- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT03111589
Expresión monocítica de hemo oxidasa-1 (HO-1) en pacientes con células falciformes y correlación con la respuesta inmune humoral a la vacuna y con aloinmunización.
Expresión monocítica de hemo oxidasa-1 (HO-1) en pacientes con células falciformes y correlación con la respuesta inmune humoral a la vacuna y con aloinmunización
La enfermedad de células falciformes (SCD) es un trastorno autosómico recesivo que resulta de una sustitución en la cadena β de la hemoglobina (Hb) que hace que la hemoglobina S se polimerice cuando se desoxigena. Los pacientes con ECF presentan anomalías inmunitarias que siempre se han atribuido a la asplenia funcional. Ahora se reconoce que los pacientes con SCD tienen una afección proinflamatoria con activación alterada del sistema inmunitario que contribuye a la patología de SCD. Se han notificado niveles elevados de neutrófilos, monocitos o citocinas en pacientes con SCD.
La SCD está asociada con muchas complicaciones agudas y crónicas que requieren apoyo inmediato. Las terapias reales altamente recomendadas incluyen transfusiones de sangre crónicas (CT) e hidroxiurea (HU). Además, las transfusiones episódicas se recomiendan y se usan comúnmente para controlar muchas complicaciones agudas de la MSC. Hay pruebas sólidas que respaldan el uso de la HU en adultos con 3 o más crisis vasooclusivas graves durante cualquier período de 12 meses, con dolor de la MSC o dolor crónico. anemia, o con episodios severos o recurrentes de síndrome torácico agudo. El uso de HU ahora también es común en niños con SCD. Algunos pacientes reciben una transfusión mensual crónica de glóbulos rojos con el objetivo de reducir la proporción de HbS a < 30 %. Las transfusiones de glóbulos rojos a largo plazo previenen y tratan las complicaciones de la MSC, lo que reduce el riesgo de accidente cerebrovascular y la incidencia del síndrome torácico agudo (SCA).
Las complicaciones terapéuticas, como la aloinmunización contra los glóbulos rojos en el 20-50 % de los pacientes o el rechazo del injerto del trasplante de células madre hematopoyéticas (TPH), constituyen un problema clínico inmunológico en la ECF. La aloinmunización de glóbulos rojos, poco conocida, es responsable de una reacción transfusional hemolítica grave asociada con una mortalidad y una morbilidad graves que subyacen a la necesidad de una mejor comprensión de la inmunología de la SCD para mejorar el apoyo/resultado de la transfusión de SCD. Existe poca evidencia sobre los efectos de HU en las funciones inmunes en SCD. El tratamiento con HU no parece tener efectos nocivos sobre la función inmunológica y parece disminuir el número anormalmente elevado de glóbulos blancos y linfocitos totales, mientras que la TC no lo hace.
Los pacientes con SCD tienen un mayor riesgo de infecciones y se recomienda encarecidamente la vacunación profiláctica. Datos recientes sugieren que la respuesta vacunal a los antígenos neumocócicos en pacientes con SCD es idéntica a la del control sano, mientras que la controversia se refiere a la estabilidad de la protección inmunitaria después de la vacunación del paciente con SCD. Los niveles de anticuerpos disminuyeron durante el año y se debe investigar la necesidad de una vacunación más frecuente en pacientes con SCD. Actualmente, no hay evidencia de que la HU pueda interferir con la respuesta inmune neumocócica. Purohit demostró que la respuesta inmunitaria a la vacuna del virus de la influenza A (H1N1) inactivado estaba alterada en pacientes con SCD que recibieron CT, pero se sabe poco sobre la respuesta inmunitaria a la vacunación en pacientes con SCD que recibieron HU.
Datos recientes sugieren que no solo el estado inflamatorio sino también la respuesta inmune humoral a los antígenos en pacientes con SCD pueden diferir según el tratamiento. Yazdanbakhsh informó de un desequilibrio entre las células T reguladoras (Treg) y las células T efectoras (Teff) en pacientes con SCD aloinmunizados, lo que tuvo como consecuencia un aumento en la producción de anticuerpos. En un modelo propuesto por los autores, el equilibrio entre Treg y Teff está dictado por el control de monocitos de la expresión de citocinas. La alteración de la actividad de la hemooxidasa-1 (HO-1) de los monocitos sería responsable de una disminución de la IL-12 y un aumento de la secreción de citoquinas IL-10, lo que afectaría la proporción de células Treg/Teff y promovería la producción de anticuerpos por parte de las células B.
Los objetivos del proyecto son evaluar si las diferentes respuestas inmunes humorales a las vacunas oa los aloantígenos eritrocitarios están relacionadas con el tipo de tratamiento administrado a los pacientes con ECF. También pretendemos estudiar si estas diferencias podrían estar relacionadas con diferentes expresiones de HO-1 por parte de los monocitos.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
-
Brussels, Bélgica, 1020
- CHU Brugmann
-
Brussels, Bélgica, 1020
- Huderf
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Niño
- Adulto
- Adulto Mayor
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- Pacientes pediátricos y adultos con enfermedad de células falciformes del HUDERF y CHU-Hospital Brugmann
Criterio de exclusión:
- Ninguno
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Ciencia básica
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Experimental: Pacientes con SCD bajo exanguinotransfusión crónica regular
Pacientes con enfermedad de células falciformes (SCD) bajo transfusiones de intercambio crónicas regulares.
Pacientes pediátricos y adultos de los Hospitales HUDERF y CHU-Brugmann.
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Todos los grupos de pacientes y el grupo de control recibirán la nueva vacuna inactivada recomendada anualmente contra el virus de la influenza A (H1N1).
Prueba de las diferentes respuestas inmunes humorales a las vacunas oa los aloantígenos eritrocitarios.
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Experimental: Pacientes con SCD bajo tratamiento HU solo
Pacientes con enfermedad de células falciformes (SCD) bajo hidroxiurea (HU) sola.
Pacientes pediátricos y adultos de los Hospitales HUDERF y CHU-Brugmann.
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Todos los grupos de pacientes y el grupo de control recibirán la nueva vacuna inactivada recomendada anualmente contra el virus de la influenza A (H1N1).
Prueba de las diferentes respuestas inmunes humorales a las vacunas oa los aloantígenos eritrocitarios.
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Experimental: Pacientes con ECF en tratamiento HU+transfusión esporádica
Pacientes con enfermedad de células falciformes (ECF) bajo tratamiento con hidroxiurea (HU) y transfusiones esporádicas. Pacientes pediátricos y adultos de los Hospitales HUDERF y CHU-Brugmann.
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Todos los grupos de pacientes y el grupo de control recibirán la nueva vacuna inactivada recomendada anualmente contra el virus de la influenza A (H1N1).
Prueba de las diferentes respuestas inmunes humorales a las vacunas oa los aloantígenos eritrocitarios.
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Comparador activo: Grupo de control
Pacientes pediátricos y adultos de los Hospitales HUDERF y CHU-Brugmann.
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Todos los grupos de pacientes y el grupo de control recibirán la nueva vacuna inactivada recomendada anualmente contra el virus de la influenza A (H1N1).
Prueba de las diferentes respuestas inmunes humorales a las vacunas oa los aloantígenos eritrocitarios.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Expresión intracelular de HO-1 en monocitos
Periodo de tiempo: 1 mes después de la vacunación
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La expresión de hemo oxidasa-1 (HO-1) de monocitos intracelulares se medirá mediante citometría de flujo. La expresión de proteína de HO-1 se confirmará mediante transferencia Western.
En paralelo, se utilizará un kit ELISA comercial para evaluar los niveles de HO-1 en el lisado celular de PBMC.
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1 mes después de la vacunación
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Nivel de HO-1 en suero
Periodo de tiempo: 1 mes después de la vacunación
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El nivel de monocitos hemo oxidasa-1 (HO-1) en suero se medirá mediante un kit ELISA comercial
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1 mes después de la vacunación
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Medición de niveles de citoquinas
Periodo de tiempo: 1 mes después de la vacunación
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Los niveles de citocinas proinflamatorias (IL-12) y antiinflamatorias (IL-10) se evaluarán en suero y en sobrenadantes de sangre total estimulados con IL-1 mediante un ensayo ELISA.
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1 mes después de la vacunación
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Identificación de células T reguladoras
Periodo de tiempo: 1 mes después de la vacunación
|
La evaluación de las células Treg en las células mononucleares de sangre periférica (PBMC) se realizará mediante citometría de flujo utilizando anticuerpos monoclonales conjugados con fluorocromo apropiados para los marcadores CD25 y FoxP3.
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1 mes después de la vacunación
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Respuesta inmune a la vacunación
Periodo de tiempo: 1 mes después de la vacunación
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Los títulos de anticuerpos anti-H1N1 en suero después de la vacunación (IgG e IgM) se medirán mediante un kit ELISA.
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1 mes después de la vacunación
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Expresión intracelular de HO-1 en monocitos
Periodo de tiempo: Línea de base: en la vacunación
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La expresión de HO-1 intracelular se medirá mediante citometría de flujo. La expresión de proteína de HO-1 se confirmará mediante transferencia Western.
En paralelo, se utilizará un kit ELISA comercial para evaluar los niveles de HO-1 en el lisado celular de PBMC.
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Línea de base: en la vacunación
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Expresión intracelular de HO-1 en monocitos
Periodo de tiempo: 3 meses después de la vacunación
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La expresión de HO-1 intracelular se medirá mediante citometría de flujo. La expresión de proteína de HO-1 se confirmará mediante transferencia Western.
En paralelo, se utilizará un kit ELISA comercial para evaluar los niveles de HO-1 en el lisado celular de PBMC.
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3 meses después de la vacunación
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Expresión intracelular de HO-1 en monocitos
Periodo de tiempo: 6 meses después de la vacunación
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La expresión de HO-1 intracelular se medirá mediante citometría de flujo. La expresión de proteína de HO-1 se confirmará mediante transferencia Western.
En paralelo, se utilizará un kit ELISA comercial para evaluar los niveles de HO-1 en el lisado celular de PBMC.
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6 meses después de la vacunación
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Nivel de HO-1 en suero
Periodo de tiempo: Línea de base: en la vacunación
|
El nivel de HO-1 en suero se medirá con un kit ELISA comercial
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Línea de base: en la vacunación
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|
Nivel de HO-1 en suero
Periodo de tiempo: 3 meses después de la vacunación
|
El nivel de HO-1 en suero se medirá con un kit ELISA comercial
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3 meses después de la vacunación
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Nivel de HO-1 en suero
Periodo de tiempo: 6 meses después de la vacunación
|
El nivel de HO-1 en suero se medirá con un kit ELISA comercial
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6 meses después de la vacunación
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Medición de niveles de citoquinas
Periodo de tiempo: Línea de base: en la vacunación
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Los niveles de citocinas proinflamatorias (IL-12) y antiinflamatorias (IL-10) se evaluarán en suero y en sobrenadantes de sangre total estimulados con IL-1 mediante un ensayo ELISA.
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Línea de base: en la vacunación
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Medición de niveles de citoquinas
Periodo de tiempo: 3 meses después de la vacunación
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Los niveles de citocinas proinflamatorias (IL-12) y antiinflamatorias (IL-10) se evaluarán en suero y en sobrenadantes de sangre total estimulados con IL-1 mediante un ensayo ELISA.
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3 meses después de la vacunación
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Medición de niveles de citoquinas
Periodo de tiempo: 6 meses después de la vacunación
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Los niveles de citocinas proinflamatorias (IL-12) y antiinflamatorias (IL-10) se evaluarán en suero y en sobrenadantes de sangre total estimulados con IL-1 mediante un ensayo ELISA.
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6 meses después de la vacunación
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Identificación de células T reguladoras
Periodo de tiempo: Línea de base: en la vacunación
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La evaluación de las células Treg en PBMC se realizará mediante citometría de flujo utilizando anticuerpos monoclonales conjugados con fluorocromo apropiados para los marcadores CD25 y FoxP3.
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Línea de base: en la vacunación
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Identificación de células T reguladoras
Periodo de tiempo: 3 meses después de la vacunación
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La evaluación de las células Treg en PBMC se realizará mediante citometría de flujo utilizando anticuerpos monoclonales conjugados con fluorocromo apropiados para los marcadores CD25 y FoxP3.
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3 meses después de la vacunación
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Identificación de células T reguladoras
Periodo de tiempo: 6 meses después de la vacunación
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La evaluación de las células Treg en PBMC se realizará mediante citometría de flujo utilizando anticuerpos monoclonales conjugados con fluorocromo apropiados para los marcadores CD25 y FoxP3.
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6 meses después de la vacunación
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Respuesta inmune a la vacunación
Periodo de tiempo: Línea de base: en la vacunación
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Los títulos de anticuerpos anti-H1N1 en suero después de la vacunación (IgG e IgM) se medirán mediante un kit ELISA.
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Línea de base: en la vacunación
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Respuesta inmune a la vacunación
Periodo de tiempo: 3 meses después de la vacunación
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Los títulos de anticuerpos anti-H1N1 en suero después de la vacunación (IgG e IgM) se medirán mediante un kit ELISA.
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3 meses después de la vacunación
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Respuesta inmune a la vacunación
Periodo de tiempo: 6 meses después de la vacunación
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Los títulos de anticuerpos anti-H1N1 en suero después de la vacunación (IgG e IgM) se medirán mediante un kit ELISA.
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6 meses después de la vacunación
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Francis Corazza, MD, CHU Brugmann
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Yawn BP, Buchanan GR, Afenyi-Annan AN, Ballas SK, Hassell KL, James AH, Jordan L, Lanzkron SM, Lottenberg R, Savage WJ, Tanabe PJ, Ware RE, Murad MH, Goldsmith JC, Ortiz E, Fulwood R, Horton A, John-Sowah J. Management of sickle cell disease: summary of the 2014 evidence-based report by expert panel members. JAMA. 2014 Sep 10;312(10):1033-48. doi: 10.1001/jama.2014.10517. Erratum In: JAMA. 2014 Nov 12;312(18):1932. JAMA. 2015 Feb 17;313(7):729.
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- Yazdanbakhsh K. Mechanisms of sickle cell alloimmunization. Transfus Clin Biol. 2015 Aug;22(3):178-81. doi: 10.1016/j.tracli.2015.05.005. Epub 2015 Jun 6.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Actual)
Finalización del estudio (Actual)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
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Otros números de identificación del estudio
- CHUB-HO1 sickle cell
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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