- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT03111589
Monozytenexpression von Hämoxidase-1 (HO-1) bei Sichelzellpatienten und Korrelation mit der humoralen Immunantwort auf Impfstoff und mit Allo-Immunisierung.
Monozytenexpression von Hämoxidase-1 (HO-1) bei Sichelzellpatienten und Korrelation mit der humoralen Immunantwort auf Impfstoff und mit Allo-Immunisierung
Die Sichelzellkrankheit (SCD) ist eine autosomal-rezessive Erkrankung, die aus einer Substitution in der β-Kette von Hämoglobin (Hb) resultiert, die eine Polymerisation von Hämoglobin S verursacht, wenn es desoxygeniert ist. SCD-Patienten weisen Immunanomalien auf, die immer einer funktionellen Asplenie zugeschrieben wurden. Es wird jetzt anerkannt, dass Patienten mit SCD einen entzündungsfördernden Zustand mit veränderter Aktivierung des Immunsystems haben, was zur Pathologie von SCD beiträgt. Bei SCD-Patienten wurde über erhöhte Spiegel von Neutrophilen, Monozyten oder Zytokinen berichtet.
SCD ist mit vielen akuten und chronischen Komplikationen verbunden, die sofortige Unterstützung erfordern. Derzeit dringend empfohlene Therapien umfassen chronische Bluttransfusionen (CT) und Hydroxyharnstoff (HU). Darüber hinaus werden episodische Transfusionen empfohlen und häufig verwendet, um viele akute SCD-Komplikationen zu behandeln. Es gibt starke Hinweise, die die Anwendung von HU bei Erwachsenen mit 3 oder mehr schweren vasookklusiven Krisen während eines Zeitraums von 12 Monaten mit SCD-Schmerzen oder chronisch unterstützen Anämie oder mit schweren oder wiederkehrenden Episoden eines akuten Thoraxsyndroms. Heutzutage ist die Anwendung von HU auch bei Kindern mit SCD üblich. Einige Patienten erhalten chronische monatliche Erythrozytentransfusionen mit dem Ziel, den HbS-Anteil auf < 30 % zu senken. Langfristige Erythrozytentransfusionen verhindern und behandeln Komplikationen von SCD, wodurch das Schlaganfallrisiko und die Inzidenz des akuten Brustsyndroms (ACS) verringert werden.
Therapeutische Komplikationen wie die Alloimmunisierung gegen Erythrozyten bei 20-50 % der Patienten oder die Abstoßung eines hämatopoetischen Stammzelltransplantationstransplantats (HSCT) stellen ein immunbasiertes klinisches Problem bei SCD dar. Eine unzureichend verstandene Erythrozyten-Alloimmunisierung ist verantwortlich für schwerwiegende hämolytische Transfusionsreaktionen, die mit schwerer Mortalität und Morbidität verbunden sind, was die Notwendigkeit eines besseren Verständnisses der Immunologie von SCD begründet, um die Unterstützung/das Ergebnis von SCD-Transfusionen zu verbessern. Es gibt nur wenige Beweise für die Auswirkungen von HU auf die Immunfunktionen bei SCD. Die HU-Behandlung scheint keine nachteiligen Auswirkungen auf die Immunfunktion zu haben und scheint die abnormal erhöhte Anzahl der gesamten WBC und Lymphozyten zu verringern, während dies bei der CT nicht der Fall ist.
Patienten mit SCD haben ein höheres Infektionsrisiko und eine prophylaktische Impfung wird dringend empfohlen. Jüngste Daten deuten darauf hin, dass die Impfreaktion auf Pneumokokken-Antigene bei SCD-Patienten identisch mit der gesunden Kontrollgruppe ist, während Kontroversen die Stabilität des Immunschutzes nach der Impfung von SCD-Patienten betreffen. Die Antikörperspiegel gingen im Laufe des Jahres zurück, und die Notwendigkeit häufigerer Impfungen bei SCD-Patienten sollte untersucht werden. Derzeit gibt es keine Hinweise darauf, ob HU die Immunantwort von Pneumokokken beeinträchtigen könnte. Purohit zeigte, dass die Immunantwort auf den inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virus-Impfstoff bei Patienten mit SCD, die CT erhielten, verändert war, aber es ist wenig über die Immunantwort auf die Impfung bei Patienten mit SCD, die HU erhielten, bekannt.
Jüngste Daten deuten darauf hin, dass nicht nur der Entzündungsstatus, sondern auch die humorale Immunantwort auf Antigene bei SCD-Patienten je nach Behandlung unterschiedlich sein kann. Yazdanbakhsh berichtete über ein Ungleichgewicht zwischen regulatorischen T-Zellen (Treg) und Effektor-T-Zellen (Teff) bei alloimmunisierten SCD-Patienten mit der Folge einer erhöhten Antikörperproduktion. In einem von den Autoren vorgeschlagenen Modell wird das Gleichgewicht zwischen Treg und Teff durch die Monozytenkontrolle der Zytokinexpression bestimmt. Eine veränderte Aktivität der Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1) wäre für eine Abnahme der IL-12- und eine Zunahme der IL-10-Zytokinesekretion verantwortlich, was sich auf das Verhältnis von Treg/Teff-Zellen auswirkt und die Antikörperproduktion durch B-Zellen fördert.
Die Ziele des Projekts sind die Bewertung, ob unterschiedliche humorale Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene mit der Art der Behandlung zusammenhängen, die Patienten mit SCD verabreicht wird. Wir wollen auch untersuchen, ob diese Unterschiede mit unterschiedlichen Expressionen von HO-1 durch Monozyten zusammenhängen könnten.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
-
Brussels, Belgien, 1020
- CHU Brugmann
-
Brussels, Belgien, 1020
- Huderf
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Kind
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Pädiatrische und erwachsene Patienten mit Sichelzellanämie aus dem HUDERF und CHU-Brugmann Krankenhaus
Ausschlusskriterien:
- Keiner
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Experimental: SCD-Patienten unter regelmäßiger chronischer Austauschtransfusion
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter regelmäßiger chronischer Austauschtransfusion.
Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
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Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
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Experimental: SCD-Patienten unter alleiniger HU-Behandlung
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter Hydroxyharnstoff (HU) allein.
Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
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Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
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Experimental: SCD-Patienten unter HU-Behandlung + sporadischer Transfusion
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter Hydroxyharnstoff (HU) und erhalten sporadische Transfusionen. Pädiatrische und erwachsene Patienten aus den Krankenhäusern HUDERF und CHU-Brugmann.
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Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
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Aktiver Komparator: Kontrollgruppe
Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
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Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
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Die intrazelluläre Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1)-Expression wird durch Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt.
Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
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1 Monat nach der Impfung
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HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
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Der Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1)-Spiegel im Serum wird mit einem handelsüblichen ELISA-Kit gemessen
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1 Monat nach der Impfung
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Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
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Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
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1 Monat nach der Impfung
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Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
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Die Bewertung von Treg-Zellen in peripheren mononukleären Blutzellen (PBMC) wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
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1 Monat nach der Impfung
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Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
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H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
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1 Monat nach der Impfung
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
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Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt.
Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
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Baseline: bei der Impfung
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Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
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Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt.
Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
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3 Monate nach der Impfung
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Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
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Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt.
Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
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6 Monate nach der Impfung
|
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HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
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Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
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Baseline: bei der Impfung
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HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
|
Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
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3 Monate nach der Impfung
|
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HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
|
Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
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6 Monate nach der Impfung
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Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
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Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
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Baseline: bei der Impfung
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Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
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Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
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3 Monate nach der Impfung
|
|
Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
|
Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
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6 Monate nach der Impfung
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Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
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Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
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Baseline: bei der Impfung
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Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
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Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
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3 Monate nach der Impfung
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Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
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Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
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6 Monate nach der Impfung
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Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
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H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
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Baseline: bei der Impfung
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Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
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H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
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3 Monate nach der Impfung
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Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
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H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
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6 Monate nach der Impfung
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Francis Corazza, MD, CHU Brugmann
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Yawn BP, Buchanan GR, Afenyi-Annan AN, Ballas SK, Hassell KL, James AH, Jordan L, Lanzkron SM, Lottenberg R, Savage WJ, Tanabe PJ, Ware RE, Murad MH, Goldsmith JC, Ortiz E, Fulwood R, Horton A, John-Sowah J. Management of sickle cell disease: summary of the 2014 evidence-based report by expert panel members. JAMA. 2014 Sep 10;312(10):1033-48. doi: 10.1001/jama.2014.10517. Erratum In: JAMA. 2014 Nov 12;312(18):1932. JAMA. 2015 Feb 17;313(7):729.
- Chintagari NR, Nguyen J, Belcher JD, Vercellotti GM, Alayash AI. Haptoglobin attenuates hemoglobin-induced heme oxygenase-1 in renal proximal tubule cells and kidneys of a mouse model of sickle cell disease. Blood Cells Mol Dis. 2015 Mar;54(3):302-6. doi: 10.1016/j.bcmd.2014.12.001. Epub 2014 Dec 22.
- Cunnington AJ, Njie M, Correa S, Takem EN, Riley EM, Walther M. Prolonged neutrophil dysfunction after Plasmodium falciparum malaria is related to hemolysis and heme oxygenase-1 induction. J Immunol. 2012 Dec 1;189(11):5336-46. doi: 10.4049/jimmunol.1201028. Epub 2012 Oct 24.
- De Montalembert M, Abboud MR, Fiquet A, Inati A, Lebensburger JD, Kaddah N, Mokhtar G, Piga A, Halasa N, Inusa B, Rees DC, Heath PT, Telfer P, Driscoll C, Al Hajjar S, Tozzi A, Jiang Q, Emini EA, Gruber WC, Gurtman A, Scott DA. 13-valent pneumococcal conjugate vaccine (PCV13) is immunogenic and safe in children 6-17 years of age with sickle cell disease previously vaccinated with 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine (PPSV23): Results of a phase 3 study. Pediatr Blood Cancer. 2015 Aug;62(8):1427-36. doi: 10.1002/pbc.25502. Epub 2015 Mar 23. Erratum In: Pediatr Blood Cancer. 2019 Feb;66(2):e27554.
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- Estcourt LJ, Fortin PM, Hopewell S, Trivella M, Wang WC. Blood transfusion for preventing primary and secondary stroke in people with sickle cell disease. Cochrane Database Syst Rev. 2017 Jan 17;1(1):CD003146. doi: 10.1002/14651858.CD003146.pub3.
- Yazdanbakhsh K. Mechanisms of sickle cell alloimmunization. Transfus Clin Biol. 2015 Aug;22(3):178-81. doi: 10.1016/j.tracli.2015.05.005. Epub 2015 Jun 6.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
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- CHUB-HO1 sickle cell
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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