- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT03181347
La microbiología de la cirugía bariátrica
La obesidad y sus enfermedades asociadas están aumentando en todo el mundo. Sin embargo, los mecanismos detrás del desarrollo de la obesidad no se entienden completamente. Existe evidencia de que las bacterias intestinales pueden desempeñar un papel en el desarrollo y la perpetuación de la obesidad a través de la regulación del almacenamiento de energía y grasa.
La cirugía bariátrica es actualmente la modalidad más efectiva para tratar la obesidad severa con evidencia que respalda la pérdida de peso sostenida a largo plazo y la mejora en las comorbilidades relacionadas con la obesidad. Los dos procedimientos quirúrgicos bariátricos más comúnmente realizados son el bypass gástrico en Y de Roux (RYGB) y la gastrectomía en manga (SG). RYGB conduce a una mayor pérdida de peso que SG y mejora el control de la diabetes en pacientes después de la cirugía. A pesar del éxito de RYGB y SG para inducir la pérdida de peso y mejorar las comorbilidades, los mecanismos subyacentes que conducen a la mejoría clínica después de estas operaciones no se conocen por completo. Se cree que múltiples factores juegan un papel, incluida la reducción de la ingesta calórica, la disminución de la absorción de nutrientes, el aumento de la saciedad, la liberación de hormonas y los cambios en el metabolismo de los ácidos biliares.
La evidencia reciente ha sugerido que las bacterias intestinales median en varios de los efectos beneficiosos de la cirugía bariátrica. Pequeños estudios han demostrado cambios en la composición y diversidad de la microbiota intestinal después de RYGB y SG en humanos. Un estudio también confirmó cambios microbianos a largo plazo para RYGB. Sin embargo, los ensayos comparativos han sido pequeños (menos de 15 participantes por grupo de tratamiento) y no se han dilucidado bien las diferencias importantes entre poblaciones bacterianas específicas. Además, ningún estudio en humanos ha examinado las diferencias en la composición bacteriana después de RYGB y SG en relación con sus consecuencias metabólicas.
El objetivo de este estudio es investigar y comparar los cambios metabólicos y microbianos que ocurren con RYGB, SG y controles dietéticos. Específicamente, los investigadores tienen como objetivo utilizar un enfoque de biología de sistemas utilizando poderosas técnicas analíticas que incluyen metagenómica, metabolómica y perfiles inmunológicos múltiples para definir los cambios microbianos, metabólicos e inmunológicos combinados que ocurren después de la cirugía bariátrica.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
HIPÓTESIS Los investigadores plantean la hipótesis de que la disbiosis microbiana intestinal y una disminución en la diversidad contribuyen al desarrollo y perpetuación de la obesidad. El efecto de la disbiosis es multifactorial e incluye una disminución de la función de barrera intestinal y la inflamación local y sistémica resultante que incita al síndrome metabólico. La fisiología intestinal alterada después de RYGB y SG conducirá a cambios identificables en poblaciones microbianas específicas y un aumento en la diversidad. Los cambios microbianos beneficiosos específicos darán como resultado la pérdida de peso, la reducción de la inflamación y un perfil metabólico normalizado.
MÉTODOS Población de estudio: Los pacientes serán reclutados de la Clínica Bariátrica Especializada en Adultos de Edmonton en el hospital Royal Alexandra.
Tamaño de la muestra: Cada cohorte de RYGB, SG y controles dietéticos no quirúrgicos tendrá 30 pacientes (total n = 90). Estudios anteriores han incluido 15 o menos participantes por brazo.
Cálculo del tamaño de la muestra: el cálculo del tamaño de la muestra se diseñó para garantizar que el estudio capturara adecuadamente los cambios microbianos inducidos por la cirugía. En la literatura anterior, una importante especie bacteriana productora de ácidos grasos de cadena corta (F. prausnitzii) la abundancia relativa fue menor en un grupo post-RYGB en comparación con los controles no quirúrgicos (0,031 v. 0,053 σ 0,024). Con un alfa de 0,05 y un Beta de 0,90, esto requeriría 26 sujetos por brazo. Incluyendo una tasa de abandono del 10%, esto aumenta a 30 sujetos por brazo.
Diseño del estudio: para el brazo de intervención, los sujetos se inscribirán en el momento en que estén programados para la cirugía. Se recolectarán muestras de heces, orina y sangre en la clínica de 2 a 6 semanas antes de la cirugía. En el período postoperatorio, la recolección de heces se realizará en visitas clínicas programadas a los tres y nueve meses. Todas las muestras preoperatorias se recolectarán antes de que los sujetos inicien un líquido preoperatorio de 2 a 4 semanas diseñado para reducir la hepatomegalia y facilitar los aspectos quirúrgicos técnicos del procedimiento.
Los controles no quirúrgicos serán pacientes tratados con intervenciones dietéticas y conductuales para bajar de peso. Esto incluye modificaciones dietéticas y de actividad y excluye reemplazo de comidas o intervenciones farmacológicas. Para esta cohorte, a los sujetos se les tomará una muestra inicial (heces, orina, sangre) antes de iniciar las intervenciones de pérdida de peso. Luego se realizarán más muestreos a los tres meses y nueve meses después del inicio de la intervención.
El procesamiento de muestras y el análisis inmunológico se llevarán a cabo en el Centro de Excelencia para la Investigación de Inflamación e Inmunidad Gastrointestinal (CEGIIR) en la Universidad de Alberta. La secuenciación será realizada por el Centro de Genómica Aplicada dentro de CEGIIR y la metabolómica se realizará en el Centro de Innovación Metabolómica de la Universidad de Alberta como una tarifa por el servicio.
Análisis microbiano fecal: la recolección de muestras fecales estará impulsada por un protocolo desarrollado anteriormente utilizado por nuestro grupo para estudios de dieta en la enfermedad inflamatoria intestinal. Se proporcionarán vasos de recolección a los pacientes y se les indicará que recolecten una muestra la noche anterior o la mañana de su cita. Se indicará a los sujetos que guarden la muestra en el frigorífico mientras tanto. Las muestras fecales se analizarán en busca de composición microbiana, señales inflamatorias y calprotectina fecal.
La composición de la comunidad microbiana de las muestras fecales se evaluará mediante análisis del gen 16S rRNA. El ADN se extraerá de los homogeneizados fecales combinando la lisis celular enzimática y mecánica con el QIAamp DNA Stool Mini Kit (Qiagen, Valencia, CA, EE. UU.). La composición de la microbiota fecal se caracterizará mediante la secuenciación de etiquetas de ARNr 16S utilizando la tecnología MiSeq Illumina (extremo de par), dirigida a las regiones V3-V5. Las lecturas con control de calidad se analizarán utilizando 1) enfoques basados en taxonomía como Global Alignment for Sequence Taxonomy (GAST)15 y la herramienta Ribosomal Database Project MultiClassifier y 2) algoritmos de agrupamiento no basados en taxonomía para la determinación de unidades taxonómicas operativas con UPARSE tubería. Los índices de diversidad alfa (especies observadas, Shannon, Simpson) y diversidad β (Bray-Curtis, binario Jaccard) se calcularán en QIIME y R (paquete VEGAN). Los gráficos de ordenación para las métricas de diversidad β se generarán mediante la ordenación de escala multidimensional no paramétrica en R. Para evaluar la composición funcional del microbioma, se inferirá el contenido genético de la comunidad microbiana mediante el algoritmo PICRUSt16. PICRUSt utiliza información sobre el contenido de genes y el número de copias del gen 16S rRNA de la base de datos IMG (genomas microbianos integrados) para predecir qué genes están presentes en los organismos de las muestras experimentales. Las tablas de OTU generadas con QIIME/UPARSE se normalizarán por el número de copias del gen 16S rRNA y dichos valores normalizados se multiplicarán por la abundancia calculada de familias de genes en cada taxón durante el procedimiento de inferencia del contenido de genes realizado con PICRUSt. El resultado es una tabla de recuentos de familias de genes que es comparable a las generadas por canalizaciones de anotación de metagenomas como HUMAnN y MG-RAST y que se pueden organizar en rutas metabólicas. Finalmente, se cuantificará la contribución de cada OTU a una determinada función génica. Para identificar poblaciones microbianas y rutas metabólicas con abundancia diferenciadora en los diferentes grupos, se utilizará el algoritmo LDA (Linear Discriminant Analysis) Effect Size (LEfSe) con la interfaz en línea Galaxy (http://huttenhower.sph.harvard.edu/galaxy /raíz).
Metabolómica de orina y suero: Se recolectarán muestras de orina y sangre durante la visita a la clínica del sujeto. Las muestras de orina se obtendrán en un frasco de recolección de orina estándar que contiene azida de sodio para evitar el crecimiento bacteriano y se congelarán después de la recolección. Las muestras de sangre se recolectarán en tubos de recolección heparinizados en el momento del análisis de sangre de rutina clínicamente indicado, específicamente seis semanas antes de la operación y tres y nueve meses después de la operación. El suero se aislará por centrifugación a 2 000 g durante 10 minutos después de la recolección y se almacenará a -80 ⁰C. Las muestras de orina y suero se utilizarán para la elaboración de perfiles metabolómicos mediante espectroscopia de RMN en cada momento.
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN a través del Centro de innovación de metabolómica de la Universidad de Alberta. Las muestras se procesarán en un espectrómetro de RMN Varian INOVA de 600 MHz de 4 canales. Se seguirán los parámetros estándar de adquisición y procesamiento de Chenomx. El análisis de 1H-NMR utilizando el software Chenomx NMR Suite permitirá la identificación simultánea de hasta 300 moléculas pequeñas. Los espectros de RMN resultantes se someterán a análisis mediante la técnica de creación de perfiles específicos que comparan espectros con una base de datos de referencia conocida para identificar metabolitos.
Citocinas y quimiocinas inflamatorias: el suero se evaluará para medir la tasa de sedimentación de eritropoyetina (ESR) y la proteína C reactiva (CRP) como medidas de inflamación sistémica y LPS, como medida de translocación bacteriana.
Tanto las muestras de suero como las de tejido se analizarán en busca de citocinas y quimiocinas inflamatorias. Las muestras de tejido serán recolectadas por un miembro del equipo de estudio en el momento de la cirugía. Se recolectará una muestra de la mucosa del estómago para los pacientes con SG y del estómago y el yeyuno para los pacientes con RYGB, se congelará instantáneamente en la sala de operaciones con nitrógeno líquido y, posteriormente, se almacenará a -80 ⁰C. Estas muestras se extraen como parte estándar de los procedimientos. Se analizarán en busca de citoquinas inflamatorias. Los investigadores han establecido una buena relación de trabajo con el personal de quirófano y los cirujanos de nuestras ciudades en estudios anteriores que facilitarán este proceso.
La respuesta inmunitaria del huésped se evaluará en muestras mediante la expresión de proteínas de citocinas y quimiocinas utilizando la plataforma Meso Scale Discovery (MSD, Gaithersburg, Maryland, EE. UU.). El uso de esta tecnología de matriz múltiple nos proporcionará un rango dinámico y la sensibilidad para medir una gran cantidad de señales inflamatorias y homeostáticas simultáneamente en una sola muestra. Los investigadores se centrarán inicialmente en las citocinas implicadas en las vías del receptor farnesoide X, dada la aparente relación entre la cirugía bariátrica, la pérdida de peso y los ácidos biliares17. Específicamente, estas citoquinas incluyen IL-1β, IL-6, IL-8, IL-12, TNFα y MCP-1.
Análisis: Se utilizará un enfoque de biología de sistemas para combinar la metagenómica, la metabolómica y el perfil inmunológico múltiple para definir los cambios microbianos, metabólicos e inmunológicos combinados que ocurren después de la cirugía bariátrica. Las diferencias entre las variables continuas y el resultado se evaluarán mediante la prueba de suma de rangos de Wilcoxon. Las diferencias entre las variables explicativas categóricas y el resultado se evaluarán mediante la prueba de chi-cuadrado o la prueba exacta de Fisher cuando el tamaño de celda es <5. Las variables significativas en el nivel de p < 0,10 mediante la prueba de razón de verosimilitud de la regresión logística univariante se ingresarán en la regresión logística multivariable. Se utilizará un procedimiento de selección por pasos hacia atrás y aquellas variables con un valor p de relación de verosimilitud <0,05 se mantendrán en el modelo multivariable. QIIME (Información cuantitativa sobre ecología microbiana), MEGAN (Analizador MEtaGenome) y Metastats, se realizarán utilizando la experiencia desarrollada en CEGIIR y en colaboración con el Dr. Gane Wong, un experto en biología de sistemas.
LIMITACIONES
- Aplicabilidad de los cambios en la cirugía bariátrica a la pérdida de peso en general
- Diferenciar causa y efecto de los cambios.
- Evaluación del efecto de los cambios en la dieta después y antes de la cirugía
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
Alberta
-
Edmonton, Alberta, Canadá, T5H 3V9
- CAMIS, Royal Alexandra Hospital
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- 30 controles con obesidad severa: IMC > 35 kg/m2
- 30 pacientes severamente obesos programados para gastrectomía en manga
- 30 pacientes con obesidad severa programados para bypass gástrico en Y de Roux
- Las cohortes coincidirán con el IMC
Criterio de exclusión:
- Uso de antibióticos, liraglutida o metotrexato en los dos meses anteriores a la inscripción
- Uso de reemplazo de comidas dentro de un mes
- Resección intestinal previa
- Enfermedad inflamatoria intestinal
- Cirugía bariátrica previa
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: TRATAMIENTO
- Asignación: NO_ALEATORIZADO
- Modelo Intervencionista: PARALELO
- Enmascaramiento: NINGUNO
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
|
EXPERIMENTAL: Bypass gástrico en Y de Roux (BGYR)
Pacientes con obesidad severa programados para cirugía de bypass gástrico en Y de Roux
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Bypass gástrico en Y de Roux
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EXPERIMENTAL: Gastrectomía en manga (SG)
Pacientes severamente obesos programados para cirugía de gastrectomía en manga
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Banda gástrica
|
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COMPARADOR_ACTIVO: No quirúrgico
Controles de obesidad severa con modificaciones dietéticas y de actividad y excluye reemplazo de comidas o intervenciones farmacológicas
|
Modificaciones dietéticas y de actividad y excluye reemplazo de comidas o intervenciones farmacológicas
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Análisis microbiano fecal
Periodo de tiempo: 2 a 6 semanas antes de la intervención
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La composición de la comunidad microbiana de las muestras fecales se evaluará mediante análisis del gen 16S rRNA
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2 a 6 semanas antes de la intervención
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Análisis microbiano fecal
Periodo de tiempo: 3 meses después de la intervención
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La composición de la comunidad microbiana de las muestras fecales se evaluará mediante análisis del gen 16S rRNA
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3 meses después de la intervención
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Análisis microbiano fecal
Periodo de tiempo: 9 meses después de la intervención
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La composición de la comunidad microbiana de las muestras fecales se evaluará mediante análisis del gen 16S rRNA
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9 meses después de la intervención
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Metabolómica de la orina
Periodo de tiempo: 2 a 6 semanas antes de la intervención
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El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
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2 a 6 semanas antes de la intervención
|
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Metabolómica sérica
Periodo de tiempo: 2 a 6 semanas antes de la intervención
|
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
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2 a 6 semanas antes de la intervención
|
|
Metabolómica de la orina
Periodo de tiempo: 3 meses después de la intervención
|
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
|
3 meses después de la intervención
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|
Metabolómica sérica
Periodo de tiempo: 3 meses después de la intervención
|
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
|
3 meses después de la intervención
|
|
Metabolómica de la orina
Periodo de tiempo: 9 meses después de la intervención
|
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
|
9 meses después de la intervención
|
|
Metabolómica sérica
Periodo de tiempo: 9 meses después de la intervención
|
El perfil metabolómico se realizará con espectroscopia de RMN.
|
9 meses después de la intervención
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Citocinas y quimiocinas inflamatorias tisulares
Periodo de tiempo: mismo día de la cirugía
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Las muestras de mucosa de los grupos de cirugía se evaluarán para medir la tasa de sedimentación de eritropoyetina (VSG) y la proteína C reactiva.
Las quimiocinas son una familia de pequeñas citocinas.
|
mismo día de la cirugía
|
|
Citocinas y quimiocinas inflamatorias séricas
Periodo de tiempo: 2 a 6 semanas antes de la intervención
|
El suero se evaluará para medir la tasa de sedimentación de eritropoyetina (VSG) y la proteína C reactiva.
Las quimiocinas son una familia de pequeñas citocinas.
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2 a 6 semanas antes de la intervención
|
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Citocinas y quimiocinas inflamatorias séricas
Periodo de tiempo: 3 meses después de la intervención
|
El suero se evaluará para medir la tasa de sedimentación de eritropoyetina (VSG) y la proteína C reactiva.
Las quimiocinas son una familia de pequeñas citocinas.
|
3 meses después de la intervención
|
|
Citocinas y quimiocinas inflamatorias séricas
Periodo de tiempo: 9 meses después de la intervención
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El suero se evaluará para medir la tasa de sedimentación de eritropoyetina (VSG) y la proteína C reactiva.
Las quimiocinas son una familia de pequeñas citocinas.
|
9 meses después de la intervención
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Daniel W Birch, MD MSc, University of Alberta
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (ACTUAL)
Finalización primaria (ACTUAL)
Finalización del estudio (ACTUAL)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (ACTUAL)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (ACTUAL)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- Pro00071705
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .
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