Confronto di due diversi metodi di elaborazione degli spermatozoi e i loro effetti sulla frammentazione del DNA dello sperma e sullo sviluppo dell'embrione
Un confronto prospettico di due diverse tecniche di preparazione degli spermatozoi sulla prescenza della frammentazione del DNA e dello sviluppo dell'embrione
L'obiettivo di questa sperimentazione clinica è imparare se il dispositivo Lenshooke CA0 abbassa la frammentazione del DNA nei campioni di sperma rispetto a una tecnica di gradiente/nuoto.
Le domande principali a cui mira a rispondere sono:
- Il dispositivo Lenshooke® CA0 riduce la frammentazione del DNA rispetto alla tecnica gradiente/nuoto?
- Il dispositivo Lenshooke® CA0 migliora la concentrazione, la motilità e la morfologia rispetto alla tecnica del gradiente/nuoto?
- La fecondazione e lo sviluppo dell'embrione tra fratelli è lo stesso?
- I tassi di gravidanza sono diversi tra i 2 gruppi?
1 campione di sperma verrà diviso tra le 2 tecniche di trattamento. La metà della coorte di uova del partner verrà iniettata tramite sperma intra-citoplasmatico usando lo sperma elaborato da una tecnica e l'altra metà della coorte sarà iniettata dallo sperma elaborato dall'altra tecnica. Entrambi i metodi esamineranno la frammentazione del DNA, la concentrazione, la motilità e la morfologia dello sperma. Entrambi i metodi verranno confrontati negli embrioni risultanti che esaminano la fecondazione, lo sviluppo dell'embrione e i tassi di gravidanza.
Panoramica dello studio
Stato
Intervento / Trattamento
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Richard J Kordus, PhD
- Numero di telefono: 864-455-1675
- Email: rich.kordus@prismahealth.org
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Patti Parker
- Numero di telefono: 864-455-1510
- Email: patti.parker@prismahealth.org
Luoghi di studio
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South Carolina
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Greenville, South Carolina, Stati Uniti, 29605
- Reclutamento
- Prisma Health-Upstate Fertility Center of the Caroliinas
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Contatto:
- Richard J Kordus, PhD
- Numero di telefono: 864-455-1675
- Email: rich.kordus@prismahealth.org
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Descrizione
Criteri di inclusione:
- Campioni con concentrazione di spermatozoa ≥15 m/ml
- Partner femminile tra i 18 e i 34 anni.
- Minimo di 4 uova fertilizzate nel gruppo di preparazione a gradiente/nuoto e 4 uova fecondate nel gruppo di preparazione a lenti per ciascun paziente
Criteri di esclusione:
- Campioni con concentrazione di spermatozoa <15 m/ml
- partner femminile> 35 anni
- paziente femmina con perdita di gravidanza ricorrente
- paziente femmina con riserva ovarica ridotta
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: N / A
- Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Sperimentale: Gradiente/nuoto contro il confronto dei dispositivi Lenshooke CA0
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Confronto del danno al DNA tra i 2 interventi e il successivo sviluppo dell'embrione e i tassi di gravidanza
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Percentuale di sperma con frammentazione del DNA
Lasso di tempo: Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Il metodo si basa sul test di dispersione della cromatina dello sperma (SCD) (Fernández et al., J. Androl 24: 59-66, 2003; Fertil STERIL 84: 833-842, 2005).
Gli spermatozoi intatti non fissati (campioni freschi, congelati/non rompicali, diluiti o ordinati) sono immersi in un microgel inerte di agarosio su uno scivolo pretrattato.
Un trattamento con acido iniziale denatura del DNA in quelle cellule di sperma con DNA frammentato.
Successivamente, la soluzione di lising rimuove la maggior parte delle proteine nucleari e in assenza di una massiccia rottura del DNA produce nucleoidi con grandi aloni di diffusione del DNA, emergendo da un nucleo centrale.
Tuttavia, i nucleoidi dagli spermatozoi con DNA frammentato non mostrano un alone di dispersione o l'alone è minimo.
Le diapositive sono colorate con la macchia di Wright.
Verrà conteggiato un minimo di 300 spermatozoi per campione.
La percentuale di sperma con DNA frammentato sarà calcolata dividendo lo sperma con aloni piccoli e senza alos (sperma frammentato) per il numero totale di spermatozoi contati.
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Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Concentrazione di sperma per ml
Lasso di tempo: Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Valutato utilizzando un analizzatore di classe sperma - SCA (sistema CASA) per il conteggio degli spermatozoi.
I campioni di sperma verranno caricati in vetrini a volume fisso di profondità a 20 microlitri.
Le diapositive verranno posizionate sulla macchina SCA di microoptica.
I video verranno catturati da campi fino a quando non vengono catturati almeno 200 spermatozoi mobili.
La concentrazione verrà analizzata contando il numero di sperma all'interno di ciascun campo, corretto per la profondità della camera e multipla per il volume del campione.
Le concentrazioni tra i campi non variano di oltre il 15%.
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Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Altre misure di risultato
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Percentuale di sperma mobile
Lasso di tempo: Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Valutato usando un analizzatore di classe sperma - SCA (sistema CASA) per la motilità degli spermatozoi.
I campioni di sperma verranno caricati in vetrini a volume fisso di profondità a 20 microlitri.
Le diapositive verranno posizionate sulla macchina SCA di microoptica.
I video verranno catturati da campi fino a quando non vengono catturati almeno 200 spermatozoi mobili.
La motilità verrà calcolata come il numero di spermatozoi mobili contati diviso per il numero totale di spermatozoi contati.
I tipi di motilità saranno annotati in base ai raggruppamenti di analisi dello sperma, ai parametri di movimento cinetico.
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Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Percentuale di sperma con morfologia normale usando i criteri rigorosi Kruger
Lasso di tempo: Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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10 volumi UL di campioni di sperma verranno posizionati su vetrini morfologici pre-macchiate usando la macchia viola blu/cresilico di metilene.
Verrà conteggiato e valutato un minimo di 200 spermatozoi per la normale morfologia dello sperma anormale con criteri rigorosi Kruger.
La percentuale di sperma normale verrà valutata la mia divisione del numero di sperma normale per il numero totale di spermatozoi contati.
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Dall'iscrizione al giorno dopo la raccolta del campione, circa 1 mese
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Percentuale di fecondazione delle uova
Lasso di tempo: Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Il numero di uova fecondate (zigoti) sarà diviso per il numero di uova inseminate
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Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Punteggio numerico dello sviluppo dell'embrione morfocinetico
Lasso di tempo: Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Lo sviluppo dell'embrione verrà monitorato utilizzando un incubatore time-lapse.
Un punteggio verrà generato in base a quando gli embrioni soddisfano i punti temporali dello sviluppo.
L'embrione riceverà 2 punti per ogni punto temporale completato con i parametri previsti.
Gli embrioni riceveranno 1 punto per ogni punto temporale completato ma al di fuori dei parametri del tempo previsti.
cioè se un embrione ha la prima scollatura tra 23-25 ore riceverà 2 punti.
Se si scinde prima di 23 ore o più tardi di 25 ore, riceverà 1 punto.
Il punteggio totale che un embrione riceve verrà paragonato dal momento dell'inseminazione fino a quando l'embrione non sarà congelato.
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Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Grado di embrione qualitativo
Lasso di tempo: Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Tutti gli embrioni saranno classificati in base a una scala di classificazione in 3 parti al momento della crioconservazione tra i giorni 5 e 7 di cultura.
L'embrione verrà assegnato un punteggio numerico di 1-6 in base alle dimensioni dell'embrione, alle dimensioni della cavità fluida di blastocoel e se si tratta o meno all'interno, alla schiusa o completamente schiusa della zona.
Ogni embrione riceverà un grado di lettera per la qualità della massa cellulare interna a, B, C o D. Ogni embrione riceverà un secondo grado di lettera per la qualità del trofectoderma A, B, C o D.
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Dall'iscrizione fino a una settimana dopo la raccolta del campione, circa 5 settimane
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Percentuale di pazienti che rimangono incinta e consegnano un bambino
Lasso di tempo: Dall'iscrizione fino alla consegna del bambino, fino a 18 mesi
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Calcolato dal numero di pazienti che rimangono incinta (valutati dalla presenza di un battito cardiaco fetale 5-6 settimane dopo il trasferimento di embrioni) diviso per il numero totale di embrioni trasferiti.
La nascita dal vivo sarà calcolata dal numero di pazienti che partoriscono divisi per il numero di embrioni trasferiti.
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Dall'iscrizione fino alla consegna del bambino, fino a 18 mesi
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Richard Kordus, PhD, Prisma Health-Upstate Fertility Center of the Carolinas
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Ho CLT, Vaughan-Constable DR, Ramsay J, Jayasena C, Tharakan T, Yap T, Whiteman I, Graham N, Minhas S, Homa ST. The relationship between genitourinary microorganisms and oxidative stress, sperm DNA fragmentation and semen parameters in infertile men. Andrologia. 2022 Mar;54(2):e14322. doi: 10.1111/and.14322. Epub 2021 Nov 24.
- Amor H, Hammadeh ME, Mohd I, Jankowski PM. Impact of heavy alcohol consumption and cigarette smoking on sperm DNA integrity. Andrologia. 2022 Aug;54(7):e14434. doi: 10.1111/and.14434. Epub 2022 Apr 28.
- Cho CL, Agarwal A, Majzoub A, Esteves SC. Clinical utility of sperm DNA fragmentation testing: concise practice recommendations. Transl Androl Urol. 2017 Sep;6(Suppl 4):S366-S373. doi: 10.21037/tau.2017.07.28.
- Rex AS, Aagaard J, Fedder J. DNA fragmentation in spermatozoa: a historical review. Andrology. 2017 Jul;5(4):622-630. doi: 10.1111/andr.12381.
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- 2295231-1
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