- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05973734
Trapianto di isole con cellule T-Reg del ricevente o Terapia del midollo osseo vertebrale del donatore deceduto
18 agosto 2023 aggiornato da: Stephan Busque, Stanford University
Trapianto clinico di isole con aferesi, isolamento e reintroduzione delle cellule T regolatorie del ricevente o somministrazione di midollo osseo vertebrale del donatore deceduto nel diabete di tipo 1
L'obiettivo di questo studio clinico è scoprire se i pazienti con diabete di tipo 1 fragile che ricevono un trapianto di isole avranno un migliore controllo dei loro zuccheri se ricevono anche uno dei 2 tipi di cellule immunitarie insieme al trapianto di isole.
I partecipanti riceveranno le proprie cellule immunitarie, chiamate cellule T regolatorie, o cellule immunitarie dal midollo osseo del donatore di isole.
Panoramica dello studio
Stato
Non ancora reclutamento
Condizioni
Descrizione dettagliata
Il successo del trapianto di isole rimane limitato dalla perdita immediata di isole dopo il trapianto, dal rigetto e dall'effetto collaterale dell'immunosoppressione.
I modelli animali preclinici forniscono la prova che le cellule del midollo osseo del donatore o le cellule T regolatorie infuse al momento del trapianto di isole possono migliorare la sopravvivenza delle isole dopo il trapianto e ridurre la necessità di immunosoppressione.
Lo scopo di questo studio è valutare la fattibilità e la sicurezza della combinazione di un trapianto di isole con le Treg del ricevente o le cellule del midollo osseo del donatore deceduto in pazienti con diabete di tipo 1 fragile.
Tipo di studio
Interventistico
Iscrizione (Stimato)
24
Fase
- Fase 1
Contatti e Sedi
Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.
Contatto studio
- Nome: Stephan Busque, MD
- Numero di telefono: 650-498-6189
- Email: sbusque@stanford.edu
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Kevin Ly, BS
- Numero di telefono: 650-497-6057
- Email: kevinly@stanford.edu
Luoghi di studio
-
-
California
-
Palo Alto, California, Stati Uniti, 94305
- Stanford University
-
Investigatore principale:
- Stephan Busque, MD
-
Investigatore principale:
- Everett Meyer, MD
-
Sub-investigatore:
- Marina Basina, MD
-
Contatto:
- Kevin Ly, BS
- Numero di telefono: 650-497-6057
- Email: kevinly@stanford.edu
-
Contatto:
- Stephan Busque, MD
-
Sub-investigatore:
- Avnesh S Thakor, MD, PhD
-
Sub-investigatore:
- Thomas A Pham, MD
-
Sub-investigatore:
- Kent P Jensen, PhD
-
-
Criteri di partecipazione
I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
- Adulto più anziano
Accetta volontari sani
No
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Pazienti di sesso maschile e femminile di età compresa tra 18 e 70 anni.
- Capacità di fornire il consenso informato scritto.
- Mentalmente stabile e in grado di rispettare le procedure del protocollo di studio.
- Anamnesi clinica compatibile con T1D con insorgenza della malattia a <45 anni di età, insulino-dipendenza da ≥ 5 anni al momento dell'arruolamento o somma dell'età del paziente e della durata del diabete insulino-dipendente ≥ 28.
- Assenza di peptide C stimolato (< 0,3 ng/mL) in risposta a un test di tolleranza del pasto misto misurato a 60 e 90 minuti dopo l'inizio del consumo
- Coinvolgimento nella gestione intensiva del diabete definita come automonitoraggio dei valori glicemici non inferiore a una media di tre volte al giorno calcolata in media su ogni settimana e dalla somministrazione di tre o più iniezioni di insulina ogni giorno o terapia con microinfusore. Tale gestione deve essere sotto la direzione di un endocrinologo, diabetologo o specialista del diabete con almeno 3 valutazioni cliniche durante i 12 mesi precedenti l'arruolamento nello studio.
- Almeno due episodi di grave ipoglicemia nei 12 mesi precedenti l'arruolamento nello studio.
- Ridotta consapevolezza dell'ipoglicemia come definita da un punteggio Clarke di 4 o più OPPURE un punteggio HYPO maggiore o uguale al 90° percentile (1047) durante il periodo di screening e negli ultimi 6 mesi prima della randomizzazione.
- Le donne in età fertile possono essere arruolate se un test di gravidanza è negativo e acconsentono all'uso di 2 forme di contraccezione dallo screening alla fine dello studio. I maschi devono accettare di utilizzare 2 forme di contraccezione dallo screening alla fine dello studio se i loro partner sono in età fertile.
Metodi accettabili di controllo delle nascite che devono essere usati insieme sono:
- Contraccettivo orale e preservativo (dovrebbero essere utilizzati contraccettivi orali combinati contenenti il progestinico di seconda generazione (levonorgestrel) e <30 μg di estrogeni),
- IUD e preservativo,
- Diaframma con spermicida e preservativo
- Il soggetto deve completare la formazione su come utilizzare la pompa Tandem X2 con tecnologia Control IQ da parte di un educatore o medico certificato per il diabete. I pazienti devono completare almeno 2 ore di formazione con soddisfazione dell'educatore e mostrare competenza e comprensione nel suo utilizzo secondo il giudizio dell'educatore.
- I pazienti con precedente trapianto di rene in trattamento con farmaci immunosoppressori sono ammissibili a condizione che soddisfino tutti i criteri di ammissibilità di cui sopra escludendo la necessità di inconsapevolezza dell'ipoglicemia. I pazienti non devono essere candidati al trapianto di pancreas di organi solidi o aver rifiutato l'opzione chirurgica.
- Criteri di esclusione:
- Indice di massa corporea (BMI) >30 kg/m2 o peso del paziente ≤50 kg.
- Fabbisogno di insulina >1,0 UI/kg/giorno o <15 U/giorno. 3. HbA1c >10%.
- Trattamento con qualsiasi farmaco antidiabetico diverso dall'insulina entro 4 settimane dallo screening
- Retinopatia diabetica proliferativa non trattata.
- Pressione sanguigna: PAS >180 mmHg o PAD >100 mmHg con trattamento ottimale.
- Velocità di filtrazione glomerulare stimata di <50 ml/min/1,73 m2.
- Presenza o anamnesi di macroalbuminuria (>500 mg/g di creatinina).
- Presenza o anamnesi di anticorpi anti-HLA reattivi al pannello >50%. Cross-match negativo mediante citometria a flusso e assenza di DSA al donatore di organi con metodi standard.
- Per soggetti di sesso femminile: test di gravidanza positivo, attualmente in allattamento o riluttanza a utilizzare misure contraccettive efficaci per la durata dello studio e 4 mesi dopo l'interruzione. Per i partecipanti di sesso maschile: intenzione di procreare durante la durata dello studio o entro 4 mesi dopo l'interruzione o riluttanza a utilizzare misure contraccettive efficaci
- Presenza di infezione attiva inclusa epatite B, epatite C, HIV o tubercolosi (TB). I soggetti con evidenza di laboratorio di infezione attiva sono esclusi anche in assenza di evidenza clinica di infezione attiva.
- Screening negativo per il virus di Epstein-Barr (EBV) mediante determinazione delle IgG.
- Infezione invasiva da aspergillus, istoplasmosi o coccidioidomicosi entro un anno prima dell'arruolamento nello studio.
- Qualsiasi storia di malignità ad eccezione del carcinoma a cellule squamose o basocellulari completamente resecato della pelle.
- Abuso attivo noto di alcol o sostanze.
- Hb basale al di sotto dei limiti inferiori della norma; neutropenia (<1.500/7L) o trombocitopenia (piastrine <100.000/7L).
- Qualsiasi coagulopatia o condizione medica che richieda una terapia anticoagulante a lungo termine (ad es. Warfarin) dopo il trapianto di isole pancreatiche (è consentito il trattamento con aspirina a basso dosaggio) o pazienti con un rapporto internazionale normalizzato (INR) > 1,5.
Grave malattia cardiaca coesistente, caratterizzata da una qualsiasi di queste condizioni:
- infarto miocardico recente (negli ultimi 6 mesi).
- evidenza di ischemia non correggibile all'esame cardiaco funzionale nell'ultimo anno.
- frazione di eiezione ventricolare sinistra <30%.
- Aumento persistente dei test di funzionalità epatica al momento dell'ingresso nello studio. Transaminasi glutammico-ossalacetica sierica persistente (SGOT [AST]), glutammato piruvato transaminasi sierica (SGPT [ALT]) o bilirubina totale, con valori > 1,5 volte i limiti superiori normali escluderanno un paziente.
- Pancreatite acuta o cronica.
- Trattamento con qualsiasi farmaco antidiabetico diverso dall'insulina entro 4 settimane dall'arruolamento.
- Uso di qualsiasi agente sperimentale entro 4 o più settimane dall'arruolamento, a seconda della farmacocinetica dell'agente sperimentale e della durata dei cambiamenti con il trattamento nella funzione immunitaria o nella regolazione glicemica.
- Somministrazione di vaccini vivi attenuati entro 2 mesi dall'arruolamento.
- Qualsiasi condizione medica che, secondo l'opinione dello sperimentatore, interferirà con la partecipazione sicura allo studio.
- Un precedente trapianto di isole.
- Storia di non aderenza medica o scarso supporto sociale.
- Individui con deficit selettivi di IgA (livello di IgA inferiore a 15 mg/dL) che hanno anticorpi anti-IgA noti.
Piano di studio
Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Non randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Sperimentale: Cellula regolatrice T ricevente
Cellule T regolatorie prima del trapianto di isole, terapia di induzione con ATG e Belatacept e immunosoppressione di mantenimento con Tacrolimus compresse a rilascio prolungato (Envarsus XR) e Micofenolato Mofetile (MMF).
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I pazienti saranno sottoposti a una singola raccolta di aferesi con un volume di sangue totale target di 20-30 L e le cellule raccolte utilizzate come fonte di Treg purificate da infondere dopo il trapianto di isole.
Nel caso in cui un paziente non sia in grado di raggiungere l'obiettivo di raccolta, può essere eseguita una seconda raccolta.
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Sperimentale: Midollo osseo vertebrale derivato da donatore
Cellule di midollo osseo vertebrale (VBM) di donatore deceduto, terapia di induzione con ATG e Belatacept e immunosoppressione di mantenimento con compresse a rilascio prolungato di Tacrolimus (Envarsus XR) e Micofenolato Mofetile (MMF).
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Le cellule del donatore VB e della milza vengono processate in condizioni cGMP e rilasciate per l'infusione dopo che il rispettivo ricevente è stato sottoposto a trapianto e condizionamento.
In base a questo protocollo, il VB del donatore sarà ottenuto contemporaneamente alle isole pancreatiche e sarà la fonte di HSC per l'infusione con l'intento di stabilire una tolleranza immunitaria alle cellule delle isole pancreatiche del donatore.
I soggetti riceveranno un'infusione di isole cadaveriche allogeniche.
I soggetti riceveranno terapia di induzione con ATG e Belatacept e immunosoppressione di mantenimento con Tacrolimus Compresse a rilascio prolungato (Envarsus XR) e Micofenolato Mofetile (MMF).
Dopo il trapianto di isole, le cellule VBM saranno infuse in una finestra temporale: il giorno 0-1.
I soggetti saranno sottoposti a peri-trapianto di controllo del glucosio con pompa per insulina a circuito chiuso.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Insorgenza di sindrome da rilascio di citochine di grado da 3 a 5/reazione acuta all'infusione dopo la somministrazione di Treg reazione all'infusione dopo la somministrazione di Treg
Lasso di tempo: entro 3 mesi
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Sindrome da rilascio di citochine di grado da 3 a 5/reazione acuta all'infusione dopo somministrazione di Treg reazione all'infusione dopo somministrazione di Treg
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entro 3 mesi
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Occorrenza di eventi avversi di grado 4 o superiore del trapianto di isole
Lasso di tempo: Entro due anni
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Evento avverso di grado 4 o superiore
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Entro due anni
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Numero di pazienti che ricevono infusioni di Treg (Arm1) o midollo osseo vertebrale derivato da donatore (Arm2) e trapianto di isole (fattibilità)
Lasso di tempo: Entro due anni
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Numero di pazienti che hanno ricevuto Treg pianificate o midollo osseo da donatore
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Entro due anni
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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HbA1c ≤6,5%
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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HbA1c ≤6,5%
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valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Assenza di gravi eventi ipoglicemici
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Assenza di evento ipoglicemico grave, che richieda l'intervento di una persona diversa dal paziente
|
valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
|
Diminuzione del fabbisogno medio di insulina (u/kg) rispetto a prima del trapianto del 50% della dose giornaliera totale
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Riduzione del fabbisogno di insulina esogena del 50% rispetto al basale
|
valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Punteggio di gravità dell'ipoglicemia di Clarke (HYPO) inferiore a 2 (da 0 a >4, >4 indica una grave inconsapevolezza dell'ipoglicemia)
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
|
Miglioramento del punteggio di Clarke a meno di 2
|
valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Peptide C basale a livelli e >0,5 ng/mL (>0,17 nmol/L) a digiuno o stimolato.
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Produzione di C-petide dalla valutazione del trapianto di isole
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valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
|
Target di variabilità glicemica e durata dell'ipoglicemia derivato dal CGMS <Deviazione standard e target del coefficiente>
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
|
Monitoraggio del controllo del glucosio Monitoraggio del sensore 24 ore su 24
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valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Misurazione dell'anticorpo specifico del donatore, cPRA
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Saggio anti HLA di classe 1 e 2 con luminex a singola perlina
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valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Valutazione della qualità della vita (QOL).
Lasso di tempo: valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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QOL questionario SF-12 (0-100, un punteggio più alto è un risultato migliore)
|
valutato a 6, 12 e 24 mesi dopo il trapianto di isole
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Collaboratori e investigatori
Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.
Sponsor
Collaboratori
Investigatori
- Investigatore principale: Stephan Busque, MD, Stanford University
Pubblicazioni e link utili
La persona responsabile dell'inserimento delle informazioni sullo studio fornisce volontariamente queste pubblicazioni. Questi possono riguardare qualsiasi cosa relativa allo studio.
Pubblicazioni generali
- Ryan EA, Paty BW, Senior PA, Bigam D, Alfadhli E, Kneteman NM, Lakey JR, Shapiro AM. Five-year follow-up after clinical islet transplantation. Diabetes. 2005 Jul;54(7):2060-9. doi: 10.2337/diabetes.54.7.2060.
- Shapiro AM, Lakey JR, Ryan EA, Korbutt GS, Toth E, Warnock GL, Kneteman NM, Rajotte RV. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 2000 Jul 27;343(4):230-8. doi: 10.1056/NEJM200007273430401.
- Hirsch IB. Insulin analogues. N Engl J Med. 2005 Jan 13;352(2):174-83. doi: 10.1056/NEJMra040832. No abstract available.
- Terasaki PI, Ozawa M. Predicting kidney graft failure by HLA antibodies: a prospective trial. Am J Transplant. 2004 Mar;4(3):438-43. doi: 10.1111/j.1600-6143.2004.00360.x.
- Mao Q, Terasaki PI, Cai J, Briley K, Catrou P, Haisch C, Rebellato L. Extremely high association between appearance of HLA antibodies and failure of kidney grafts in a five-year longitudinal study. Am J Transplant. 2007 Apr;7(4):864-71. doi: 10.1111/j.1600-6143.2006.01711.x.
- Gold AE, MacLeod KM, Frier BM. Frequency of severe hypoglycemia in patients with type I diabetes with impaired awareness of hypoglycemia. Diabetes Care. 1994 Jul;17(7):697-703. doi: 10.2337/diacare.17.7.697.
- Diabetes Control and Complications Trial Research Group; Nathan DM, Genuth S, Lachin J, Cleary P, Crofford O, Davis M, Rand L, Siebert C. The effect of intensive treatment of diabetes on the development and progression of long-term complications in insulin-dependent diabetes mellitus. N Engl J Med. 1993 Sep 30;329(14):977-86. doi: 10.1056/NEJM199309303291401.
- Markmann JF, Deng S, Huang X, Desai NM, Velidedeoglu EH, Lui C, Frank A, Markmann E, Palanjian M, Brayman K, Wolf B, Bell E, Vitamaniuk M, Doliba N, Matschinsky F, Barker CF, Naji A. Insulin independence following isolated islet transplantation and single islet infusions. Ann Surg. 2003 Jun;237(6):741-9; discussion 749-50. doi: 10.1097/01.SLA.0000072110.93780.52.
- Epidemiology of severe hypoglycemia in the diabetes control and complications trial. The DCCT Research Group. Am J Med. 1991 Apr;90(4):450-9.
- Ryan EA, Shandro T, Green K, Paty BW, Senior PA, Bigam D, Shapiro AM, Vantyghem MC. Assessment of the severity of hypoglycemia and glycemic lability in type 1 diabetic subjects undergoing islet transplantation. Diabetes. 2004 Apr;53(4):955-62. doi: 10.2337/diabetes.53.4.955.
- Kessler L, Passemard R, Oberholzer J, Benhamou PY, Bucher P, Toso C, Meyer P, Penfornis A, Badet L, Wolf P, Colin C, Morel P, Pinget M; GRAGIL Group. Reduction of blood glucose variability in type 1 diabetic patients treated by pancreatic islet transplantation: interest of continuous glucose monitoring. Diabetes Care. 2002 Dec;25(12):2256-62. doi: 10.2337/diacare.25.12.2256.
- Streja D. Can continuous glucose monitoring provide objective documentation of hypoglycemia unawareness? Endocr Pract. 2005 Mar-Apr;11(2):83-90. doi: 10.4158/EP.11.2.83.
- Cryer PE, Davis SN, Shamoon H. Hypoglycemia in diabetes. Diabetes Care. 2003 Jun;26(6):1902-12. doi: 10.2337/diacare.26.6.1902.
- Larsen JL. Pancreas transplantation: indications and consequences. Endocr Rev. 2004 Dec;25(6):919-46. doi: 10.1210/er.2002-0036. Erratum In: Endocr Rev. 2005 Aug;26(5):661.
- Cryer PE, Fisher JN, Shamoon H. Hypoglycemia. Diabetes Care. 1994 Jul;17(7):734-55. doi: 10.2337/diacare.17.7.734. No abstract available.
- Hering BJ, Clarke WR, Bridges ND, Eggerman TL, Alejandro R, Bellin MD, Chaloner K, Czarniecki CW, Goldstein JS, Hunsicker LG, Kaufman DB, Korsgren O, Larsen CP, Luo X, Markmann JF, Naji A, Oberholzer J, Posselt AM, Rickels MR, Ricordi C, Robien MA, Senior PA, Shapiro AM, Stock PG, Turgeon NA; Clinical Islet Transplantation Consortium. Phase 3 Trial of Transplantation of Human Islets in Type 1 Diabetes Complicated by Severe Hypoglycemia. Diabetes Care. 2016 Jul;39(7):1230-40. doi: 10.2337/dc15-1988. Epub 2016 Apr 18.
- Krzystyniak A, Golab K, Witkowski P, Trzonkowski P. Islet cell transplant and the incorporation of Tregs. Curr Opin Organ Transplant. 2014 Dec;19(6):610-5. doi: 10.1097/MOT.0000000000000130.
- Pierini A, Iliopoulou BP, Peiris H, Perez-Cruz M, Baker J, Hsu K, Gu X, Zheng PP, Erkers T, Tang SW, Strober W, Alvarez M, Ring A, Velardi A, Negrin RS, Kim SK, Meyer EH. T cells expressing chimeric antigen receptor promote immune tolerance. JCI Insight. 2017 Oct 19;2(20):e92865. doi: 10.1172/jci.insight.92865.
- Cryer PE. Banting Lecture. Hypoglycemia: the limiting factor in the management of IDDM. Diabetes. 1994 Nov;43(11):1378-89. doi: 10.2337/diab.43.11.1378.
- Meyer EH, Laport G, Xie BJ, MacDonald K, Heydari K, Sahaf B, Tang SW, Baker J, Armstrong R, Tate K, Tadisco C, Arai S, Johnston L, Lowsky R, Muffly L, Rezvani AR, Shizuru J, Weng WK, Sheehan K, Miklos D, Negrin RS. Transplantation of donor grafts with defined ratio of conventional and regulatory T cells in HLA-matched recipients. JCI Insight. 2019 May 16;4(10):e127244. doi: 10.1172/jci.insight.127244. eCollection 2019 May 16.
- Huber BC, Ransohoff JD, Ransohoff KJ, Riegler J, Ebert A, Kodo K, Gong Y, Sanchez-Freire V, Dey D, Kooreman NG, Diecke S, Zhang WY, Odegaard J, Hu S, Gold JD, Robbins RC, Wu JC. Costimulation-adhesion blockade is superior to cyclosporine A and prednisone immunosuppressive therapy for preventing rejection of differentiated human embryonic stem cells following transplantation. Stem Cells. 2013 Nov;31(11):2354-63. doi: 10.1002/stem.1501.
- Bellacen K, Kalay N, Ozeri E, Shahaf G, Lewis EC. Revascularization of pancreatic islet allografts is enhanced by alpha-1-antitrypsin under anti-inflammatory conditions. Cell Transplant. 2013;22(11):2119-33. doi: 10.3727/096368912X657701. Epub 2012 Oct 8.
- Hubbard RC, Sellers S, Czerski D, Stephens L, Crystal RG. Biochemical efficacy and safety of monthly augmentation therapy for alpha 1-antitrypsin deficiency. JAMA. 1988 Sep 2;260(9):1259-64.
- Baranovski BM, Ozeri E, Shahaf G, Ochayon DE, Schuster R, Bahar N, Kalay N, Cal P, Mizrahi MI, Nisim O, Strauss P, Schenker E, Lewis EC. Exploration of alpha1-antitrypsin treatment protocol for islet transplantation: dosing plan and route of administration. J Pharmacol Exp Ther. 2016 Dec;359(3):482-490. doi: 10.1124/jpet.116.236067. Epub 2016 Nov 7.
- Weir GC, Ehlers MR, Harris KM, Kanaparthi S, Long A, Phippard D, Weiner LJ, Jepson B, McNamara JG, Koulmanda M, Strom TB; ITN RETAIN Study Team. Alpha-1 antitrypsin treatment of new-onset type 1 diabetes: An open-label, phase I clinical trial (RETAIN) to assess safety and pharmacokinetics. Pediatr Diabetes. 2018 Aug;19(5):945-954. doi: 10.1111/pedi.12660. Epub 2018 May 7.
- Koulmanda M, Bhasin M, Fan Z, Hanidziar D, Goel N, Putheti P, Movahedi B, Libermann TA, Strom TB. Alpha 1-antitrypsin reduces inflammation and enhances mouse pancreatic islet transplant survival. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Sep 18;109(38):15443-8. doi: 10.1073/pnas.1018366109. Epub 2012 Sep 4.
- Wang J, Sun Z, Gou W, Adams DB, Cui W, Morgan KA, Strange C, Wang H. alpha-1 Antitrypsin Enhances Islet Engraftment by Suppression of Instant Blood-Mediated Inflammatory Reaction. Diabetes. 2017 Apr;66(4):970-980. doi: 10.2337/db16-1036. Epub 2017 Jan 9.
- Berger M, Liu M, Uknis ME, Koulmanda M. Alpha-1-antitrypsin in cell and organ transplantation. Am J Transplant. 2018 Jul;18(7):1589-1595. doi: 10.1111/ajt.14756. Epub 2018 Apr 24.
- Taylor GD, Kirkland T, Lakey J, Rajotte R, Warnock GL. Bacteremia due to transplantation of contaminated cryopreserved pancreatic islets. Cell Transplant. 1994 Jan-Feb;3(1):103-6. doi: 10.1177/096368979400300114.
- Lloveras J, Farney AC, Sutherland DE, Wahoff D, Field J, Gores PF. Significance of contaminated islet preparations in clinical islet transplantation. Transplant Proc. 1994 Apr;26(2):579-80. No abstract available.
- Rickels MR, Kamoun M, Kearns J, Markmann JF, Naji A. Evidence for allograft rejection in an islet transplant recipient and effect on beta-cell secretory capacity. J Clin Endocrinol Metab. 2007 Jul;92(7):2410-4. doi: 10.1210/jc.2007-0172. Epub 2007 May 8.
- Rickels MR, Kearns J, Markmann E, Palanjian M, Markmann JF, Naji A, Kamoun M. HLA sensitization in islet transplantation. Clin Transpl. 2006:413-20.
- Olack BJ, Swanson CJ, Flavin KS, Phelan D, Brennan DC, White NH, Lacy PE, Scharp DW, Poindexter N, Mohanakumar T. Sensitization to HLA antigens in islet recipients with failing transplants. Transplant Proc. 1997 Jun;29(4):2268-9. doi: 10.1016/s0041-1345(97)00327-8. No abstract available.
- Terasaki PI, Ozawa M, Castro R. Four-year follow-up of a prospective trial of HLA and MICA antibodies on kidney graft survival. Am J Transplant. 2007 Feb;7(2):408-15. doi: 10.1111/j.1600-6143.2006.01644.x. Epub 2007 Jan 4.
- Ramsay RC, Goetz FC, Sutherland DE, Mauer SM, Robison LL, Cantrill HL, Knobloch WH, Najarian JS. Progression of diabetic retinopathy after pancreas transplantation for insulin-dependent diabetes mellitus. N Engl J Med. 1988 Jan 28;318(4):208-14. doi: 10.1056/NEJM198801283180403.
- Hirshberg B, Rother KI, Digon BJ 3rd, Lee J, Gaglia JL, Hines K, Read EJ, Chang R, Wood BJ, Harlan DM. Benefits and risks of solitary islet transplantation for type 1 diabetes using steroid-sparing immunosuppression: the National Institutes of Health experience. Diabetes Care. 2003 Dec;26(12):3288-95. doi: 10.2337/diacare.26.12.3288.
- Ryan EA, Lakey JR, Paty BW, Imes S, Korbutt GS, Kneteman NM, Bigam D, Rajotte RV, Shapiro AM. Successful islet transplantation: continued insulin reserve provides long-term glycemic control. Diabetes. 2002 Jul;51(7):2148-57. doi: 10.2337/diabetes.51.7.2148.
- Ryan EA, Paty BW, Senior PA, Shapiro AM. Risks and side effects of islet transplantation. Curr Diab Rep. 2004 Aug;4(4):304-9. doi: 10.1007/s11892-004-0083-8.
- Froud T, Yrizarry JM, Alejandro R, Ricordi C. Use of D-STAT to prevent bleeding following percutaneous transhepatic intraportal islet transplantation. Cell Transplant. 2004;13(1):55-9. doi: 10.3727/000000004772664897. Erratum In: Cell Transplant. 2004;13(4):475.
- Hering BJ, Kandaswamy R, Ansite JD, Eckman PM, Nakano M, Sawada T, Matsumoto I, Ihm SH, Zhang HJ, Parkey J, Hunter DW, Sutherland DE. Single-donor, marginal-dose islet transplantation in patients with type 1 diabetes. JAMA. 2005 Feb 16;293(7):830-5. doi: 10.1001/jama.293.7.830. Erratum In: JAMA. 2005 Apr 6;293(13):1594.
- Manciu N, Beebe DS, Tran P, Gruessner R, Sutherland DE, Belani KG. Total pancreatectomy with islet cell autotransplantation: anesthetic implications. J Clin Anesth. 1999 Nov;11(7):576-82. doi: 10.1016/s0952-8180(99)00100-2.
- Froberg MK, Leone JP, Jessurun J, Sutherland DE. Fatal disseminated intravascular coagulation after autologous islet transplantation. Hum Pathol. 1997 Nov;28(11):1295-8. doi: 10.1016/s0046-8177(97)90204-5.
- Mehigan DG, Bell WR, Zuidema GD, Eggleston JC, Cameron JL. Disseminated intravascular coagulation and portal hypertension following pancreatic islet autotransplantation. Ann Surg. 1980 Mar;191(3):287-93. doi: 10.1097/00000658-198003000-00006.
- Mittal VK, Toledo-Pereyra LH, Sharma M, Ramaswamy K, Puri VK, Cortez JA, Gordon D. Acute portal hypertension and disseminated intravascular coagulation following pancreatic islet autotransplantation after subtotal pancreatectomy. Transplantation. 1981 Apr;31(4):302-4. No abstract available.
Studiare le date dei record
Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.
Studia le date principali
Inizio studio (Stimato)
1 ottobre 2023
Completamento primario (Stimato)
1 maggio 2025
Completamento dello studio (Stimato)
1 maggio 2028
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
14 giugno 2023
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
25 luglio 2023
Primo Inserito (Effettivo)
3 agosto 2023
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
21 agosto 2023
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
18 agosto 2023
Ultimo verificato
1 agosto 2023
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- 58350
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
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Prove cliniche su Infusione di cellule T regolatorie riceventi
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