Polarizzazione dei macrofagi in risposta all'assunzione di macronutrienti negli esseri umani sani: uno studio clinico randomizzato
Differenziazione dei monociti e polarizzazione dei macrofagi nella circolazione in risposta all'assunzione di macronutrienti negli esseri umani sani: uno studio clinico randomizzato
Panoramica dello studio
Stato
Stato
Condizioni
Condizioni
Intervento / Trattamento
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Tipo di studio
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Iscrizione
Fase
Fase
- Non applicabile
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Peso normale (BMI 18,5-25)
- Adulti sani evidenti da: esame fisico, profilo lipidico normale, test di funzionalità renale ed epatica normali.
Criteri di esclusione:
- Malattia renale
- Malattia epatica
- Malattia cardiovascolare
- Utilizzo di multivitaminici
- Utilizzo di FANS
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Scienza basilare
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Numero di armi
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / ArmGruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / TrattamentoIntervento / Trattamento |
|---|---|
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Comparatore attivo: Assunzione di lipidi
12 soggetti avevano 300 calorie di lipidi o 300 ml di acqua.
I campioni di sangue sono stati prelevati a 0, 1, 2 e 3 ore dopo l'assunzione.
C'è stato un periodo di una settimana tra le 2 assunzioni.
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90 grammi di panna da montare, 31,5 grammi di grassi, 1,7 grammi di proteine e 2,25 grammi di carboidrati
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Comparatore attivo: Assunzione di glucosio
12 soggetti avevano 300 calorie di glucosio o 300 ml di acqua.
I campioni di sangue sono stati prelevati a 0, 1, 2 e 3 ore dopo l'assunzione.
C'è stato un periodo di una settimana tra le 2 assunzioni.
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300 calorie di glucosio
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Comparatore attivo: Assunzione di proteine
12 soggetti hanno assunto 300 calorie di proteine del siero di latte o 300 ml di acqua.
I campioni di sangue sono stati prelevati a 0, 1, 2 e 3 ore dopo l'assunzione.
C'è stato un periodo di una settimana tra le 2 assunzioni.
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Proteine del siero di latte isolate (WPI) in polvere Isopure non aromatizzate contenenti 26 grammi per porzione di 100% WPI, prive di grassi, carboidrati, riempitivi, zuccheri e lattosio
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Rilevazione di marcatori di macrofagi M1 e M2
Lasso di tempo: Il reclutamento dei soggetti, l'arruolamento e la raccolta dei campioni sono stati effettuati in un periodo di 3 mesi. I campioni di sangue di base sono stati prelevati prima dell'assunzione calorica o di acqua e i successivi campioni di sangue sono stati prelevati a intervalli di 1, 2 e 3 ore dopo l'assunzione
|
I seguenti marcatori sono stati utilizzati per rilevare i macrofagi M1 e M2 (M1: CD86, IL-6, CD11c e CD169 e M2: CD206, CD163 e CD36)
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Il reclutamento dei soggetti, l'arruolamento e la raccolta dei campioni sono stati effettuati in un periodo di 3 mesi. I campioni di sangue di base sono stati prelevati prima dell'assunzione calorica o di acqua e i successivi campioni di sangue sono stati prelevati a intervalli di 1, 2 e 3 ore dopo l'assunzione
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Sponsor
Investigatori
Investigatori
- Investigatore principale: Awad Alshahrani, MD, Ministry of Natioanl Guard Health Affairs
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Shoelson SE, Lee J, Goldfine AB. Inflammation and insulin resistance. J Clin Invest. 2006 Jul;116(7):1793-801. doi: 10.1172/JCI29069. Erratum In: J Clin Invest. 2006 Aug;116(8):2308.
- Visser M, Bouter LM, McQuillan GM, Wener MH, Harris TB. Elevated C-reactive protein levels in overweight and obese adults. JAMA. 1999 Dec 8;282(22):2131-5. doi: 10.1001/jama.282.22.2131.
- Stein M, Keshav S, Harris N, Gordon S. Interleukin 4 potently enhances murine macrophage mannose receptor activity: a marker of alternative immunologic macrophage activation. J Exp Med. 1992 Jul 1;176(1):287-92. doi: 10.1084/jem.176.1.287.
- Hotamisligil GS, Shargill NS, Spiegelman BM. Adipose expression of tumor necrosis factor-alpha: direct role in obesity-linked insulin resistance. Science. 1993 Jan 1;259(5091):87-91. doi: 10.1126/science.7678183.
- Fried SK, Bunkin DA, Greenberg AS. Omental and subcutaneous adipose tissues of obese subjects release interleukin-6: depot difference and regulation by glucocorticoid. J Clin Endocrinol Metab. 1998 Mar;83(3):847-50. doi: 10.1210/jcem.83.3.4660.
- Italiani P, Boraschi D. From Monocytes to M1/M2 Macrophages: Phenotypical vs. Functional Differentiation. Front Immunol. 2014 Oct 17;5:514. doi: 10.3389/fimmu.2014.00514. eCollection 2014.
- Martinez FO, Gordon S. The M1 and M2 paradigm of macrophage activation: time for reassessment. F1000Prime Rep. 2014 Mar 3;6:13. doi: 10.12703/P6-13. eCollection 2014.
- Billiau A, Matthys P. Interferon-gamma: a historical perspective. Cytokine Growth Factor Rev. 2009 Apr;20(2):97-113. doi: 10.1016/j.cytogfr.2009.02.004. Epub 2009 Mar 5.
- Guha M, Mackman N. LPS induction of gene expression in human monocytes. Cell Signal. 2001 Feb;13(2):85-94. doi: 10.1016/s0898-6568(00)00149-2.
- Feghali CA, Wright TM. Cytokines in acute and chronic inflammation. Front Biosci. 1997 Jan 1;2:d12-26. doi: 10.2741/a171.
- Stoger JL, Gijbels MJ, van der Velden S, Manca M, van der Loos CM, Biessen EA, Daemen MJ, Lutgens E, de Winther MP. Distribution of macrophage polarization markers in human atherosclerosis. Atherosclerosis. 2012 Dec;225(2):461-8. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2012.09.013. Epub 2012 Sep 26.
- Mohanty P, Ghanim H, Hamouda W, Aljada A, Garg R, Dandona P. Both lipid and protein intakes stimulate increased generation of reactive oxygen species by polymorphonuclear leukocytes and mononuclear cells. Am J Clin Nutr. 2002 Apr;75(4):767-72. doi: 10.1093/ajcn/75.4.767.
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Ultimo verificato
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Parole chiave
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- SP15/026
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