. Role of stem cells in fertility preservation: current insights. Stem Cells Cloning. 2019 Aug 5;12:27-48. doi: 10.2147/SCCAA.S178490. eCollection 2019.
- Zhang X, Niu J, Che T, Zhu Y, Zhang H, Qu J. Fertility preservation in BRCA mutation carriers-efficacy and safety issues: a review. Reprod Biol Endocrinol. 2020 Feb 18;18(1):11. doi: 10.1186/s12958-019-0561-0.
- Ling L, Feng X, Wei T, Wang Y, Wang Y, Wang Z, Tang D, Luo Y, Xiong Z. Human amnion-derived mesenchymal stem cell (hAD-MSC) transplantation improves ovarian function in rats with premature ovarian insufficiency (POI) at least partly through a paracrine mechanism. Stem Cell Res Ther. 2019 Jan 25;10(1):46. doi: 10.1186/s13287-019-1136-x.
- Su J, Ding L, Cheng J, Yang J, Li X, Yan G, Sun H, Dai J, Hu Y. Transplantation of adipose-derived stem cells combined with collagen scaffolds restores ovarian function in a rat model of premature ovarian insufficiency. Hum Reprod. 2016 May;31(5):1075-86. doi: 10.1093/humrep/dew041. Epub 2016 Mar 9.
- Zhao YX, Chen SR, Su PP, Huang FH, Shi YC, Shi QY, Lin S. Using Mesenchymal Stem Cells to Treat Female Infertility: An Update on Female Reproductive Diseases. Stem Cells Int. 2019 Dec 6;2019:9071720. doi: 10.1155/2019/9071720. eCollection 2019.
- Liu R, Zhang X, Fan Z, Wang Y, Yao G, Wan X, Liu Z, Yang B, Yu L. Human amniotic mesenchymal stem cells improve the follicular microenvironment to recover ovarian function in premature ovarian failure mice. Stem Cell Res Ther. 2019 Oct 2;10(1):299. doi: 10.1186/s13287-019-1315-9.
- Yoon SY. Mesenchymal stem cells for restoration of ovarian function. Clin Exp Reprod Med. 2019 Mar;46(1):1-7. doi: 10.5653/cerm.2019.46.1.1. Epub 2019 Mar 1.
- Chen L, Guo S, Wei C, Li H, Wang H, Xu Y. Effect of stem cell transplantation of premature ovarian failure in animal models and patients: A meta-analysis and case report. Exp Ther Med. 2018 May;15(5):4105-4118. doi: 10.3892/etm.2018.5970. Epub 2018 Mar 20.
- Tabatabaei Qomi R, Sheykhhasan M. Adipose-derived stromal cell in regenerative medicine: A review. World J Stem Cells. 2017 Aug 26;9(8):107-117. doi: 10.4252/wjsc.v9.i8.107.
- Ding C, Li H, Wang Y, Wang F, Wu H, Chen R, Lv J, Wang W, Huang B. Different therapeutic effects of cells derived from human amniotic membrane on premature ovarian aging depend on distinct cellular biological characteristics. Stem Cell Res Ther. 2017 Jul 27;8(1):173. doi: 10.1186/s13287-017-0613-3.
- Li F, Zhou C, Xu L, Tao S, Zhao J, Gu Q. Effect of Stem Cell Therapy on Bone Mineral Density: A Meta-Analysis of Preclinical Studies in Animal Models of Osteoporosis. PLoS One. 2016 Feb 16;11(2):e0149400. doi: 10.1371/journal.pone.0149400. eCollection 2016.
- Bidet M, Bachelot A, Bissauge E, Golmard JL, Gricourt S, Dulon J, Coussieu C, Badachi Y, Touraine P. Resumption of ovarian function and pregnancies in 358 patients with premature ovarian failure. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Dec;96(12):3864-72. doi: 10.1210/jc.2011-1038. Epub 2011 Oct 12.
- Cordts EB, Christofolini DM, Dos Santos AA, Bianco B, Barbosa CP. Genetic aspects of premature ovarian failure: a literature review. Arch Gynecol Obstet. 2011 Mar;283(3):635-43. doi: 10.1007/s00404-010-1815-4. Epub 2010 Dec 29.
- Miao Y, Wang P, Xie B, Yang M, Li S, Cui Z, Fan Y, Li M, Xiong B. BRCA2 deficiency is a potential driver for human primary ovarian insufficiency. Cell Death Dis. 2019 Jun 17;10(7):474. doi: 10.1038/s41419-019-1720-0.
- Hernandez-Angeles C, Castelo-Branco C. Early menopause: A hazard to a woman's health. Indian J Med Res. 2016 Apr;143(4):420-7. doi: 10.4103/0971-5916.184283.
- Guo Y, Sun J, Lai D. Role of microRNAs in premature ovarian insufficiency. Reprod Biol Endocrinol. 2017 May 12;15(1):38. doi: 10.1186/s12958-017-0256-3.
- Chen X, Wang Q, Li X, Wang Q, Xie J, Fu X. Heat shock pretreatment of mesenchymal stem cells for inhibiting the apoptosis of ovarian granulosa cells enhanced the repair effect on chemotherapy-induced premature ovarian failure. Stem Cell Res Ther. 2018 Sep 26;9(1):240. doi: 10.1186/s13287-018-0964-4.
- Vural B, Duruksu G, Vural F, Gorguc M, Karaoz E. Effects of VEGF + Mesenchymal Stem Cells and Platelet-Rich Plasma on Inbred Rat Ovarian Functions in Cyclophosphamide-Induced Premature Ovarian Insufficiency Model. Stem Cell Rev Rep. 2019 Aug;15(4):558-573. doi: 10.1007/s12015-019-09892-5.
- Liu C, Yin H, Jiang H, Du X, Wang C, Liu Y, Li Y, Yang Z. Extracellular Vesicles Derived from Mesenchymal Stem Cells Recover Fertility of Premature Ovarian Insufficiency Mice and the Effects on their Offspring. Cell Transplant. 2020 Jan-Dec;29:963689720923575. doi: 10.1177/0963689720923575.
- Ding C, Zou Q, Wang F, Wu H, Chen R, Lv J, Ling M, Sun J, Wang W, Li H, Huang B. Human amniotic mesenchymal stem cells improve ovarian function in natural aging through secreting hepatocyte growth factor and epidermal growth factor. Stem Cell Res Ther. 2018 Mar 9;9(1):55. doi: 10.1186/s13287-018-0781-9.
- Li J, Mao Q, He J, She H, Zhang Z, Yin C. Human umbilical cord mesenchymal stem cells improve the reserve function of perimenopausal ovary via a paracrine mechanism. Stem Cell Res Ther. 2017 Mar 9;8(1):55. doi: 10.1186/s13287-017-0514-5.
- Takehara Y, Yabuuchi A, Ezoe K, Kuroda T, Yamadera R, Sano C, Murata N, Aida T, Nakama K, Aono F, Aoyama N, Kato K, Kato O. The restorative effects of adipose-derived mesenchymal stem cells on damaged ovarian function. Lab Invest. 2013 Feb;93(2):181-93. doi: 10.1038/labinvest.2012.167. Epub 2012 Nov 19.
- Huang B, Lu J, Ding C, Zou Q, Wang W, Li H. Exosomes derived from human adipose mesenchymal stem cells improve ovary function of premature ovarian insufficiency by targeting SMAD. Stem Cell Res Ther. 2018 Aug 9;9(1):216. doi: 10.1186/s13287-018-0953-7.
- Shen J, Cao D, Sun JL. Ability of human umbilical cord mesenchymal stem cells to repair chemotherapy-induced premature ovarian failure. World J Stem Cells. 2020 Apr 26;12(4):277-287. doi: 10.4252/wjsc.v12.i4.277.
- Fazeli Z, Abedindo A, Omrani MD, Ghaderian SMH. Mesenchymal Stem Cells (MSCs) Therapy for Recovery of Fertility: a Systematic Review. Stem Cell Rev Rep. 2018 Feb;14(1):1-12. doi: 10.1007/s12015-017-9765-x.
- Bu S, Zhang Q, Wang Q, Lai D. Human amniotic epithelial cells inhibit growth of epithelial ovarian cancer cells via TGF-beta1-mediated cell cycle arrest. Int J Oncol. 2017 Nov;51(5):1405-1414. doi: 10.3892/ijo.2017.4123. Epub 2017 Sep 14.
- Herraiz S, Pellicer N, Romeu M, Pellicer A. Treatment potential of bone marrow-derived stem cells in women with diminished ovarian reserves and premature ovarian failure. Curr Opin Obstet Gynecol. 2019 Jun;31(3):156-162. doi: 10.1097/GCO.0000000000000531.
- Bhartiya D, Patel H. Ovarian stem cells-resolving controversies. J Assist Reprod Genet. 2018 Mar;35(3):393-398. doi: 10.1007/s10815-017-1080-6. Epub 2017 Nov 11.
- Vanni VS, Vigano P, Papaleo E, Mangili G, Candiani M, Giorgione V. Advances in improving fertility in women through stem cell-based clinical platforms. Expert Opin Biol Ther. 2017 May;17(5):585-593. doi: 10.1080/14712598.2017.1305352. Epub 2017 Mar 28.
- Farimani M, Heshmati S, Poorolajal J, Bahmanzadeh M. A report on three live births in women with poor ovarian response following intra-ovarian injection of platelet-rich plasma (PRP). Mol Biol Rep. 2019 Apr;46(2):1611-1616. doi: 10.1007/s11033-019-04609-w. Epub 2019 Feb 5.
- Ruhle A, Lopez Perez R, Zou B, Grosu AL, Huber PE, Nicolay NH. The Therapeutic Potential of Mesenchymal Stromal Cells in the Treatment of Chemotherapy-Induced Tissue Damage. Stem Cell Rev Rep. 2019 Jun;15(3):356-373. doi: 10.1007/s12015-019-09886-3.
- Zafardoust S, Kazemnejad S, Darzi M, Fathi-Kazerooni M, Rastegari H, Mohammadzadeh A. Improvement of Pregnancy Rate and Live Birth Rate in Poor Ovarian Responders by Intraovarian Administration of Autologous Menstrual Blood Derived- Mesenchymal Stromal Cells: Phase I/II Clinical Trial. Stem Cell Rev Rep. 2020 Aug;16(4):755-763. doi: 10.1007/s12015-020-09969-6.
- Truman AM, Tilly JL, Woods DC. Ovarian regeneration: The potential for stem cell contribution in the postnatal ovary to sustained endocrine function. Mol Cell Endocrinol. 2017 Apr 15;445:74-84. doi: 10.1016/j.mce.2016.10.012. Epub 2016 Oct 12.
- Sheikhansari G, Aghebati-Maleki L, Nouri M, Jadidi-Niaragh F, Yousefi M. Current approaches for the treatment of premature ovarian failure with stem cell therapy. Biomed Pharmacother. 2018 Jun;102:254-262. doi: 10.1016/j.biopha.2018.03.056. Epub 2018 Mar 22.
- Soleimani R, Heytens E, Darzynkiewicz Z, Oktay K. Mechanisms of chemotherapy-induced human ovarian aging: double strand DNA breaks and microvascular compromise. Aging (Albany NY). 2011 Aug;3(8):782-93. doi: 10.18632/aging.100363.
- Galvez-Martin P, Sabata R, Verges J, Zugaza JL, Ruiz A, Clares B. Mesenchymal Stem Cells as Therapeutics Agents: Quality and Environmental Regulatory Aspects. Stem Cells Int. 2016;2016:9783408. doi: 10.1155/2016/9783408. Epub 2016 Nov 24.
- Wang S, Yu L, Sun M, Mu S, Wang C, Wang D, Yao Y. The therapeutic potential of umbilical cord mesenchymal stem cells in mice premature ovarian failure. Biomed Res Int. 2013;2013:690491. doi: 10.1155/2013/690491. Epub 2013 Aug 13.
- Sun M, Wang S, Li Y, Yu L, Gu F, Wang C, Yao Y. Adipose-derived stem cells improved mouse ovary function after chemotherapy-induced ovary failure. Stem Cell Res Ther. 2013 Jul 9;4(4):80. doi: 10.1186/scrt231.
- Kilic S, Pinarli F, Ozogul C, Tasdemir N, Naz Sarac G, Delibasi T. Protection from cyclophosphamide-induced ovarian damage with bone marrow-derived mesenchymal stem cells during puberty. Gynecol Endocrinol. 2014 Feb;30(2):135-40. doi: 10.3109/09513590.2013.860127. Epub 2013 Dec 6.
- Frese L, Dijkman PE, Hoerstrup SP. Adipose Tissue-Derived Stem Cells in Regenerative Medicine. Transfus Med Hemother. 2016 Jul;43(4):268-274. doi: 10.1159/000448180. Epub 2016 Jul 26.
- Xia X, Wang T, Yin T, Yan L, Yan J, Lu C, Zhao L, Li M, Zhang Y, Jin H, Zhu X, Liu P, Li R, Qiao J. Mesenchymal Stem Cells Facilitate In Vitro Development of Human Preantral Follicle. Reprod Sci. 2015 Nov;22(11):1367-76. doi: 10.1177/1933719115578922. Epub 2015 Apr 7.
- Vural F, Vural B, Doger E, Cakiroglu Y, Cekmen M. Perifollicular blood flow and its relationship with endometrial vascularity, follicular fluid EG-VEGF, IGF-1, and inhibin-a levels and IVF outcomes. J Assist Reprod Genet. 2016 Oct;33(10):1355-1362. doi: 10.1007/s10815-016-0780-7. Epub 2016 Aug 2.
- Vahabi S, Yadegari Z, Mohammad-Rahimi H. Correction to: Comparison of the effect of activated or non-activated PRP in various concentrations on osteoblast and fibroblast cell line proliferation. Cell Tissue Bank. 2018 Sep;19(3):455. doi: 10.1007/s10561-017-9677-7.
- Pantos K, Nitsos N, Kokkali G, et al. Ovarian rejuvenation and folliculogenesis reactivation in peri-menopausal women after autologous platelet-rich plasma treatment. Abstracts, ESHRE 32nd Annual Meeting; 3-6 Jul 2016; Helsinki, Finland. Hum Reprod 2016 (Suppl. 1):i301.
- Pines A, Sturdee DW, MacLennan AH. Quality of life and the role of menopausal hormone therapy. Climacteric. 2012 Jun;15(3):213-6. doi: 10.3109/13697137.2012.655923.
- Zollner YF, Acquadro C, Schaefer M. Literature review of instruments to assess health-related quality of life during and after menopause. Qual Life Res. 2005 Mar;14(2):309-27. doi: 10.1007/s11136-004-0688-z.
- Utian WH, Woods NF. Impact of hormone therapy on quality of life after menopause. Menopause. 2013 Oct;20(10):1098-105. doi: 10.1097/GME.0b013e318298debe.
- Hess R, Colvin A, Avis NE, Bromberger JT, Schocken M, Johnston JM, Matthews KA. The impact of hormone therapy on health-related quality of life: longitudinal results from the Study of Women's Health Across the Nation. Menopause. 2008 May-Jun;15(3):422-8. doi: 10.1097/gme.0b013e31814faf2b.
- Tella SH, Gallagher JC. Prevention and treatment of postmenopausal osteoporosis. J Steroid Biochem Mol Biol. 2014 Jul;142:155-70. doi: 10.1016/j.jsbmb.2013.09.008. Epub 2013 Oct 29.
- Greendale GA, Sowers M, Han W, Huang MH, Finkelstein JS, Crandall CJ, Lee JS, Karlamangla AS. Bone mineral density loss in relation to the final menstrual period in a multiethnic cohort: results from the Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). J Bone Miner Res. 2012 Jan;27(1):111-8. doi: 10.1002/jbmr.534.
- Samargandy S, Matthews KA, Brooks MM, Barinas-Mitchell E, Magnani JW, Janssen I, Hollenberg SM, El Khoudary SR. Arterial Stiffness Accelerates Within 1 Year of the Final Menstrual Period: The SWAN Heart Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2020 Apr;40(4):1001-1008. doi: 10.1161/ATVBAHA.119.313622. Epub 2020 Jan 23.
- Greendale GA, Huang M, Cauley JA, Liao D, Harlow S, Finkelstein JS, Hans D, Karlamangla AS. Trabecular Bone Score Declines During the Menopause Transition: The Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). J Clin Endocrinol Metab. 2020 Apr 1;105(4):e1872-82. doi: 10.1210/clinem/dgz056.
- Randolph JF Jr, Zheng H, Sowers MR, Crandall C, Crawford S, Gold EB, Vuga M. Change in follicle-stimulating hormone and estradiol across the menopausal transition: effect of age at the final menstrual period. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Mar;96(3):746-54. doi: 10.1210/jc.2010-1746. Epub 2010 Dec 15.
- Greendale GA, Sternfeld B, Huang M, Han W, Karvonen-Gutierrez C, Ruppert K, Cauley JA, Finkelstein JS, Jiang SF, Karlamangla AS. Changes in body composition and weight during the menopause transition. JCI Insight. 2019 Mar 7;4(5):e124865. doi: 10.1172/jci.insight.124865. eCollection 2019 Mar 7.
- Karlamangla AS, Burnett-Bowie SM, Crandall CJ. Bone Health During the Menopause Transition and Beyond. Obstet Gynecol Clin North Am. 2018 Dec;45(4):695-708. doi: 10.1016/j.ogc.2018.07.012. Epub 2018 Oct 25.
- Sfakianoudis K, Simopoulou M, Nitsos N, Rapani A, Pappas A, Pantou A, Chronopoulou M, Deligeoroglou E, Koutsilieris M, Pantos K. Autologous Platelet-Rich Plasma Treatment Enables Pregnancy for a Woman in Premature Menopause. J Clin Med. 2018 Dec 20;8(1):1. doi: 10.3390/jcm8010001.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- OVARIAN REJUV
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .
Badania kliniczne na zbiór lipoaspiracyjny tSVF
-
Universidad Complutense de MadridZakończony
-
Regeneris MedicalGlobal Alliance for Regenerative MedicineRekrutacyjnyŁysienie plackowate | Łysienie bliznowaciejąceStany Zjednoczone
-
Healeon Medical IncGlobal Alliance for Regenerative MedicineZawieszonyStwardnienie rozsiane | AutoimmunologicznyStany Zjednoczone, Honduras
-
Stanford UniversityWycofaneRozdarcie mankietu rotatorów | Choroba zwyrodnieniowa stawów, kolano | Degeneracja chrząstki
-
Healeon Medical IncDonna Alderman, DO; Robert W. Alexander, MDRekrutacyjnyZapalenie kości i stawów | Choroba zwyrodnieniowa stawu kolanowego | Choroba zwyrodnieniowa stawów, biodro | Ramiona z zapaleniem kości i stawów | Choroba zwyrodnieniowa wielu stawów | Choroba zwyrodnieniowa stawów — kostka/stopaStany Zjednoczone
-
Stanford UniversityWycofaneRozdarcie mankietu rotatorów | Uraz mankietu rotatorówStany Zjednoczone
-
Healeon Medical IncTerry, Glenn C., M.D.; Ministry of Health, Honduras; Robert W. Alexander, MDWycofaneChoroba włosówStany Zjednoczone
-
Black Tie Medical, Inc.Robert W. Alexander, MDRejestracja na zaproszenieKoronawirus infekcja | Idiopatyczne włóknienie płuc | Śródmiąższowa choroba płuc | POChP | Proteinoza pęcherzyków płucnych | Wirusowe zapalenie płucStany Zjednoczone
-
Wake Forest University Health SciencesDesert HarvestRekrutacyjnyŚródmiąższowe zapalenie pęcherza moczowego | Zespół bólu pęcherza | Przewlekłe śródmiąższowe zapalenie pęcherzaStany Zjednoczone