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Attivare la risposta immunitaria nel cancro ovarico (RENAISSANCE)

5 dicembre 2025 aggiornato da: Jurgen M.J. Piek, Gynaecologisch Oncologisch Centrum Zuid

Studio sull'attivazione della risposta immunitaria nel cancro ovarico (ACTION).

L'obiettivo di questo studio trasversale esplorativo multicentrico è caratterizzare e fenotipizzare lo stato immunitario delle pazienti con cancro ovarico (OC) rispetto ai controlli senza cancro, concentrandosi quindi sugli organi ematopoietici e sulle cellule immunitarie provenienti da questi organi. Ciò verrà eseguito valutando la programmazione trascrizionale, epigenetica e funzionale dei monociti circolanti e delle cellule progenitrici mieloidi nell'OC.

Si ipotizza che l'OC e la sua progressione siano fortemente influenzati dalle cellule mieloidi e dai loro progenitori, principalmente attraverso risposte immunitarie addestrate difettose. Si ipotizza che i pazienti con OC soffrano di un fenotipo immunitario addestrato soppressivo.

I ricercatori confronteranno (1) pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking primario e (2) pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking a intervalli con (3) controlli come donatori di sangue e midollo osseo per vedere se ci sono differenze tra i parametri trascrizionali, epigenetici e firma funzionale di i) monociti circolanti e intra-addominali e ii) cellule progenitrici mieloidi del midollo osseo e della milza.

I partecipanti riceveranno:

  • Puntura della vena
  • Aspirazione del midollo osseo
  • Biopsia tumorale (solo casi)
  • Biopsia della milza (solo casi)

Inoltre, il liquido peritoneale verrà inviato per l'analisi in tutti i pazienti.

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

DESCRIZIONE DEL PROBLEMA

Il cancro ovarico (OC) è uno dei tumori più letali a causa dello stadio avanzato della malattia al momento della diagnosi. La terapia standard consiste nella chirurgia di debulking e nella chemioterapia. Tuttavia, nonostante questo trattamento aggressivo, quasi invariabilmente si verificano recidive della malattia, con un tasso di sopravvivenza a cinque anni di circa il 30%. L’immunoterapia potrebbe essere un modo per aumentare la sopravvivenza nei pazienti con OC. Tuttavia, uno dei principali ostacoli al successo dell’immunoterapia antitumorale nelle pazienti affette da cancro ovarico è il microambiente tumorale immunosoppressore.

DIREZIONE DELLA RICERCA

L’infiammazione correlata al tumore è uno dei tratti distintivi dei tumori in generale. L'immunità innata nello specifico è un denominatore comune coinvolto nella patogenesi dell'OC. Per migliorare l'esito del paziente e identificare nuovi bersagli terapeutici, è necessaria una comprensione più profonda dei cambiamenti indotti dal tumore nelle cellule progenitrici mieloidi del midollo osseo.

IPOTESI

Si ipotizza che l'OC e la sua progressione siano fortemente influenzati dalle cellule mieloidi e dai loro progenitori, principalmente attraverso risposte immunitarie addestrate difettose. Si ipotizza che i pazienti con OC soffrano di un fenotipo immunitario addestrato soppressivo. In futuro, si potrebbe esplorare il targeting terapeutico dell’immunità addestrata per sviluppare nuove immunoterapie per i tumori refrattari al trattamento convenzionale.

OBIETTIVO

Caratterizzare e fenotipizzare lo stato immunitario dei pazienti con OC rispetto ai controlli senza cancro, concentrandosi quindi sugli organi emopoietici e sulle cellule immunitarie provenienti da questi organi.

Ciò verrà eseguito valutando la programmazione trascrizionale, epigenetica e funzionale dei monociti circolanti e delle cellule progenitrici mieloidi nell'OC.

PROGETTAZIONE DI STUDIO

Studio trasversale esplorativo multicentrico avviato dai ricercatori presso l'ospedale Catharina di Eindhoven, il Radboud University Medical Center e l'Università della Tecnologia di Eindhoven.

POPOLAZIONE IN STUDIO

Saranno inclusi nello studio i seguenti pazienti:

  • Gruppo 1. Pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking primario (N = 30)
  • Gruppo 2. Pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking a intervalli (N = 30)
  • Gruppo 3. Controlli come donatori di sangue e midollo osseo (N=30)

PRINCIPALI PARAMETRI/ENDPOINT DELLO STUDIO

Endpoint primari: firma trascrizionale, epigenetica e funzionale dei monociti circolanti e dei progenitori mieloidi. Per i marcatori trascrizionali, l'attenzione sarà rivolta ai geni espressi in modo differenziale tra i diversi gruppi, con particolare attenzione alla presentazione dell'antigene e alle vie di elaborazione, alle vie infiammatorie (ad esempio, NF-kB), alle vie metaboliche e agli enzimi e al recettore di riconoscimento dei pattern (PRR) trasduzione del segnale. Per quanto riguarda i marcatori epigenetici, l'attenzione sarà focalizzata su tre marcatori istonici positivamente associati all'espressione genica e all'immunità addestrata: H3K4me3, che marca i promotori; H3K4me1, che segnala gli elementi regolatori distali (enhancer); e H3K27ac, che contrassegna promotori e potenziatori attivi. Per i marcatori funzionali, l'attenzione sarà posta sul grado di risposta immunitaria addestrata in vitro.

Tipo di studio

Interventistico

Iscrizione (Stimato)

90

Fase

  • Non applicabile

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Contatto studio

Backup dei contatti dello studio

Luoghi di studio

    • North Brabant
      • Eindhoven, North Brabant, Olanda, 5623EJ

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

  • Adulto
  • Adulto più anziano

Accetta volontari sani

Descrizione

Criteri di inclusione:

  • I soggetti devono avere almeno 18 anni ed essere mentalmente competenti;
  • Pazienti con OC di nuova diagnosi che si sottopongono a un intervento chirurgico di debulking primario o pazienti con OC che sono programmati per un debulking a intervalli;
  • Controlli: donne sottoposte ad intervento chirurgico per patologie ginecologiche benigne in anestesia generale.

Criteri di esclusione:

  • Mentalmente incompetente;
  • Incinta o allattamento;
  • Stato infiammatorio noto di malattie infettive o stato immunosoppressivo;
  • Utilizzo di farmaci che interferiscono con il sistema immunitario;
  • Comorbidità gravi: altri tumori maligni attivi (eccetto carcinoma basocellulare e altri carcinomi in situ);
  • Grave patologia psichiatrica;
  • Un consumo di alcol autodichiarato superiore a 21 unità a settimana.

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Scopo principale: Altro
  • Assegnazione: Non randomizzato
  • Modello interventistico: Assegnazione parallela
  • Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)

Armi e interventi

Gruppo di partecipanti / Arm
Intervento / Trattamento
Sperimentale: Gruppo 1
Pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking primario
Durante l'intervento verrà raccolto il liquido peritoneale.
I campioni di milza verranno ottenuti da chirurghi esperti durante l'intervento chirurgico di rimozione della massa. Le cellule mononucleate della milza saranno isolate utilizzando Ficoll-Paque e le cellule progenitrici saranno arricchite utilizzando la selezione positiva con sfere CD34 mediante MACS. Le sottopopolazioni cellulari verranno ulteriormente purificate utilizzando la selezione negativa dei monociti con sfere PanMonociti mediante MACS. La composizione delle cellule progenitrici sarà identificata mediante citometria a flusso. Verranno eseguiti test di proliferazione HSPC (saggi CFU standard) per valutare il potenziale di formazione di colonie mieloidi. Inoltre, verranno eseguiti il ​​sequenziamento dell'RNA di singole cellule e la valutazione epigenetica (ATAC-seq, ChIP-seq, metilazione del DNA).
Durante l’intervento chirurgico di rimozione della massa tumorale, tutto il tessuto tumorale visibile verrà rimosso da chirurghi esperti.
Durante l'intervento chirurgico di debulking, verrà eseguita una biopsia omentale.
I campioni di midollo osseo saranno prelevati dallo sterno o dalla cresta iliaca secondo la pratica standard da operatori esperti durante l'intervento chirurgico che i pazienti subiranno come parte del loro trattamento medico. Le cellule mononucleate del midollo osseo saranno isolate utilizzando Ficoll-Paque e le cellule progenitrici saranno arricchite mediante selezione positiva con perle CD34 tramite MACS. La composizione delle cellule progenitrici sarà identificata mediante citometria a flusso. Saranno eseguiti saggi di proliferazione delle cellule staminali ematopoietiche (saggi CFU standard) per valutare il potenziale di formazione di colonie mieloidi. Inoltre, saranno eseguiti il sequenziamento dell'RNA a singola cellula e la valutazione epigenetica (ATAC-seq, ChIP-seq, metilazione del DNA).
Il sangue intero verrà raccolto e le cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) verranno isolate utilizzando Ficoll-Paque. Le sottopopolazioni cellulari verranno purificate utilizzando la selezione negativa dei monociti con perline PanMonocyte mediante MACS.
Sperimentale: Gruppo 2
Pazienti con OC sottoposti a intervento chirurgico di debulking a intervalli
Durante l'intervento verrà raccolto il liquido peritoneale.
I campioni di milza verranno ottenuti da chirurghi esperti durante l'intervento chirurgico di rimozione della massa. Le cellule mononucleate della milza saranno isolate utilizzando Ficoll-Paque e le cellule progenitrici saranno arricchite utilizzando la selezione positiva con sfere CD34 mediante MACS. Le sottopopolazioni cellulari verranno ulteriormente purificate utilizzando la selezione negativa dei monociti con sfere PanMonociti mediante MACS. La composizione delle cellule progenitrici sarà identificata mediante citometria a flusso. Verranno eseguiti test di proliferazione HSPC (saggi CFU standard) per valutare il potenziale di formazione di colonie mieloidi. Inoltre, verranno eseguiti il ​​sequenziamento dell'RNA di singole cellule e la valutazione epigenetica (ATAC-seq, ChIP-seq, metilazione del DNA).
Durante l’intervento chirurgico di rimozione della massa tumorale, tutto il tessuto tumorale visibile verrà rimosso da chirurghi esperti.
Durante l'intervento chirurgico di debulking, verrà eseguita una biopsia omentale.
I campioni di midollo osseo saranno prelevati dallo sterno o dalla cresta iliaca secondo la pratica standard da operatori esperti durante l'intervento chirurgico che i pazienti subiranno come parte del loro trattamento medico. Le cellule mononucleate del midollo osseo saranno isolate utilizzando Ficoll-Paque e le cellule progenitrici saranno arricchite mediante selezione positiva con perle CD34 tramite MACS. La composizione delle cellule progenitrici sarà identificata mediante citometria a flusso. Saranno eseguiti saggi di proliferazione delle cellule staminali ematopoietiche (saggi CFU standard) per valutare il potenziale di formazione di colonie mieloidi. Inoltre, saranno eseguiti il sequenziamento dell'RNA a singola cellula e la valutazione epigenetica (ATAC-seq, ChIP-seq, metilazione del DNA).
Il sangue intero verrà raccolto e le cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) verranno isolate utilizzando Ficoll-Paque. Le sottopopolazioni cellulari verranno purificate utilizzando la selezione negativa dei monociti con perline PanMonocyte mediante MACS.
Comparatore attivo: Gruppo 3
Controlli come donatori di sangue e midollo osseo
Durante l'intervento verrà raccolto il liquido peritoneale.
I campioni di midollo osseo saranno prelevati dallo sterno o dalla cresta iliaca secondo la pratica standard da operatori esperti durante l'intervento chirurgico che i pazienti subiranno come parte del loro trattamento medico. Le cellule mononucleate del midollo osseo saranno isolate utilizzando Ficoll-Paque e le cellule progenitrici saranno arricchite mediante selezione positiva con perle CD34 tramite MACS. La composizione delle cellule progenitrici sarà identificata mediante citometria a flusso. Saranno eseguiti saggi di proliferazione delle cellule staminali ematopoietiche (saggi CFU standard) per valutare il potenziale di formazione di colonie mieloidi. Inoltre, saranno eseguiti il sequenziamento dell'RNA a singola cellula e la valutazione epigenetica (ATAC-seq, ChIP-seq, metilazione del DNA).
Il sangue intero verrà raccolto e le cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) verranno isolate utilizzando Ficoll-Paque. Le sottopopolazioni cellulari verranno purificate utilizzando la selezione negativa dei monociti con perline PanMonocyte mediante MACS.

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Composizione cellulare degli organi immunitari mediante citometria a flusso
Lasso di tempo: 3 anni compresa la fase di valutazione
Il numero e i rapporti dei diversi tipi di cellule staminali e immunitarie saranno determinati utilizzando marcatori proteici cellulari generali in combinazione con la citometria a flusso. L'analisi verrà eseguita su sangue, milza, midollo osseo e liquido intraperitoneale.
3 anni compresa la fase di valutazione
Composizione cellulare e stato epigenetico delle cellule degli organi immunitari utilizzando il sequenziamento ATAC e RNA
Lasso di tempo: 3 anni compresa la fase di valutazione
I rapporti cellulari e il profilo epigenetico delle cellule immunitarie nel sangue, nel tumore, nel midollo osseo e nella milza saranno analizzati utilizzando il sequenziamento di RNA a cellula singola e ATAC a cellula singola.
3 anni compresa la fase di valutazione
Risposta immunitaria addestrata
Lasso di tempo: 3 anni compresa la fase di valutazione
Ci concentriamo sul grado di risposta di immunità addestrata dopo stimolazione ex vivo con induttori di immunità addestrata, misurata come concentrazione di citochine infiammatorie e produzione di ROS.
3 anni compresa la fase di valutazione

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio (Effettivo)

1 gennaio 2025

Completamento primario (Stimato)

1 ottobre 2027

Completamento dello studio (Stimato)

1 dicembre 2027

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

4 agosto 2024

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

23 settembre 2024

Primo Inserito (Effettivo)

24 settembre 2024

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)

12 dicembre 2025

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

5 dicembre 2025

Ultimo verificato

1 dicembre 2025

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)

Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?

NO

Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio

Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

prodotto fabbricato ed esportato dagli Stati Uniti

No

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Prove cliniche su Fluido peritoneale

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