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Monozytenexpression von Hämoxidase-1 (HO-1) bei Sichelzellpatienten und Korrelation mit der humoralen Immunantwort auf Impfstoff und mit Allo-Immunisierung.

17. Oktober 2018 aktualisiert von: Francis Corazza

Monozytenexpression von Hämoxidase-1 (HO-1) bei Sichelzellpatienten und Korrelation mit der humoralen Immunantwort auf Impfstoff und mit Allo-Immunisierung

Die Sichelzellkrankheit (SCD) ist eine autosomal-rezessive Erkrankung, die aus einer Substitution in der β-Kette von Hämoglobin (Hb) resultiert, die eine Polymerisation von Hämoglobin S verursacht, wenn es desoxygeniert ist. SCD-Patienten weisen Immunanomalien auf, die immer einer funktionellen Asplenie zugeschrieben wurden. Es wird jetzt anerkannt, dass Patienten mit SCD einen entzündungsfördernden Zustand mit veränderter Aktivierung des Immunsystems haben, was zur Pathologie von SCD beiträgt. Bei SCD-Patienten wurde über erhöhte Spiegel von Neutrophilen, Monozyten oder Zytokinen berichtet.

SCD ist mit vielen akuten und chronischen Komplikationen verbunden, die sofortige Unterstützung erfordern. Derzeit dringend empfohlene Therapien umfassen chronische Bluttransfusionen (CT) und Hydroxyharnstoff (HU). Darüber hinaus werden episodische Transfusionen empfohlen und häufig verwendet, um viele akute SCD-Komplikationen zu behandeln. Es gibt starke Hinweise, die die Anwendung von HU bei Erwachsenen mit 3 oder mehr schweren vasookklusiven Krisen während eines Zeitraums von 12 Monaten mit SCD-Schmerzen oder chronisch unterstützen Anämie oder mit schweren oder wiederkehrenden Episoden eines akuten Thoraxsyndroms. Heutzutage ist die Anwendung von HU auch bei Kindern mit SCD üblich. Einige Patienten erhalten chronische monatliche Erythrozytentransfusionen mit dem Ziel, den HbS-Anteil auf < 30 % zu senken. Langfristige Erythrozytentransfusionen verhindern und behandeln Komplikationen von SCD, wodurch das Schlaganfallrisiko und die Inzidenz des akuten Brustsyndroms (ACS) verringert werden.

Therapeutische Komplikationen wie die Alloimmunisierung gegen Erythrozyten bei 20-50 % der Patienten oder die Abstoßung eines hämatopoetischen Stammzelltransplantationstransplantats (HSCT) stellen ein immunbasiertes klinisches Problem bei SCD dar. Eine unzureichend verstandene Erythrozyten-Alloimmunisierung ist verantwortlich für schwerwiegende hämolytische Transfusionsreaktionen, die mit schwerer Mortalität und Morbidität verbunden sind, was die Notwendigkeit eines besseren Verständnisses der Immunologie von SCD begründet, um die Unterstützung/das Ergebnis von SCD-Transfusionen zu verbessern. Es gibt nur wenige Beweise für die Auswirkungen von HU auf die Immunfunktionen bei SCD. Die HU-Behandlung scheint keine nachteiligen Auswirkungen auf die Immunfunktion zu haben und scheint die abnormal erhöhte Anzahl der gesamten WBC und Lymphozyten zu verringern, während dies bei der CT nicht der Fall ist.

Patienten mit SCD haben ein höheres Infektionsrisiko und eine prophylaktische Impfung wird dringend empfohlen. Jüngste Daten deuten darauf hin, dass die Impfreaktion auf Pneumokokken-Antigene bei SCD-Patienten identisch mit der gesunden Kontrollgruppe ist, während Kontroversen die Stabilität des Immunschutzes nach der Impfung von SCD-Patienten betreffen. Die Antikörperspiegel gingen im Laufe des Jahres zurück, und die Notwendigkeit häufigerer Impfungen bei SCD-Patienten sollte untersucht werden. Derzeit gibt es keine Hinweise darauf, ob HU die Immunantwort von Pneumokokken beeinträchtigen könnte. Purohit zeigte, dass die Immunantwort auf den inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virus-Impfstoff bei Patienten mit SCD, die CT erhielten, verändert war, aber es ist wenig über die Immunantwort auf die Impfung bei Patienten mit SCD, die HU erhielten, bekannt.

Jüngste Daten deuten darauf hin, dass nicht nur der Entzündungsstatus, sondern auch die humorale Immunantwort auf Antigene bei SCD-Patienten je nach Behandlung unterschiedlich sein kann. Yazdanbakhsh berichtete über ein Ungleichgewicht zwischen regulatorischen T-Zellen (Treg) und Effektor-T-Zellen (Teff) bei alloimmunisierten SCD-Patienten mit der Folge einer erhöhten Antikörperproduktion. In einem von den Autoren vorgeschlagenen Modell wird das Gleichgewicht zwischen Treg und Teff durch die Monozytenkontrolle der Zytokinexpression bestimmt. Eine veränderte Aktivität der Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1) wäre für eine Abnahme der IL-12- und eine Zunahme der IL-10-Zytokinesekretion verantwortlich, was sich auf das Verhältnis von Treg/Teff-Zellen auswirkt und die Antikörperproduktion durch B-Zellen fördert.

Die Ziele des Projekts sind die Bewertung, ob unterschiedliche humorale Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene mit der Art der Behandlung zusammenhängen, die Patienten mit SCD verabreicht wird. Wir wollen auch untersuchen, ob diese Unterschiede mit unterschiedlichen Expressionen von HO-1 durch Monozyten zusammenhängen könnten.

Studienübersicht

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

102

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

      • Brussels, Belgien, 1020
        • CHU Brugmann
      • Brussels, Belgien, 1020
        • Huderf

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Kind
  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Alle

Beschreibung

Einschlusskriterien:

- Pädiatrische und erwachsene Patienten mit Sichelzellanämie aus dem HUDERF und CHU-Brugmann Krankenhaus

Ausschlusskriterien:

  • Keiner

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
  • Zuteilung: Nicht randomisiert
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Keine (Offenes Etikett)

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Experimental: SCD-Patienten unter regelmäßiger chronischer Austauschtransfusion
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter regelmäßiger chronischer Austauschtransfusion. Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
Experimental: SCD-Patienten unter alleiniger HU-Behandlung
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter Hydroxyharnstoff (HU) allein. Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
Experimental: SCD-Patienten unter HU-Behandlung + sporadischer Transfusion
Patienten mit Sichelzellanämie (SCD) unter Hydroxyharnstoff (HU) und erhalten sporadische Transfusionen. Pädiatrische und erwachsene Patienten aus den Krankenhäusern HUDERF und CHU-Brugmann.
Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.
Aktiver Komparator: Kontrollgruppe
Pädiatrische und erwachsene Patienten der Kliniken HUDERF und CHU-Brugmann.
Alle Patientengruppen und die Kontrollgruppe erhalten den neuen jährlich empfohlenen inaktivierten Influenza-A (H1N1)-Virusimpfstoff.
Testung der verschiedenen humoralen Immunantworten auf Impfstoffe oder auf Erythrozyten-Alloantigene.

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
Die intrazelluläre Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1)-Expression wird durch Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt. Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
1 Monat nach der Impfung
HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
Der Monozyten-Hämoxidase-1 (HO-1)-Spiegel im Serum wird mit einem handelsüblichen ELISA-Kit gemessen
1 Monat nach der Impfung
Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
1 Monat nach der Impfung
Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
Die Bewertung von Treg-Zellen in peripheren mononukleären Blutzellen (PBMC) wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
1 Monat nach der Impfung
Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 1 Monat nach der Impfung
H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
1 Monat nach der Impfung

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt. Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
Baseline: bei der Impfung
Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt. Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
3 Monate nach der Impfung
Intrazelluläre HO-1-Expression in Monozyten
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
Die intrazelluläre HO-1-Expression wird mittels Durchflusszytometrie gemessen. Die Proteinexpression von HO-1 wird durch Western Blot bestätigt. Ein kommerzieller ELISA-Kit wird parallel verwendet, um die HO-1-Spiegel im PBMC-Zelllysat zu bestimmen.
6 Monate nach der Impfung
HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
Baseline: bei der Impfung
HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
3 Monate nach der Impfung
HO-1-Spiegel im Serum
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
Der HO-1-Spiegel im Serum wird mit einem kommerziellen ELISA-Kit gemessen
6 Monate nach der Impfung
Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
Baseline: bei der Impfung
Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
3 Monate nach der Impfung
Messung des Zytokinspiegels
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
Proinflammatorische Zytokine (IL-12) und entzündungshemmende Zytokine (IL-10) werden im Serum und in IL-1-stimulierten Vollblutüberständen unter Verwendung eines ELISA-Assays bewertet.
6 Monate nach der Impfung
Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
Baseline: bei der Impfung
Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
3 Monate nach der Impfung
Identifizierung regulatorischer T-Zellen
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
Die Bewertung von Treg-Zellen in PBMC wird durch Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Fluorochrom-konjugierter monoklonaler Antikörper für CD25- und FoxP3-Marker durchgeführt
6 Monate nach der Impfung
Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: Baseline: bei der Impfung
H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
Baseline: bei der Impfung
Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 3 Monate nach der Impfung
H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
3 Monate nach der Impfung
Immunantwort auf Impfung
Zeitfenster: 6 Monate nach der Impfung
H1N1-Antikörpertiter (IgG und IgM) im Serum nach der Impfung werden mit einem ELISA-Kit gemessen
6 Monate nach der Impfung

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Sponsor

Ermittler

  • Hauptermittler: Francis Corazza, MD, CHU Brugmann

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Allgemeine Veröffentlichungen

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

1. Oktober 2016

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

1. Oktober 2018

Studienabschluss (Tatsächlich)

1. Oktober 2018

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

7. April 2017

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

7. April 2017

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

13. April 2017

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

18. Oktober 2018

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

17. Oktober 2018

Zuletzt verifiziert

1. Oktober 2018

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur Sichelzellenanämie

Klinische Studien zur Inaktivierter Influenza-A (H1N1)-Virus-Impfstoff

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