Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Monocytisk uttrykk for hemoksidase-1 (HO-1) hos sigdcellepasienter og korrelasjon med den humorale immunresponsen på vaksine og med allo-immunisering.

17. oktober 2018 oppdatert av: Francis Corazza

Monocytisk ekspresjon av hemoksidase-1 (HO-1) hos sigdcellepasienter og korrelasjon med den humorale immunresponsen på vaksine og med allo-immunisering

Sigdcellesykdom (SCD) er en autosomal recessiv lidelse som skyldes en substitusjon i β-kjeden av hemoglobin (Hb) som får hemoglobin S til å polymerisere når det deoksygeneres. SCD-pasienter har immunabnormiteter som alltid har blitt tilskrevet funksjonell aspleni. Det er nå blitt anerkjent at pasienter med SCD har en pro-inflammatorisk tilstand med endret immunsystemaktivering som bidrar til patologien til SCD. Økte nivåer av nøytrofiler, monocytter eller cytokiner er rapportert hos SCD-pasienter.

SCD er assosiert med mange akutte og kroniske komplikasjoner som krever umiddelbar støtte. Faktiske sterkt anbefalte terapier inkluderer kroniske blodtransfusjoner (CT) og hydroksyurea (HU). I tillegg anbefales episodiske transfusjoner og brukes ofte for å håndtere mange akutte SCD-komplikasjoner. Det er sterke bevis for å støtte bruken av HU hos voksne med 3 eller flere alvorlige vaso-okklusive kriser i løpet av en 12-måneders periode, med SCD-smerter eller kroniske anemi, eller med alvorlige eller tilbakevendende episoder av akutt brystsyndrom. HU-bruk er nå også vanlig hos barn med SCD. Noen pasienter får kronisk månedlig RBC-transfusjon med mål om å redusere andelen HbS til < 30 %. Langsiktige RBC-transfusjoner forebygger og behandler komplikasjoner av SCD som reduserer risikoen for hjerneslag og forekomsten av akutt brystsyndrom (ACS).

Terapeutiske komplikasjoner, som alloimmunisering mot RBC hos 20-50 % av pasientene eller hematopoietisk stamcelletransplantasjon (HSCT) graftavstøtning, utgjør et immunbasert klinisk problem ved SCD. Dårlig forstått RBC-alloimmunisering er ansvarlig for alvorlig hemolytisk transfusjonsreaksjon assosiert med alvorlig dødelighet og sykelighet som ligger til grunn for behovet for en bedre forståelse av immunologien til SCD for å forbedre SCD-transfusjonsstøtte/-utfall. Lite bevis eksisterer om HU-effekter på immunfunksjoner ved SCD. HU-behandling ser ikke ut til å ha skadelige effekter på immunfunksjonen og ser ut til å redusere det unormalt forhøyede antallet totale WBC og lymfocytter, mens CT ikke gjør det.

Pasienter med SCD har høyere risiko for infeksjoner og profylaktisk vaksinasjon anbefales sterkt. Nyere data tyder på at vaksinasjonsrespons på pneumokokkantigener hos SCD-pasienter er identisk med sunn kontroll, mens kontroverser angår stabiliteten til immunbeskyttelsen etter vaksinasjon av SCD-pasienter. Antistoffnivået falt i løpet av året og behovet for hyppigere vaksinasjon hos SCD-pasienter bør undersøkes. Foreløpig er det ingen bevis på om HU kan forstyrre pneumokokkimmunrespons. Purohit viste at immunrespons mot inaktivert influensa A (H1N1) virusvaksine ble endret hos pasienter med SCD som fikk CT, men lite er kjent om immunrespons på vaksinasjon hos pasienter med SCD som fikk HU.

Nyere data tyder på at ikke bare inflammatorisk status, men også humoral immunrespons mot antigener hos SCD-pasienter kan variere avhengig av behandling. Yazdanbakhsh rapporterte en ubalanse mellom regulatorisk T-celle (Treg) og effektor-T-celle (Teff) hos alloimmuniserte SCD-pasienter med som konsekvens en økning i antistoffproduksjon. I en modell foreslått av forfatterne, er balansen mellom Treg og Teff diktert av monocyttkontrollen av cytokinekspresjon. Endret aktivitet av monocytthemoksidase-1 (HO-1) vil være ansvarlig for en reduksjon i IL-12 og en økning i IL-10 cytokinsekresjon som påvirker Treg/Teff-celleforholdet og fremmer antistoffproduksjon av B-celler.

Målet med prosjektet er å vurdere om ulike humorale immunresponser mot vaksiner eller erytrocyttalloantigener er relatert til typen behandling som gis til pasienter med SCD. Vi tar også sikte på å studere om disse forskjellene kan være relatert til forskjellige uttrykk for HO-1 av monocytter.

Studieoversikt

Studietype

Intervensjonell

Registrering (Faktiske)

102

Fase

  • Ikke aktuelt

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiesteder

      • Brussels, Belgia, 1020
        • CHU Brugmann
      • Brussels, Belgia, 1020
        • Huderf

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

  • Barn
  • Voksen
  • Eldre voksen

Tar imot friske frivillige

Nei

Kjønn som er kvalifisert for studier

Alle

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

- Pediatriske og voksne pasienter med sigdcellesykdom fra HUDERF og CHU-Brugmann Hospital

Ekskluderingskriterier:

  • Ingen

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Primært formål: Grunnvitenskap
  • Tildeling: Ikke-randomisert
  • Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
  • Masking: Ingen (Open Label)

Våpen og intervensjoner

Deltakergruppe / Arm
Intervensjon / Behandling
Eksperimentell: SCD-pasienter under regelmessig kronisk utvekslingstransfusjon
Sigdcellesykdomspasienter (SCD) under regelmessige kroniske utvekslingstransfusjoner. Pediatriske og voksne pasienter fra HUDERF og CHU-Brugmann sykehus.
Alle pasientgrupper og kontrollgruppen vil motta den nye årlig anbefalte inaktiverte influensa A (H1N1) virusvaksinen.
Testing av de forskjellige humorale immunresponsene mot vaksiner eller erytrocyttalloantigener.
Eksperimentell: SCD-pasienter under HU-behandling alene
Sigdcellesykdomspasienter (SCD) under hydroksyurea (HU) alene. Pediatriske og voksne pasienter fra HUDERF og CHU-Brugmann sykehus.
Alle pasientgrupper og kontrollgruppen vil motta den nye årlig anbefalte inaktiverte influensa A (H1N1) virusvaksinen.
Testing av de forskjellige humorale immunresponsene mot vaksiner eller erytrocyttalloantigener.
Eksperimentell: SCD-pasienter under HU-behandling+sporadisk transfusjon
Sigdcellesykdomspasienter (SCD) under hydroksyurea (HU) og mottar sporadiske transfusjoner. Pediatriske og voksne pasienter fra HUDERF og CHU-Brugmann sykehus.
Alle pasientgrupper og kontrollgruppen vil motta den nye årlig anbefalte inaktiverte influensa A (H1N1) virusvaksinen.
Testing av de forskjellige humorale immunresponsene mot vaksiner eller erytrocyttalloantigener.
Aktiv komparator: Kontrollgruppe
Pediatriske og voksne pasienter fra HUDERF og CHU-Brugmann sykehus.
Alle pasientgrupper og kontrollgruppen vil motta den nye årlig anbefalte inaktiverte influensa A (H1N1) virusvaksinen.
Testing av de forskjellige humorale immunresponsene mot vaksiner eller erytrocyttalloantigener.

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Intracellulært HO-1 uttrykk i monocytter
Tidsramme: 1 måned etter vaksinasjon
Intracellulær monocytt hem oksidase-1 (HO-1) ekspresjon vil bli målt ved flowcytometri. Proteinekspresjonen av HO-1 vil bli bekreftet ved Western blot. Et kommersielt ELISA-sett vil bli brukt parallelt for å vurdere HO-1-nivåer i PBMC-cellelysat.
1 måned etter vaksinasjon
HO-1 nivå i serum
Tidsramme: 1 måned etter vaksinasjon
Monocytt heme oxidase-1 (HO-1) nivå i serum vil bli målt med et kommersielt ELISA-sett
1 måned etter vaksinasjon
Måling av cytokinnivåer
Tidsramme: 1 måned etter vaksinasjon
Pro-inflammatorisk cytokin (IL-12) og anti-inflammatorisk cytokin (IL-10) nivåer vil bli evaluert i serum og i IL-1 stimulerte fullblodsupernatanter ved bruk av en ELISA-analyse.
1 måned etter vaksinasjon
Identifikasjon av T-regulatoriske celler
Tidsramme: 1 måned etter vaksinasjon
Evaluering av Treg-celler i perifert blod mononukleære celler (PBMC) vil bli utført ved flowcytometri ved bruk av passende fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer for CD25- og FoxP3-markører
1 måned etter vaksinasjon
Immunrespons på vaksinasjon
Tidsramme: 1 måned etter vaksinasjon
Post-vaksinasjon serum H1N1 antistoff titere (IgG og IgM) vil bli målt med et ELISA-sett
1 måned etter vaksinasjon

Sekundære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Intracellulært HO-1 uttrykk i monocytter
Tidsramme: Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Intracellulært HO-1-ekspresjon vil bli målt ved flowcytometri. Proteinekspresjonen av HO-1 vil bli bekreftet ved Western blot. Et kommersielt ELISA-sett vil bli brukt parallelt for å vurdere HO-1-nivåer i PBMC-cellelysat.
Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Intracellulært HO-1 uttrykk i monocytter
Tidsramme: 3 måneder etter vaksinasjon
Intracellulært HO-1-ekspresjon vil bli målt ved flowcytometri. Proteinekspresjonen av HO-1 vil bli bekreftet ved Western blot. Et kommersielt ELISA-sett vil bli brukt parallelt for å vurdere HO-1-nivåer i PBMC-cellelysat.
3 måneder etter vaksinasjon
Intracellulært HO-1 uttrykk i monocytter
Tidsramme: 6 måneder etter vaksinasjon
Intracellulært HO-1-ekspresjon vil bli målt ved flowcytometri. Proteinekspresjonen av HO-1 vil bli bekreftet ved Western blot. Et kommersielt ELISA-sett vil bli brukt parallelt for å vurdere HO-1-nivåer i PBMC-cellelysat.
6 måneder etter vaksinasjon
HO-1 nivå i serum
Tidsramme: Utgangspunkt: ved vaksinasjon
HO-1-nivået i serum vil bli målt med et kommersielt ELISA-sett
Utgangspunkt: ved vaksinasjon
HO-1 nivå i serum
Tidsramme: 3 måneder etter vaksinasjon
HO-1-nivået i serum vil bli målt med et kommersielt ELISA-sett
3 måneder etter vaksinasjon
HO-1 nivå i serum
Tidsramme: 6 måneder etter vaksinasjon
HO-1-nivået i serum vil bli målt med et kommersielt ELISA-sett
6 måneder etter vaksinasjon
Måling av cytokinnivåer
Tidsramme: Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Pro-inflammatorisk cytokin (IL-12) og anti-inflammatorisk cytokin (IL-10) nivåer vil bli evaluert i serum og i IL-1 stimulerte fullblodsupernatanter ved bruk av en ELISA-analyse.
Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Måling av cytokinnivåer
Tidsramme: 3 måneder etter vaksinasjon
Pro-inflammatorisk cytokin (IL-12) og anti-inflammatorisk cytokin (IL-10) nivåer vil bli evaluert i serum og i IL-1 stimulerte fullblodsupernatanter ved bruk av en ELISA-analyse.
3 måneder etter vaksinasjon
Måling av cytokinnivåer
Tidsramme: 6 måneder etter vaksinasjon
Pro-inflammatorisk cytokin (IL-12) og anti-inflammatorisk cytokin (IL-10) nivåer vil bli evaluert i serum og i IL-1 stimulerte fullblodsupernatanter ved bruk av en ELISA-analyse.
6 måneder etter vaksinasjon
Identifikasjon av T-regulatoriske celler
Tidsramme: Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Evaluering av Treg-celler i PBMC vil bli utført ved flowcytometri ved bruk av passende fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer for CD25- og FoxP3-markører
Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Identifikasjon av T-regulatoriske celler
Tidsramme: 3 måneder etter vaksinasjon
Evaluering av Treg-celler i PBMC vil bli utført ved flowcytometri ved bruk av passende fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer for CD25- og FoxP3-markører
3 måneder etter vaksinasjon
Identifikasjon av T-regulatoriske celler
Tidsramme: 6 måneder etter vaksinasjon
Evaluering av Treg-celler i PBMC vil bli utført ved flowcytometri ved bruk av passende fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer for CD25- og FoxP3-markører
6 måneder etter vaksinasjon
Immunrespons på vaksinasjon
Tidsramme: Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Post-vaksinasjon serum H1N1 antistoff titere (IgG og IgM) vil bli målt med et ELISA-sett
Utgangspunkt: ved vaksinasjon
Immunrespons på vaksinasjon
Tidsramme: 3 måneder etter vaksinasjon
Post-vaksinasjon serum H1N1 antistoff titere (IgG og IgM) vil bli målt med et ELISA-sett
3 måneder etter vaksinasjon
Immunrespons på vaksinasjon
Tidsramme: 6 måneder etter vaksinasjon
Post-vaksinasjon serum H1N1 antistoff titere (IgG og IgM) vil bli målt med et ELISA-sett
6 måneder etter vaksinasjon

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Sponsor

Etterforskere

  • Hovedetterforsker: Francis Corazza, MD, CHU Brugmann

Publikasjoner og nyttige lenker

Den som er ansvarlig for å legge inn informasjon om studien leverer frivillig disse publikasjonene. Disse kan handle om alt relatert til studiet.

Generelle publikasjoner

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

1. oktober 2016

Primær fullføring (Faktiske)

1. oktober 2018

Studiet fullført (Faktiske)

1. oktober 2018

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

7. april 2017

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

7. april 2017

Først lagt ut (Faktiske)

13. april 2017

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)

18. oktober 2018

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

17. oktober 2018

Sist bekreftet

1. oktober 2018

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Plan for individuelle deltakerdata (IPD)

Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?

NEI

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Kliniske studier på Sigdcellesykdom

Kliniske studier på Inaktivert influensa A (H1N1) virusvaksine

Abonnere