- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06080594
Durch körperliche Betätigung vermittelte Rettung mitochondrialer Dysfunktionen, die zu einer Insulinresistenz führen (EX-MITO-DYS-IR)
Durch körperliche Betätigung vermittelte Rettung mitochondrialer Störungen, die zu einer Insulinresistenz beim Menschen führen (EX-MITO-DYS-IR)
Das übergeordnete Ziel dieser Interventionsstudie besteht darin, den Zusammenhang zwischen den mitochondrialen Muskelanpassungen und den Veränderungen der Insulinsensitivität der Muskeln zu untersuchen, die durch körperliches Training bei Personen hervorgerufen werden, die pathogene mitochondriale DNA-Mutationen tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.
Bei einem subjektinternen Parallelgruppen-Längsschnittdesign werden die Teilnehmer einem Übungstraining mit einem Bein unterzogen, während das kontralaterale Bein als inaktive Kontrolle dient. Nach der Übungsintervention nehmen die Patienten an einer experimentellen Studie teil, die Folgendes umfasst:
- Eine hyperinsulinämisch-euglykämische Klemme kombiniert mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz
- Muskelbiopsieproben
Studienübersicht
Status
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Hintergrund: Periphere Insulinresistenz ist ein wesentlicher Risikofaktor für Stoffwechselerkrankungen wie Typ-2-Diabetes. Der Großteil der durch Insulin stimulierten Glukoseverwertung erfolgt über die Skelettmuskulatur, daher ist die Wiederherstellung der Insulinwirkung in der Skelettmuskulatur von entscheidender Bedeutung für die Prävention von Typ-2-Diabetes. Mitochondriale Dysfunktion ist an der Ätiologie der Muskelinsulinresistenz beteiligt. Da die Mitochondrienfunktion durch die Quantität und Qualität des Proteoms bestimmt wird, können Veränderungen im mitochondrialen Muskelproteom eine entscheidende Rolle bei der Pathophysiologie der Insulinresistenz spielen. Allerdings ist die Insulinresistenz multifaktorieller Natur und es ist unklar, ob mitochondriale Störungen eine Ursache oder eine Folge einer beeinträchtigten Insulinwirkung sind. In den letzten Jahren hat die Untersuchung von Menschen mit genetischen Mutationen ein enormes Potenzial gezeigt, den mechanistischen Zusammenhang zwischen zwei physiologischen Variablen herzustellen; Wenn die Mutation tatsächlich einen funktionellen Einfluss auf eine dieser Variablen hat, kann die Richtung der Kausalität leicht zugeschrieben werden. Mitochondriale Myopathien sind genetische Störungen der mitochondrialen Atmungskette, die überwiegend die Skelettmuskulatur betreffen. Mitochondriale Myopathien werden durch pathogene Mutationen in der nuklearen oder mitochondrialen DNA (mtDNA) verursacht, die letztendlich zu einer mitochondrialen Dysfunktion führen. Obwohl die Prävalenz von mtDNA-Mutationen nur 1 von 5.000 beträgt, hat die Untersuchung von Patienten mit mtDNA-Defekten das Potenzial, einzigartige Informationen über die pathogene Rolle mitochondrialer Störungen zu liefern, die in keinem Verhältnis zur Seltenheit der betroffenen Personen stehen. Die m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert, ist die häufigste Mutation, die beim Menschen zu einer mitochondrialen Myopathie führt. Die m.3243A>G-Mutation ist mit einer beeinträchtigten Glukosetoleranz und Insulinresistenz in der Skelettmuskulatur verbunden. Am wichtigsten ist, dass bei Trägern der m.3243A>G-Mutation eine Insulinresistenz einer Beeinträchtigung der β-Zellfunktion vorausgeht, was diese Patienten zu einem idealen menschlichen Modell für die Untersuchung des ursächlichen Zusammenhangs zwischen Muskel-Mitochondrien-Dysfunktion und Insulinresistenz macht. Übungstraining ist ein starker Anreiz, um die Muskelinsulinwirkung zu steigern, die Mitochondrienfunktion zu verbessern und den Umbau des mitochondrialen Proteoms zu fördern. Dementsprechend wurde vorgeschlagen, dass die Behebung mitochondrialer Dysfunktionen eine Rolle bei der insulinsensibilisierenden Wirkung von körperlicher Betätigung spielt. Dennoch können zahlreiche Mechanismen zur Pathophysiologie der Insulinresistenz beitragen und die positiven Auswirkungen von Bewegung können mit der Verbesserung mehrerer Faktoren verbunden sein, was die Interpretation der funktionellen Bedeutung einer verbesserten Muskel-Mitochondrienfunktion an sich in Frage stellt. Da mitochondriale Dysfunktion wahrscheinlich die Hauptursache für Muskelinsulinresistenz bei Trägern der m.3243A>G-Mutation ist, könnten prospektive Studien, einschließlich einer eingehenden Analyse der mitochondrialen Anpassungen, die durch körperliches Training in dieser Patientenkohorte hervorgerufen werden, eine einzigartige Möglichkeit bieten Gelegenheit, jene mitochondrialen Störungen zu identifizieren, die, wenn sie einmal behoben sind, zu einer Verbesserung der Insulinsensitivität führen.
Ziel: Untersuchung der Auswirkungen von körperlichem Training auf die Insulinsensitivität der Muskeln, die mitochondriale Funktion der Muskeln und das mitochondriale Proteom der Muskeln bei Personen, die pathogene Mutationen der mitochondrialen DNA (mtDNA) tragen, die mit einem insulinresistenten Phänotyp verbunden sind.
Studiendesign: Parallelgruppen-Längsschnittstudie innerhalb des Probanden an Personen mit pathogenen mtDNA-Mutationen, die sich einem Übungstraining mit einem Bein (kontralaterales Bein als inaktive Kontrolle) unterziehen.
Endpunkt: Unterschiede zwischen dem trainierten und dem untrainierten Bein.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Matteo Fiorenza, Ph.D.
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: matteo.fiorenza@regionh.dk
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Tue Leth Nielsen, MD
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: tue.leth.nielsen.01@regionh.dk
Studienorte
-
-
-
Copenhagen, Dänemark, 2100
- Rekrutierung
- Rigshospitalet
-
Kontakt:
- Tue Leth Nielsen, MD
- Telefonnummer: +4535458748
- E-Mail: tue.leth.nielsen.01@regionh.dk
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Bekannte m.3243A>G-Mutation im MT-TL1-Gen, das für das mitochondriale Leucyl-tRNA-1-Gen kodiert
- Andere bekannte mtDNA-Punktmutationen
Ausschlusskriterien:
- Verwendung von Antiarrhythmika oder anderen Medikamenten, die nach Ansicht der Forscher das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
- Es wurden schwere Herzerkrankungen, dysregulierte Schilddrüsenerkrankungen oder andere dysregulierte Endokrinopathien oder andere Erkrankungen diagnostiziert, die nach Ansicht der Prüfärzte das Potenzial haben, die Ergebnismessungen zu beeinflussen.
- Schwangerschaft
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Grundlegende Wissenschaft
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
---|---|
Experimental: Übungsbein
Hochintensives Übungstraining für ein Bein
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Acht Sitzungen mit hochintensivem Kniestreckertraining werden an verschiedenen Tagen über einen Zeitraum von zwei Wochen durchgeführt.
Andere Namen:
|
Kein Eingriff: Kontrollbein
Kein Übungstraining für das Kontrollbein
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Insulinsensitivität der Skelettmuskulatur
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
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Die durch Insulin stimulierte Muskelglukoseaufnahme wird durch die hyperinsulinämisch-euglykämische Clamp-Methode bestimmt, die mit Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Glukosedifferenz kombiniert wird
|
90–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Mitochondriale Muskelatmung
Zeitfenster: Grundlinie
|
Der mitochondriale O2-Fluss wird durch hochauflösende Respirometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
|
Grundlinie
|
Produktion mitochondrialer reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) im Muskel
Zeitfenster: Grundlinie
|
Mitochondriale H2O2-Emissionsraten werden durch hochauflösende Fluorometrie in permeabilisierten Fasern aus Muskelbiopsieproben gemessen
|
Grundlinie
|
Mitochondriales Muskelproteom
Zeitfenster: Grundlinie
|
Mitochondriale Proteomsignaturen werden durch massenspektrometrische Proteomik in Muskelbiopsieproben bestimmt
|
Grundlinie
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Muskel-mtDNA-Heteroplasmie
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die mtDNA-Mutationslast wird in Muskelbiopsieproben von Patienten mit mitochondrialer Myopathie gemessen
|
Grundlinie
|
Muskelinsulinsignalisierung
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Insulinvermittelte Veränderungen in der Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die die Insulinwirkung modulieren, werden durch Immunblotting in Muskel- und Fettbiopsieproben gemessen
|
Vor (Grundlinie) und 150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
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Muskelintegrierte Stressreaktionssignalproteine
Zeitfenster: Grundlinie
|
Die Häufigkeit von (phosphorylierten) Proteinen, die den integrierten Stressreaktionsweg steuern, wird durch Immunblotting in Muskelbiopsieproben gemessen.
|
Grundlinie
|
Muskelintegrierte Stressreaktionsgene
Zeitfenster: Grundlinie
|
Der mRNA-Gehalt von Genen, die den integrierten Stressreaktionsweg steuern, wird durch Echtzeit-PCR in Muskelbiopsieproben gemessen.
|
Grundlinie
|
Muskelfreisetzung von FGF21 und GDF15
Zeitfenster: Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Die Skelettmuskelproduktion von FGF21 und GDF15 wird durch Messungen des Blutflusses in der Oberschenkelarterie und der arteriovenösen Differenz von Plasma-FGF21 und GDF15 bestimmt
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Vor (Grundlinie) und 0–150 Minuten nach Beginn der hyperinsulinämisch-euglykämischen Klemme
|
Insulinsensitivität des gesamten Körpers
Zeitfenster: 90–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Die Insulinsensitivität des gesamten Körpers wird mit der hyperinsulinämisch-euglykämischen Clamp-Methode bestimmt
|
90–150 Minuten nach Beginn einer hyperinsulinämischen euglykämischen Klemme
|
Andere Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Beinmuskelmasse
Zeitfenster: Grundlinie
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Die Beinmuskelmasse wird mittels Dual-Energy-Röntgenabsorptiometrie bestimmt
|
Grundlinie
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Mitarbeiter
Ermittler
- Hauptermittler: Matteo Fiorenza, Ph.D., Rigshospitalet, Denmark
- Hauptermittler: John Vissing, MD, Rigshospitalet, Denmark
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- DeFronzo RA, Ferrannini E. Insulin resistance. A multifaceted syndrome responsible for NIDDM, obesity, hypertension, dyslipidemia, and atherosclerotic cardiovascular disease. Diabetes Care. 1991 Mar;14(3):173-94. doi: 10.2337/diacare.14.3.173.
- Hesselink MK, Schrauwen-Hinderling V, Schrauwen P. Skeletal muscle mitochondria as a target to prevent or treat type 2 diabetes mellitus. Nat Rev Endocrinol. 2016 Nov;12(11):633-645. doi: 10.1038/nrendo.2016.104. Epub 2016 Jul 22.
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- DeFronzo RA, Simonson D, Ferrannini E. Hepatic and peripheral insulin resistance: a common feature of type 2 (non-insulin-dependent) and type 1 (insulin-dependent) diabetes mellitus. Diabetologia. 1982 Oct;23(4):313-9. doi: 10.1007/BF00253736.
- Meex RC, Schrauwen-Hinderling VB, Moonen-Kornips E, Schaart G, Mensink M, Phielix E, van de Weijer T, Sels JP, Schrauwen P, Hesselink MK. Restoration of muscle mitochondrial function and metabolic flexibility in type 2 diabetes by exercise training is paralleled by increased myocellular fat storage and improved insulin sensitivity. Diabetes. 2010 Mar;59(3):572-9. doi: 10.2337/db09-1322. Epub 2009 Dec 22.
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- Saleheen D, Natarajan P, Armean IM, Zhao W, Rasheed A, Khetarpal SA, Won HH, Karczewski KJ, O'Donnell-Luria AH, Samocha KE, Weisburd B, Gupta N, Zaidi M, Samuel M, Imran A, Abbas S, Majeed F, Ishaq M, Akhtar S, Trindade K, Mucksavage M, Qamar N, Zaman KS, Yaqoob Z, Saghir T, Rizvi SNH, Memon A, Hayyat Mallick N, Ishaq M, Rasheed SZ, Memon FU, Mahmood K, Ahmed N, Do R, Krauss RM, MacArthur DG, Gabriel S, Lander ES, Daly MJ, Frossard P, Danesh J, Rader DJ, Kathiresan S. Human knockouts and phenotypic analysis in a cohort with a high rate of consanguinity. Nature. 2017 Apr 12;544(7649):235-239. doi: 10.1038/nature22034.
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- Deshmukh AS, Steenberg DE, Hostrup M, Birk JB, Larsen JK, Santos A, Kjobsted R, Hingst JR, Scheele CC, Murgia M, Kiens B, Richter EA, Mann M, Wojtaszewski JFP. Deep muscle-proteomic analysis of freeze-dried human muscle biopsies reveals fiber type-specific adaptations to exercise training. Nat Commun. 2021 Jan 12;12(1):304. doi: 10.1038/s41467-020-20556-8. Erratum In: Nat Commun. 2021 Mar 5;12(1):1600.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
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Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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